论文目录 | |
| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-18页 |
| 英文缩写词表 | 第18-19页 |
| 前言 | 第19-20页 |
| 文献综述 | 第20-28页 |
| 第1章 大鼠心肌氧化应激损伤引起炎症性凋亡 | 第28-42页 |
| 1.1 实验材料 | 第28-30页 |
| 1.1.1 实验动物及细胞 | 第28页 |
| 1.1.2 实验主要仪器 | 第28-29页 |
| 1.1.3 实验主要试剂 | 第29-30页 |
| 1.2 实验方法 | 第30-33页 |
| 1.2.1 实验给药及分组 | 第30页 |
| 1.2.2 大鼠心肌I/R损伤模型制备 | 第30-31页 |
| 1.2.3 免疫组织化学染色检测 | 第31页 |
| 1.2.4 大鼠心肌组织ROS检测 | 第31页 |
| 1.2.5 大鼠H9c2心肌细胞培养 | 第31-32页 |
| 1.2.6 CCK-8 法测定H9c2细胞的存活率 | 第32-33页 |
| 1.2.7 免疫荧光染色 | 第33页 |
| 1.2.8 统计学分析 | 第33页 |
| 1.3 实验结果 | 第33-38页 |
| 1.3.1 大鼠心肌缺血再灌注损伤能否引起心肌炎症性凋亡 | 第33-35页 |
| 1.3.2 氧化应激引起H9c2细胞产生炎症性凋亡 | 第35-38页 |
| 1.4 讨论 | 第38-42页 |
| 第2章 TSA减轻大鼠心肌氧化应激引起的炎症性凋亡 | 第42-62页 |
| 2.1 实验材料 | 第42-46页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第42页 |
| 2.1.2 实验主要仪器 | 第42-43页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第43-46页 |
| 2.2 实验方法 | 第46-52页 |
| 2.2.1 动物给药及分组 | 第46-47页 |
| 2.2.2 TTC法测定大鼠心肌的梗死面积 | 第47页 |
| 2.2.3 大鼠血清心肌酶含量测定 | 第47页 |
| 2.2.4 大鼠心肌组织HE染色 | 第47-48页 |
| 2.2.5 大鼠心肌组织MDA含量及SOD活性测定 | 第48-49页 |
| 2.2.6 Annexin V/PI双染法检测大鼠心肌组织细胞凋亡 | 第49-50页 |
| 2.2.7 Western Blot法检测蛋白的表达 | 第50-51页 |
| 2.2.8 ELISA检测大鼠血清炎症因子的表达 | 第51-52页 |
| 2.3 实验结果 | 第52-59页 |
| 2.3.1 TSA对I/R损伤大鼠心肌损伤的影响 | 第52-54页 |
| 2.3.2 TSA对I/R损伤大鼠氧化应激的影响 | 第54-56页 |
| 2.3.3 TSA能否影响大鼠I/R损伤诱导的炎症性凋亡 | 第56-58页 |
| 2.3.4 TSA对I/R损伤大鼠血清炎症相关因子的影响 | 第58-59页 |
| 2.4 讨论 | 第59-62页 |
| 第3章 TSA基于FoxO3a干预氧化应激介导大鼠心肌炎症性凋亡 | 第62-88页 |
| 3.1 实验材料 | 第62-66页 |
| 3.1.1 实验细胞及动物 | 第62页 |
| 3.1.2 实验的主要仪器 | 第62-63页 |
| 3.1.3 实验主要试剂 | 第63-66页 |
| 3.2 实验方法 | 第66-72页 |
| 3.2.1 实验给药及分组 | 第66-67页 |
| 3.2.2 Western Blot法检测蛋白的表达 | 第67-68页 |
| 3.2.3 JC-1 检测线粒体膜电势 | 第68-69页 |
| 3.2.4 ELISA检测细胞上清炎症因子的表达 | 第69页 |
| 3.2.5 细胞转染 | 第69-70页 |
| 3.2.6 实时定量PCR检测 | 第70-72页 |
| 3.3 实验结果 | 第72-86页 |
| 3.3.1 心肌氧化应激损伤过程中FoxO3a表达的变化 | 第72-74页 |
| 3.3.2 TSA对氧化应激损伤大鼠FoxO3a表达的影响 | 第74-77页 |
| 3.3.3 TSA对H_2O_2诱导的H9c2细胞氧化应激损伤的影响 | 第77-79页 |
| 3.3.4 TSA能否影响H_2O_2诱导的大鼠心肌H9c2细胞炎症性凋亡 | 第79-81页 |
| 3.3.5 TSA对H_2O_2诱导的大鼠心肌H9c2细胞炎症相关因子的影响 | 第81-82页 |
| 3.3.6 TSA基于FoxO3a干预氧化应激介导大鼠心肌炎症性凋亡 | 第82-86页 |
| 3.4 讨论 | 第86-88页 |
| 第4章 TSA调控FoxO3a表达机制的研究 | 第88-100页 |
| 4.1 实验材料 | 第88-90页 |
| 4.1.1 实验细胞 | 第88页 |
| 4.1.2 实验主要仪器 | 第88-89页 |
| 4.1.3 实验主要试剂 | 第89-90页 |
| 4.2 实验方法 | 第90-94页 |
| 4.2.1 细胞给药及分组 | 第90页 |
| 4.2.2 HDAC活性检测 | 第90-91页 |
| 4.2.3 染色质免疫共沉淀（CHIP） | 第91-94页 |
| 4.3 实验结果 | 第94-96页 |
| 4.3.1 TSA对H_2O_2诱导的H9c2细胞Ⅰ类HDACs活性的影响 | 第94-95页 |
| 4.3.2 TSA对FoxO3a的基因启动子区组蛋白H3/H4乙酰化水平的影响 | 第95-96页 |
| 4.4 讨论 | 第96-100页 |
| 结论 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-111页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第111-112页 |
| 致谢 | 第112页 |
