论文目录 | |
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-32页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 生物材料 | 第13-18页 |
| 1.2.1 合成材料 | 第13-14页 |
| 1.2.2 天然材料 | 第14-18页 |
| 1.2.3 复合材料 | 第18页 |
| 1.3 组织工程支架 | 第18-24页 |
| 1.3.1 多孔支架 | 第19页 |
| 1.3.2 水凝胶 | 第19-23页 |
| 1.3.3 微球 | 第23-24页 |
| 1.4 本课题的研究意义及内容 | 第24-27页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第24-25页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第25页 |
| 1.4.3 本课题的主要创新点 | 第25-27页 |
| 参考文献 | 第27-32页 |
| 第二章 席夫碱基单网络可注射水凝胶的制备与表征 | 第32-66页 |
| 2.1 前言 | 第32-33页 |
| 2.2 实验材料和方法 | 第33-43页 |
| 2.2.1 原料和仪器 | 第33-35页 |
| 2.2.2 氧化海藻酸钠(ASA)和氧化葡聚糖(ODex)的制备与表征 | 第35-37页 |
| 2.2.3 明胶和羧甲基壳聚糖的改性与表征 | 第37-38页 |
| 2.2.4 席夫碱基水凝胶的制备 | 第38-39页 |
| 2.2.5 席夫碱基水凝胶的结构及物理性能表征 | 第39-40页 |
| 2.2.6 水凝胶的细胞毒性评价 | 第40-41页 |
| 2.2.7 水凝胶作为皮肤粘合剂在动物体内的评价 | 第41-42页 |
| 2.2.8 统计分析 | 第42-43页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第43-60页 |
| 2.3.2 氨基化明胶和氨基化羧甲基壳聚糖的制备与表征 | 第47-49页 |
| 2.3.3 单网络水凝胶的交联机理 | 第49-50页 |
| 2.3.4 交联后水凝胶的结构分析 | 第50-51页 |
| 2.3.5 水凝胶交联时间的测定 | 第51-52页 |
| 2.3.6 水凝胶溶胀性能的测试 | 第52-53页 |
| 2.3.7 水凝胶猪皮粘结强度性能测试 | 第53-55页 |
| 2.3.8 水凝胶的生物相容性初步评价 | 第55-56页 |
| 2.3.9 水凝胶作为皮肤粘合剂在动物体内的评价 | 第56-60页 |
| 2.4 本章小结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 第三章 光交联海藻酸钠/明胶双网络水凝胶制备与表征 | 第66-90页 |
| 3.1 前言 | 第66-67页 |
| 3.2 实验部分 | 第67-72页 |
| 3.2.1 原料和仪器 | 第67-68页 |
| 3.2.2 氧化海藻酸钠(ASA)的改性与表征 | 第68页 |
| 3.2.3 氨基化明胶(AG)的制备 | 第68-69页 |
| 3.2.4 改性产物的结构表征 | 第69页 |
| 3.2.5 AMSA/AG双网络结构水凝胶的制备 | 第69-70页 |
| 3.2.6 AMSA/AG双网络结构水凝胶的物理学性能表征 | 第70-71页 |
| 3.2.7 双网络结构水凝胶的生物相容性初步评价 | 第71页 |
| 3.2.8 RGD接枝后的双网络水凝胶生物相容性初步评价 | 第71页 |
| 3.2.9 包裹细胞的双网络水凝胶制备与观察 | 第71-72页 |
| 3.2.10 统计分析 | 第72页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第72-85页 |
| 3.3.1 光交联AMSA/AG双网络水凝胶的制备原理 | 第72-73页 |
| 3.3.2 材料的结构表征 | 第73-75页 |
| 3.3.3 AMSA/AG双网络水凝胶的力学性能研究 | 第75-76页 |
| 3.3.4 AMSA/AG双网络水凝胶的流变性能 | 第76-77页 |
| 3.3.5 AMSA/AG双网络水凝胶的形貌观察 | 第77-78页 |
