论文目录 | |
摘要 | 第1-16页 |
Abstract | 第16-18页 |
第一章 绪论 | 第19-76页 |
1.1. 引言 | 第19页 |
1.2. 稀土元素概述 | 第19-24页 |
1.2.1. 稀土元素的结构 | 第20页 |
1.2.2. 稀土元素的物理化学性质 | 第20-24页 |
1.3. 稀土掺杂上转换的发光机理 | 第24-26页 |
1.4. 稀土掺杂上转换纳米材料的光学特性 | 第26-33页 |
1.4.1. 上转换纳米材料的发光效率 | 第26-31页 |
1.4.2. 上转换纳米材料的多色发光 | 第31-33页 |
1.5. 稀土掺杂上转换纳米材料的制备方法 | 第33-36页 |
1.5.1. 油相体系合成法 | 第33-34页 |
1.5.2. 水相体系合成法 | 第34-36页 |
1.6. 稀土掺杂上转换核壳结构纳米材料的制备方法 | 第36-39页 |
1.6.1. 外延沉积壳层生长法 | 第37-38页 |
1.6.2. 层层生长法(layer-by-layer, LBL) | 第38-39页 |
1.7. 上转换纳米材料的表面修饰 | 第39-44页 |
1.7.1. 配体交换法 | 第40-41页 |
1.7.2. 配体去除法 | 第41页 |
1.7.3. 配体氧化法 | 第41-43页 |
1.7.4. 聚合物包覆法 | 第43页 |
1.7.5. 二氧化硅包覆法 | 第43-44页 |
1.8. 提高稀土掺杂上转换纳米材料发光性能的方法 | 第44-50页 |
1.8.1. 构建核壳上转换纳米材料 | 第44-45页 |
1.8.2. 有机染料敏化上转换 | 第45-46页 |
1.8.3. 贵金属等离子共振增强上转换发光 | 第46-48页 |
1.8.4. 光子晶体增强上转换发光 | 第48-50页 |
1.8.5. 多种模式结合增强上转换发光 | 第50页 |
1.9. 稀土掺杂上转换纳米材料在生物医学领域中的应用 | 第50-60页 |
1.9.1. 上转换纳米材料在多模式生物成像中的应用 | 第51-55页 |
1.9.2. 上转换纳米材料在分子检测中的应用 | 第55-60页 |
1.10. 主要科学问题 | 第60页 |
1.11. 本文主要思路及研究内容 | 第60-63页 |
参考文献 | 第63-76页 |
第二章 探究油相体系合成上转换纳米颗粒的新方法 | 第76-105页 |
2.1. 引言 | 第76-77页 |
2.2. 实验试剂与仪器 | 第77-79页 |
2.2.1 实验试剂 | 第77-78页 |
2.2.2 实验仪器 | 第78-79页 |
2.2.3 常用玻璃仪器及处理方法 | 第79页 |
2.3. 实验方法 | 第79-86页 |
2.3.1. 稀土油酸盐前驱体[Ln(OA)_3]的制备 | 第79页 |
2.3.2. 利用Ln(OA)_3前驱体制备核结构UCNPs | 第79-80页 |
2.3.3. 利用Ln-OA法制备核壳结构UCNPs | 第80-81页 |
2.3.4. 利用Ln-OA法制备808 nm激发的多壳层结构UCNPs | 第81-82页 |
2.3.5. 利用Ln-Cl法制备核结构UCNPs | 第82-83页 |
2.3.6. 利用Ln-Cl法制备980 nm激发的核壳UCNPs | 第83-84页 |
2.3.7. 利用Ln-Cl法制备808 nm激发的核壳UCNPs | 第84-86页 |
2.3.8. 产物表征 | 第86页 |
2.4. 结果与讨论 | 第86-100页 |
2.4.1. 不同反应时间对Ln-OA法制备UCNPs的影响 | 第86-88页 |
2.4.2. 对比Ln-OA与Ln-Cl两种方法制备核壳结构UCNPs | 第88-92页 |
2.4.3. Ln-OA法构建980 nm激发的核壳结构UCNPs | 第92-95页 |
2.4.4. Ln-OA法构建808 nm近红外光激发的核壳UCNPs | 第95-97页 |
2.4.5. Ln-Cl法构建808 nm近红外光激发的核壳UCNPs | 第97-100页 |
2.5. 本章小结 | 第100-102页 |
参考文献 | 第102-105页 |
