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岩藻糖基化海参硫酸软骨素改善胰岛素抵抗及其作用机制的研究

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岩藻糖基化海参硫酸软骨素改善胰岛素抵抗及其作用机制的研究
论文目录
 
英文缩略词第1-7页
摘要第7-11页
Abstract第11-25页
前言第25-41页
  1 胰岛素抵抗概述第25-37页
    · 胰岛素抵抗产生分子机制第25-30页
      · PI3K/PKB 胰岛素信号通路与胰岛素抵抗第25-28页
      · GLUT4 跨膜转运与胰岛素抵抗第28-29页
      · GSK-3β激活与胰岛素抵抗第29页
      · ERK 与胰岛素抵抗第29-30页
    · 脂肪细胞因子与胰岛素抵抗第30-31页
      · 脂联素第30页
      · 瘦素第30-31页
      · 抵抗素第31页
      · TNF-α第31页
    · 糖代谢紊乱与胰岛素抵抗第31-33页
      · 糖原合成相关的酶第32-33页
      · 糖异生相关的酶第33页
    · 胰岛Β细胞凋亡与胰岛素抵抗第33-37页
      · 高浓度葡萄糖引发胰岛β细胞凋亡第34页
      · 脂肪细胞因子调节胰岛β细胞凋亡第34页
      · 细胞凋亡的分子机制第34-37页
  2 海洋生物活性物质改善胰岛素抵抗的现状第37-39页
    · 多糖类第37-39页
    · 多肽类第39页
    · 不饱和脂肪酸类第39页
    · 皂苷类第39页
  3 立题依据,研究目的和意义第39-41页
第一章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素对胰岛素抵抗模型细胞葡萄糖转运及作用机制的影响第41-64页
  第一节 SC-CHS 对胰岛素抵抗模型细胞葡萄糖转运及机制的研究第42-52页
    1 材料和方法第42-46页
      · 实验材料第42-43页
        · 海参与细胞株第42页
        · 实验试剂第42页
        · 主要仪器第42-43页
      · 实验方法第43-46页
        · SC-CHS 的制备第43页
        · 3T3-L1 前脂肪细胞的诱导分化第43-44页
        · 3T3-L1 胰岛素抵抗细胞模型的建立第44页
        · SC-CHS 对模型细胞葡萄糖转运量的测定第44页
        · 细胞膜提取分离第44-45页
        · Western blot 分析第45-46页
        · 统计学分析第46页
    2 实验结果第46-52页
      · SC-CHS 对模型细胞葡萄糖的转运的影响第46-48页
      · SC-CHS 对模型细胞 PI3K/PKB 关键基因蛋白表达和磷酸化水平的影响第48-49页
      · SC-CHS 对模型细胞 ERK 蛋白表达和磷酸化水平的影响第49-50页
      · SC-CHS 对模型细胞 GLUT4 总蛋白和膜蛋白表达的影响第50-52页
  第二节 SC-CHS 对胰岛素抵抗模型细胞葡萄糖转运机制的验证第52-64页
    1 材料和方法第52-53页
      · 实验材料第52页
        · SC-CHS 与细胞株第52页
        · 实验试剂第52页
        · 主要仪器第52页
      · 实验方法第52-53页
        · 3T3-L1 前脂肪细胞分化、胰岛素抵抗模型细胞建立及实验分组第52页
        · Wortmannin、MK2206 及 U0126 干预下 SC-CHS 对模型细胞葡萄糖转运的测定第52-53页
        · Western blot 分析第53页
        · 统计学分析第53页
    2 实验结果第53-60页
      · 抑制剂作用下 SC-CHS 对模型细胞葡萄糖转运的影响第53-55页
      · Wortmannin 干预下 SC-CHS 对模型细胞 PI3K/PKB 关键基因蛋白表达的影响第55-56页
      · Wortmannin 干预下 SC-CHS 对模型细胞 ERK 蛋白表达的影响第56-57页
      · Wortmannin 干预下 SC-CHS 对模型细胞 GLUT4 蛋白表达的影响第57-58页
      · MK2206 干预下 SC-CHS 对模型细胞 PKB 和 GLUT4 蛋白表达的影响第58-59页