| 3.3.6 AMSA/AG双网络水凝胶的溶胀性能 | 第78-79页 |
| 3.3.7 AMSA/AG双网络水凝胶的体外降解性能研究 | 第79-80页 |
| 3.3.8 AMSA/AG双网络水凝胶的生物相容性考察 | 第80-81页 |
| 3.3.9 RGD接枝水凝胶的生物相容性初步研究 | 第81-84页 |
| 3.3.10 荧光细胞在水凝胶内部的生长 | 第84-85页 |
| 3.4 本章小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-90页 |
| 第四章 功能化复合水凝胶的制备及其在软骨修复中的初步应用 | 第90-114页 |
| 4.1 引言 | 第90-91页 |
| 4.2 实验部分 | 第91-98页 |
| 4.2.1 原料和仪器 | 第91-93页 |
| 4.2.2 含氨基聚氨酯(PN)的制备 | 第93-94页 |
| 4.2.3 含氨基的聚氨酯(PN)的表征 | 第94-95页 |
| 4.2.4 含氨基的聚氨酯(PN)自组装纳米粒子的制备 | 第95页 |
| 4.2.5 PN自组装纳米颗粒的形态研究 | 第95页 |
| 4.2.6 PN纳米颗粒的体外细胞实验 | 第95页 |
| 4.2.7 KGN偶联PN复合物(PN-KGN)的制备与表征 | 第95-96页 |
| 4.2.8 纳米颗粒复合水凝胶的制备 | 第96页 |
| 4.2.9 纳米颗粒复合水凝胶的形貌观察 | 第96页 |
| 4.2.10 纳米复合水凝胶中药物的释放性能测试 | 第96页 |
| 4.2.11 纳米复合水凝胶在软骨修复的初步应用 | 第96-97页 |
| 4.2.12 统计分析 | 第97-98页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第98-110页 |
| 4.3.1 聚合物PN的表征 | 第98-101页 |
| 4.3.2 PN纳米颗粒的自组装及其形态表征 | 第101-103页 |
| 4.3.3 PN纳米颗粒的细胞毒性表征 | 第103页 |
| 4.3.4 小分子药物KGN偶联PN复合物(PN-KGN)的结构表征 | 第103-105页 |
| 4.3.5 纳米复合水凝胶的形貌观察 | 第105-106页 |
| 4.3.6 复合水凝胶中KGN及蛋白模型BSA的释放曲线 | 第106-108页 |
| 4.3.7 复合水凝胶修复软骨检测结果 | 第108-110页 |
| 4.4 本章小结 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-114页 |
| 第五章 聚氨酯对抗癌药物的包封释放及靶向性探究 | 第114-128页 |
| 5.1 引言 | 第114页 |
| 5.2 实验部分 | 第114-119页 |
| 5.2.1 原料和仪器 | 第114-115页 |
| 5.2.2 含氨基聚氨酯(PN)与PN纳米颗粒的制备 | 第115页 |
| 5.2.3 PN纳米粒子对小分子抗癌药物的包封与释放 | 第115-117页 |
| 5.2.4 载药PN的生物相容性及对Hela细胞的抑制效果评估 | 第117页 |
| 5.2.5 PN的改性与表征 | 第117-118页 |
| 5.2.6 FA接枝PN纳米颗粒（P-A）对癌细胞的靶向识别 | 第118-119页 |
| 5.2.7 统计分析 | 第119页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第119-125页 |
| 5.3.1 PN纳米粒子对小分子抗癌药物的包封与释放 | 第119-121页 |
| 5.3.2 载药 PN 的生物相容性及对 Hela 细胞的抑制效果评估 | 第121-122页 |
| 5.3.3 PN改性产物的制备及结构表征 | 第122-124页 |
| 5.3.4 PN改性产物的靶向效果初步评估 | 第124-125页 |
| 5.4 本章小结 | 第125-126页 |
| 参考文献 | 第126-128页 |
| 第六章 总结与展望 | 第128-132页 |
| 6.1 总结 | 第128-130页 |
| 6.2 展望 | 第130-132页 |
| 攻读博士期间科研成果及获奖情况 | 第132-136页 |
| 附录：主要缩写词 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
