论文目录 | |
| 摘要 | 第6-10页 |
| ABSTRACT | 第10-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-38页 |
| 1.1 鲍鱼简介 | 第19-20页 |
| 1.2 贝类副产物综合利用的研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3 海洋贝类活性多糖的研究进展 | 第21-29页 |
| 1.3.1 海洋贝类多糖的提取及分离纯化 | 第21-24页 |
| 1.3.2 海洋贝类多糖的活性研究 | 第24-26页 |
| 1.3.3 多糖结构的研究方法 | 第26-29页 |
| 1.4 海洋贝类多肽的研究进展 | 第29-35页 |
| 1.4.1 海洋贝类多肽的制备 | 第29-30页 |
| 1.4.2 海洋贝类多肽的活性研究 | 第30-31页 |
| 1.4.3 酶解法制备海洋贝类抗氧化肽的分离纯化及结构鉴定 | 第31-34页 |
| 1.4.4 抗氧化肽的构效关系研究 | 第34-35页 |
| 1.5 立题依据与研究内容 | 第35-38页 |
| 1.5.1 立题依据 | 第35-36页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第36-38页 |
| 第二章 皱纹盘鲍生殖腺多糖的分离纯化及基本特性 | 第38-55页 |
| 2.1 引言 | 第38页 |
| 2.2 试验材料 | 第38-40页 |
| 2.1.1 试验原料 | 第38页 |
| 2.1.2 主要试验试剂 | 第38-40页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第40页 |
| 2.3 试验方法 | 第40-45页 |
| 2.3.1 皱纹盘鲍生殖腺冻干粉主要化学组成的测定 | 第40-41页 |
| 2.3.2 皱纹盘鲍生殖腺多糖的制备及分离纯化 | 第41-42页 |
| 2.3.3 皱纹盘鲍生殖腺多糖的相对分子量及主要化学组成的测定 | 第42-44页 |
| 2.3.4 统计学分析 | 第44-45页 |
| 2.4 结果与分析 | 第45-54页 |
| 2.4.1 皱纹盘鲍生殖腺冻干粉的主要化学组成 | 第45页 |
| 2.4.2 皱纹盘鲍生殖腺粗多糖的主要化学组成 | 第45-47页 |
| 2.4.3 皱纹盘鲍生殖腺多糖AGP-3各组分的纯度鉴定 | 第47-49页 |
| 2.4.4 皱纹盘鲍生殖腺多糖AGP-3各组分的相对分子量 | 第49页 |
| 2.4.5 皱纹盘鲍生殖腺多糖AGP-3各组分的光谱鉴定 | 第49-51页 |
| 2.4.6 皱纹盘鲍生殖腺多糖AGP-3各组分的主要化学组成 | 第51页 |
| 2.4.7 皱纹盘鲍生殖腺多糖AGP-3各组分的单糖组成 | 第51-54页 |
| 2.5 本章小结 | 第54-55页 |
| 第三章 皱纹盘鲍生殖腺多糖AGP-33的结构研究 | 第55-67页 |
| 3.1 引言 | 第55页 |
| 3.2 试验材料 | 第55-57页 |
| 3.2.1 试验原料 | 第55页 |
| 3.2.2 主要试验试剂 | 第55-56页 |
| 3.2.3 主要仪器与设备 | 第56-57页 |
| 3.3 试验方法 | 第57-58页 |
| 3.3.1 部分酸水解法降解AGP-33 | 第57页 |
| 3.3.2 降解产物BAGP-33的分离纯化 | 第57页 |
| 3.3.3 核磁共振波谱(NMR)分析 | 第57-58页 |
| 3.4 结果与分析 | 第58-66页 |
