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骨髓间充质干细胞体外扩增及其与神经类细胞共培养的研究

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骨髓间充质干细胞体外扩增及其与神经类细胞共培养的研究
论文目录
 
摘要第1-6页
Abstract第6-12页
引言第12-14页
1 骨髓间充质干细胞培养及其促进神经修复的研究简介第14-31页
  · 概述第14页
  · BMSCs生物学性能简介第14-22页
    · BMSCs的发现、定义第14-15页
    · BMSCs的生物学特性第15-16页
    · BMSCs的主要表面标志第16页
    · BMSCs的多向分化潜能第16-18页
    · BMSCs的旁分泌功能第18-19页
    · BMSCs体外扩增研究进展第19-22页
  · BMSCs促进神经修复的相关研究第22-26页
    · BMSCs移植治疗CNS疾病及存在的问题第22-23页
    · BMSCs促进神经修复的作用机理第23-24页
    · BMSCs与NSCs相互作用的研究第24-26页
  · 帕金森病细胞模型第26-28页
    · 细胞凋亡与帕金森病第26-27页
    · 细胞凋亡模型建立方法第27-28页
  · 本文的选题依据和研究内容第28-31页
2 骨髓间充质干细胞的获取及体外三维动态培养与扩增第31-60页
  · 引言第31-32页
  · 实验仪器与材料第32-37页
    · 实验仪器与设备第32-34页
    · 药品与试剂第34-35页
    · 溶液与试剂的配制第35-37页
  · 实验方法第37-43页
    · BMSCs的分离与培养第37-38页
    · 细胞形态学观察第38页
    · 胶原凝胶的微观结构第38页
    · BMSCs的准备第38-39页
    · BMSCs在ALHFMB内三维动态扩增第39页
    · 细胞增殖第39页
    · 代谢分析第39-40页
    · ALHFMB内氧、二氧化碳分压及pH值测定第40页
    · 支架内细胞活性检测第40-41页
    · 支架内细胞形态观察第41-42页
    · 干细胞表面特异性标记检测第42页
    · 多向分化潜能的检测第42-43页
    · 统计学分析第43页
  · 结果第43-55页
    · 原代及传代培养的BMSCs生长形态第43-45页
    · 胶原凝胶的微观结构第45-46页
    · 细胞增殖第46-47页
    · 支架内细胞的代谢第47-48页
    · ALHFMB内氧、二氧化碳分压及pH值第48-49页
    · 支架内细胞活性第49-51页
    · 支架内细胞的形态第51-52页
    · 细胞表面特异性蛋白的表达第52-54页
    · 扩增细胞的多向分化潜能第54-55页
  · 讨论第55-59页
  · 小结第59-60页
3 BMSCs与三维条件下NSCs相互作用的研究第60-97页
  · 引言第60-61页
  · 实验仪器与材料第61-64页
    · 实验仪器与设备第61页
    · 药品与试剂第61-62页
    · 溶液与试剂的配制第62-64页
  · 实验方法第64-70页
    · BMSCs的分离、培养、扩增及鉴定第64页
    · NSCs的分离与培养第64-65页
    · NSCs诱导分化及免疫组织化学鉴定第65-66页
    · 海藻酸钙胶珠的制备第66-67页
    · NSCs微囊化培养第67页
    · BMSCs与NSCs共培养第67-68页
    · 增殖共培养后BMSCs对NSCs的影响第68-69页
    · 分化共培养后NSCs的流式细胞仪检测第69页
    · 增殖共培养后NSCs对BMSCs的影响第69-70页
    · 分化共培养后NSCs对BMSCs的影响第70页
    · 统计学分析第70页
  · 结果第70-93页
    · NSCs的原代及传代培养第70-71页
    · NSCs免疫组织化学及诱导分化鉴定第71-72页
    · 适宜NSCs生长的海藻酸钙胶珠第72-75页
    · NSCs微囊化培养第75-76页
    · 增殖共培养后BMSCs对NSCs的影响第76-82页
    · 分化共培养后BMSCs对NSCs的影响第82-85页
    · 增殖共培养后NSCs对BMSCs的影响第85-89页
    · 分化共培养后NSCs对BMSCs的影响第89-93页
  · 讨论第93-96页
  · 小结第96-97页
4 BMSCs在NSCs保护去血清诱导PC12细胞凋亡中的作用第97-117页
  · 引言第97页
  · 实验仪器与材料第97-98页
    · 实验仪器与设备第97页
    · 药品与试剂第97-98页
    · 药品与试剂的配制第98页
  · 实验方法第98-102页
    · BMSCs的分离、培养、扩增及鉴定第98页
    · NSCs的分离、培养与鉴定第98页
    · PC12细胞的培养及去血清诱导凋亡模型的建立第98-99页
    · 海藻酸钙胶珠与PC12细胞的生物相容性第99页
    · NSCs对去血清诱导PC12细胞凋亡的保护作用第99-100页
    · BMSCs在NSCs保护去血清诱导PC 12细胞凋亡中的作用第100页
    · Hoechst 33342染色分析第100-101页
    · 流式细胞仪分析PC12细胞凋亡率第101页
    · 流式细胞仪分析PC12细胞周期第101页
    · 培养基中GDNF浓度的测定第101页
    · 统计学分析第101-102页
  · 结果第102-114页
    · PC12细胞的培养及去血清诱导凋亡模型第102-103页
    · 海藻酸钙胶珠与PC12细胞的生物相容性第103-104页
    · 单独NSCs对去血清诱导凋亡的PC12细胞存活率的作用第104-106页
    · BMSCs与NSCs对诱导凋亡的PC12细胞存活率的共同作用第106-107页
    · Hoechst 33342染色分析第107-109页
    · 流式细胞仪分析PC12细胞凋亡率第109-111页
    · 流式细胞仪分析PC12细胞周期第111-113页
    · 不同培养条件下培养基中GDNF浓度的比较第113-114页
  · 讨论第114-116页
  · 小结第116-117页
结论第117-119页
工作展望第119-120页
创新点摘要第120-121页
参考文献第121-131页
附录A 英文缩略词第131-132页
作者简介第132-135页
致谢第135-137页

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