      · U0126 干预下 SC-CHS 对模型细胞 ERK 和 GLUT4 蛋白表达的影响第59-60页
    3 讨论第60-63页
    4 本章小结第63-64页
第二章 海参岩藻糖基化硫酸软骨素体内改善胰岛素抵抗的验证第64-78页
  第一节 SC-CHS 对胰岛素抵抗小鼠血糖和胰岛素含量的影响第65-73页
    1 材料和方法第65-68页
      · 实验材料第65-66页
        · 海参第65页
        · 实验动物第65页
        · 实验试剂第65页
        · 主要仪器第65-66页
      · 实验方法第66-68页
        · SC-CHS 的制备第66页
        · 动物实验及分组第66-67页
        · 空腹血糖水平的测定第67页
        · 口服葡萄糖耐量的测定第67页
        · 血清胰岛素水平的测定第67-68页
        · 统计学分析第68页
    2 实验结果第68-73页
      · 饲喂 HFSD 对小鼠能量摄入量的影响第68-69页
      · SC-CHS 对模型小鼠体重增加量的影响第69-70页
      · SC-CHS 对模型小鼠脂肪组织重量的影响第70页
      · SC-CHS 对模型小鼠空腹血糖水平的影响第70-71页
      · SC-CHS 对模型小鼠葡萄糖耐受性的影响第71-72页
      · SC-CHS 对小鼠胰岛素抵抗的影响第72-73页
  第二节 SC-CHS 对胰岛素抵抗小鼠脂肪细胞因子的影响第73-78页
    1 材料和方法第73-74页
      · 实验材料第73页
        · 岩藻糖基化海参硫酸软骨素与实验动物第73页
        · 实验试剂第73页
        · 主要仪器第73页
      · 实验方法第73-74页
        · 动物实验及分组第73页
        · 血清脂联素含量测定第73页
        · 血清瘦素含量测定第73-74页
        · 血清抵抗素含量测定第74页
        · 血清 TNF-α含量测定第74页
        · 统计学分析第74页
    2 实验结果第74-76页
      · SC-CHS 对模型小鼠血清脂联素水平的影响第74页
      · SC-CHS 对模型小鼠血清瘦素水平的影响第74-75页
      · SC-CHS 对模型小鼠血清抵抗素水平的影响第75页
      · SC-CHS 对模型小鼠血清 TNF-α水平的影响第75-76页
    3 讨论第76-77页
    4 本章小结第77-78页
第三章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素对胰岛素抵抗小鼠胰岛细胞凋亡及机制的研究第78-92页
  1 材料和方法第79-81页
    · 实验材料第79页
      · 岩藻糖基化海参硫酸软骨素及实验动物第79页
      · 实验试剂第79页
      · 主要仪器第79页
    · 实验方法第79-81页
      · 动物实验及分组第79-80页
      · 组织形态学观察第80页
      · RT-PCR 分析第80-81页
      · 胰岛细胞质分离第81页
      · Western blot 分析第81页
      · 统计学分析第81页
  2 实验结果第81-89页
    · SC-CHS 显著抑制了胰岛细胞凋亡第81-82页
    · SC-CHS 对胰岛 caspase 9 和 caspase 3 表达的影响第82-84页
    · SC-CHS 对胰岛 cytochrome c 表达和释放的影响第84-85页
    · SC-CHS 对胰岛 Bax 和 Bid 表达的影响第85-87页
    · SC-CHS 对胰岛 Bcl-2 和 Bcl-xL 表达的影响第87-89页
  3 讨论第89-91页
  4 本章小结第91-92页
第四章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素对胰岛素抵抗小鼠葡萄糖转运及机制的研究第92-111页
  第一节 SC-CHS 对胰岛素抵抗小鼠骨胳肌葡萄糖转运机制的研究第93-102页
    1 材料和方法第93-95页
      · 实验材料第93页
        · 岩藻糖基化海参硫酸软骨素制备与实验动物第93页
        · 实验试剂第93页
        · 主要仪器第93页
      · 实验方法第93-95页
        · 动物实验及分组第93页
        · 胰岛素刺激及组织处理第93-94页