| 3.4.1 AGP-33降解产物的纯度鉴定 | 第58-60页 |
| 3.4.2 AGP-33主链结构的甲基化分析 | 第60页 |
| 3.4.3 AGP-33的~1H-NMR和~(13)C-NMR分析 | 第60-61页 |
| 3.4.4 AGP-33的HSQC分析 | 第61-62页 |
| 3.4.5 AGP-33的~1H-~1H COSY分析 | 第62-64页 |
| 3.4.6 AGP-33的HMBC分析 | 第64-66页 |
| 3.5 本章小结 | 第66-67页 |
| 第四章 皱纹盘鲍生殖腺多糖的胆囊收缩素释放及抗凝血活性研究 | 第67-81页 |
| 4.1 引言 | 第67页 |
| 4.2 试验材料 | 第67-69页 |
| 4.2.1 试验原料 | 第67-68页 |
| 4.2.2 主要试验试剂 | 第68-69页 |
| 4.2.3 主要仪器与设备 | 第69页 |
| 4.3 试验方法 | 第69-72页 |
| 4.3.1 皱纹盘鲍生殖腺多糖AGP-33脱硫酸化 | 第69-70页 |
| 4.3.2 皱纹盘鲍生殖腺多糖的胆囊收缩素释放活性研究 | 第70页 |
| 4.3.3 皱纹盘鲍生殖腺多糖的抗凝血活性研究 | 第70-71页 |
| 4.3.4 统计学分析 | 第71-72页 |
| 4.4 结果与分析 | 第72-80页 |
| 4.4.1 AGP-33脱硫酸基产物的红外光谱分析 | 第72页 |
| 4.4.2 皱纹盘鲍生殖腺多糖诱导胆囊收缩素释放活性 | 第72-74页 |
| 4.4.3 皱纹盘鲍生殖腺多糖诱导胆囊收缩素释放过程的细胞内信号转导通路 | 第74-76页 |
| 4.4.4 皱纹盘鲍生殖腺多糖抗凝血活性研究 | 第76-80页 |
| 4.5 本章小结 | 第80-81页 |
| 第五章 皱纹盘鲍生殖腺酶解物的制备及组成分析 | 第81-90页 |
| 5.1 引言 | 第81页 |
| 5.2 试验材料 | 第81-82页 |
| 5.2.1 试验原料 | 第81页 |
| 5.2.2 主要试验试剂 | 第81-82页 |
| 5.2.3 主要仪器与设备 | 第82页 |
| 5.3 试验方法 | 第82-85页 |
| 5.3.1 皱纹盘鲍生殖腺脱脂粉的制备 | 第82-83页 |
| 5.3.2 皱纹盘鲍生殖腺脱脂粉粗蛋白含量的测定 | 第83页 |
| 5.3.3 皱纹盘鲍生殖腺冻干粉的氨基酸组分分析 | 第83页 |
| 5.3.4 皱纹盘鲍生殖腺脱脂粉的酶解方案 | 第83页 |
| 5.3.5 pH-stat法测定水解度 | 第83-84页 |
| 5.3.6 可溶性蛋白、TCA可溶性寡肽和肽得率的测定 | 第84页 |
| 5.3.7 皱纹盘鲍生殖腺肽分子量分布的测定 | 第84-85页 |
| 5.3.8 统计学分析 | 第85页 |
| 5.4 结果与分析 | 第85-89页 |
| 5.4.1 皱纹盘鲍生殖腺脱脂粉的氨基酸组分分析 | 第85-86页 |
| 5.4.2 皱纹盘鲍生殖腺酶解过程中水解度的变化 | 第86-87页 |
| 5.4.3 皱纹盘鲍生殖腺酶解物中可溶性蛋白、TCA可溶性寡肽和肽得率 | 第87-88页 |
| 5.4.4 皱纹盘鲍生殖腺酶解物中肽的分子量分布 | 第88-89页 |
| 5.5 本章小结 | 第89-90页 |
| 第六章 皱纹盘鲍雄性生殖腺水解物的功能特性研究 | 第90-103页 |
| 6.1 引言 | 第90页 |
| 6.2 试验材料 | 第90-92页 |
| 6.2.1 试验原料 | 第90-91页 |
| 6.2.2 主要试验试剂 | 第91页 |
| 6.2.3 主要仪器与设备 | 第91-92页 |
| 6.3 试验方法 | 第92-94页 |
| 6.3.1 不同水解度皱纹盘鲍雄性生殖腺酶解物的制备 | 第92页 |
| 6.3.2 流变特性的测定 | 第92页 |
| 6.3.3 氮溶指数的测定 | 第92页 |
| 6.3.4 乳化性的测定 | 第92-93页 |
| 6.3.5 起泡性测定 | 第93页 |
| 6.3.6 持水性和持油性的测定 | 第93页 |
| 6.3.7 表面疏水性的测定 | 第93-94页 |
| 6.3.8 统计学分析 | 第94页 |
| 6.4 结果与分析 | 第94-102页 |
| 6.4.1 不同水解时间下皱纹盘鲍雄性生殖腺酶解物的流变特性 | 第94-97页 |
| 6.4.2 不同水解时间下皱纹盘鲍雄性生殖腺酶解物的氮溶指数 | 第97-98页 |
| 6.4.3 不同水解时间下皱纹盘鲍雄性生殖腺酶解物的乳化性 | 第98-99页 |
| 6.4.4 不同水解时间下皱纹盘鲍雄性生殖腺酶解物的持水性和持油性 | 第99-100页 |
| 6.4.5 不同水解时间下皱纹盘鲍雄性生殖腺酶解物的起泡性 | 第100-101页 |
| 6.4.6 不同水解时间下皱纹盘鲍雄性生殖腺酶解物的表面疏水性 | 第101-102页 |
| 6.5 本章小结 | 第102-103页 |
| 第七章 皱纹盘鲍雌性生殖腺酶解物抗氧化特性研究 | 第103-123页 |
| 7.1 引言 | 第103页 |
| 7.2 试验材料 | 第103-105页 |
| 7.2.1 试验原料 | 第103-104页 |
| 7.2.2 主要试验试剂 | 第104-105页 |
| 7.2.3 主要仪器与设备 | 第105页 |
| 7.3 试验方法 | 第105-108页 |
| 7.3.1 皱纹盘鲍雌性生殖腺酶解物的制备 | 第105-106页 |
| 7.3.2 可溶性寡肽及肽得率的测定 | 第106页 |
| 7.3.3 分子量分布的测定 | 第106页 |
| 7.3.4 氨基酸组分分析 | 第106页 |
| 7.3.5 抗氧化活性的测定 | 第106-107页 |
| 7.3.6 皱纹盘鲍雌性生殖腺酶解物的分离纯化 | 第107页 |
| 7.3.7 氨基酸序列测定 | 第107-108页 |
| 7.3.8 目标肽的人工合成 | 第108页 |
| 7.4 结果与分析 | 第108-121页 |
| 7.4.1 皱纹盘鲍雌性生殖腺水解过程中水解度的变化 | 第108-109页 |
| 7.4.2 皱纹盘鲍雌性生殖腺酶解物的分子量分布 | 第109-110页 |
| 7.4.3 皱纹盘鲍雌性生殖腺水解物的肽得率 | 第110-111页 |
| 7.4.4 皱纹盘鲍雌性生殖腺酶解物的氨基酸组成 | 第111-113页 |
| 7.4.5 皱纹盘鲍雌性生殖腺酶解物的抗氧化活性 | 第113-116页 |
| 7.4.6 皱纹盘鲍雌性生殖腺多肽的分离纯化 | 第116页 |
| 7.4.7 皱纹盘鲍雌性生殖腺酶解物抗氧化活性组分的筛选 | 第116-118页 |
| 7.4.8 目标肽F4组分中的寡肽鉴定 | 第118-119页 |
| 7.4.9 P1的抗氧化活性 | 第119-121页 |
| 7.5 本章小结 | 第121-123页 |
| 第八章 结论与展望 | 第123-125页 |
| 8.1 主要结论 | 第123-124页 |
| 8.2 工作展望 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-142页 |
| 攻读博士期间取得的研究成果 | 第142-143页 |
| 致谢 | 第143页 |