        · 肌肉组织细胞膜提取第94页
        · q-RT-PCR 分析第94-95页
        · Western blot 分析第95页
        · 统计学分析第95页
    2 实验结果第95-102页
      · SC-CHS 对模型小鼠骨骼肌 PI3K/PKB 通路关键基因 mRNA 表达的影响第95-97页
      · SC-CHS 对模型小鼠骨骼肌 IR 和 IRS-1 蛋白表达的影响第97-98页
      · SC-CHS 对模型小鼠骨骼肌 PI3K 和 PKB 蛋白表达的影响第98-100页
      · SC-CHS 对小鼠骨骼肌 GLUT4 跨膜转运的影响第100-102页
  第二节 SC-CHS 对胰岛素抵抗小鼠脂肪组织葡萄糖转运机制的研究第102-111页
    1 材料和方法第102-103页
      · 实验材料第102页
        · 岩藻糖基化海参硫酸软骨素制备与实验动物第102页
        · 实验试剂第102页
        · 主要仪器第102页
      · 实验方法第102-103页
        · 动物实验及分组第102页
        · 胰岛素刺激及组织处理第102页
        · 附睾脂肪组织细胞膜的提取第102-103页
        · q-RT-PCR 检测第103页
        · Western blot 检测第103页
        · 统计学分析第103页
    2 实验结果第103-108页
      · SC-CHS 对小鼠脂肪组织 PI3K/PKB 通路关键基因 mRNA 表达的影响第103-105页
      · SC-CHS 对小鼠脂肪组织 IRS-1 蛋白表达的影响第105-106页
      · SC-CHS 对小鼠脂肪组织 PI3K 和 PKB 蛋白表达的影响第106-107页
      · SC-CH 对小鼠脂肪组织 GLUT4 跨膜转运的影响第107-108页
    3 讨论第108-110页
    4 本章小结第110-111页
第五章 岩藻糖基化海参硫酸软骨素对肝脏糖原合成及机制的研究第111-125页
  第一节 SC-CHS 对胰岛素抵抗小鼠肝脏糖代谢关键酶活力的研究第112-118页
    1 材料和方法第112-114页
      · 实验材料第112-113页
        · 岩藻糖基化海参硫酸软骨素制备与实验动物第112页
        · 实验试剂第112页
        · 主要仪器第112-113页
      · 实验方法第113-114页
        · 动物实验及分组第113页
        · 肝脏匀浆液制备第113页
        · HK 活力测定第113页
        · PK 活力测定第113-114页
        · GP 活力测定第114页
        · G6Pase 活力测定第114页
        · 统计学分析第114页
    2 实验结果第114-118页
      · SC-CHS 对肝脏糖原含量的影响第114-115页
      · SC-CHS 对肝脏糖原合成关键酶 HK 和 PK 活力的影响第115-116页
      · SC-CHS 对糖异生关键酶 GP 和 G6Pase 活力的影响第116-118页
  第二节 SC-CHS 对胰岛素抵抗小鼠肝脏 PKB/GSK-3Β信号通路的影响第118-125页
    1 材料和方法第118-119页
      · 实验材料第118页
        · 岩藻糖基化海参硫酸软骨素制备与实验动物第118页
        · 实验试剂第118页
        · 主要仪器第118页
      · 实验方法第118-119页
        · 动物实验及分组第118-119页
        · q-RT-PCR 分析第119页
        · 统计学分析第119页
    2 实验结果第119-122页
      · SC-CHS 对模型小鼠肝脏 IR、IRS-2、PI3K 和 PKB mRNA 表达的影响第119-121页
      · SC-CHS 对模型小鼠肝脏 GSK-3β和 GS mRNA 表达的影响第121-122页
    3 讨论第122-124页
    4 本章小结第124-125页
结论第125-127页
本论文的特色及创新之处第127-128页
参考文献第128-144页
致谢第144-145页
个人简历第145-146页
博士在读期间学术成果第146-148页

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