第三章 形状调控策略增强核壳结构上转换纳米颗粒的荧光研究 | 第105-130页 |
3.1. 引言 | 第105-106页 |
3.2. 实验试剂及仪器 | 第106-107页 |
3.2.1. 实验试剂 | 第106-107页 |
3.2.2. 实验仪器 | 第107页 |
3.3. 实验方法 | 第107-111页 |
3.3.1. NaYF_4:Yb:Er (Tm)核UCNPs合成 | 第107-108页 |
3.3.2. 核壳结构UCNPs的合成方法 | 第108-110页 |
3.3.3. 产物表征 | 第110-111页 |
3.4. 结果与讨论 | 第111-125页 |
3.4.1. OA/ODE比例对核壳UCNPs形貌的影响 | 第111-116页 |
3.4.2. 不同形貌的核壳UCNPs的壳层生长过程研究 | 第116-120页 |
3.4.3. OA配体调控核壳UCNPs形貌的机理研究 | 第120-122页 |
3.4.4. Tm~(3+)掺杂的核壳UCNPs的形貌调控及发光性能研究 | 第122-125页 |
3.5. 本章小结 | 第125-127页 |
参考文献 | 第127-130页 |
第四章 YA~(3+)掺杂调控NaLuF_4基质UCNPs的尺寸及晶相研究 | 第130-150页 |
4.1 引言 | 第130-131页 |
4.2. 实验试剂和仪器 | 第131-132页 |
4.2.1. 实验试剂 | 第131-132页 |
4.2.2. 实验仪器 | 第132页 |
4.3. 实验方法 | 第132-133页 |
4.3.1. NaLuF_4:Y/Yb/Tm(Er)核UCNPs的合成方法 | 第132-133页 |
4.4. 结果与讨论 | 第133-145页 |
4.4.1. NaLuF_4:Y/Yb/Tm(Er)核UCNPs的表征 | 第134-140页 |
4.4.2. Y~(3+)掺杂调控NaLuF_4纳米颗粒的尺寸及晶相的机理研究 | 第140-141页 |
4.4.3. Y~(3+)掺杂调控NaLuF_4基质UCNPs的上转换发光性能研究 | 第141-145页 |
4.5. 本章小结 | 第145-147页 |
参考文献 | 第147-150页 |
第五章 核壳NaLuF_4基质UCNPs的构建并用于体内外深度组织的上转换/CT双模式成像研究 | 第150-179页 |
5.1. 引言 | 第150-151页 |
5.2 实验试剂和仪器 | 第151-154页 |
5.2.1. 实验试剂 | 第152-153页 |
5.2.2. 相关试剂配置 | 第153页 |
5.2.3. 实验仪器 | 第153-154页 |
5.3. 实验方法 | 第154-158页 |
5.3.1. NaLuF_4核壳UCNPs合成方法 | 第154-155页 |
5.3.2. NaLuF_4核壳UCNPs的水溶改性 | 第155页 |
5.3.3. NaLuF_4核壳UCNPs的体外细胞毒性 | 第155-156页 |
5.3.4. 体外NaLuF_4核壳UCNPs的近红外光穿透深度 | 第156-157页 |
5.3.5. NaLuF_4核壳UCNPs的体内上转换荧光成像 | 第157页 |
5.3.6. NaLuF_4核壳UCNPs的体外CT成像 | 第157页 |
5.3.7. NaLuF_4核壳UCNPs的体内CT成像及组织相容性研究 | 第157-158页 |
5.4. 结果与讨论 | 第158-174页 |
5.4.1. NaLuF_4核壳Lu-UCNPs的表征 | 第158-160页 |
5.4.2. NaLuF_4核壳UCNPs的上转换荧光性能 | 第160-162页 |
5.4.3. Lu-UCNPs的水溶改性 | 第162-164页 |
5.4.4. Lu-UCNPs的细胞毒性研究 | 第164-165页 |
5.4.5. Lu-UCNPs体外近红外光穿透深度研究 | 第165-167页 |
5.4.6. Lu-UCNPs体内UCL成像研究 | 第167-168页 |
5.4.7. Lu-UCNPs的体外CT成像研究 | 第168-169页 |
5.4.8. Lu-UCNPs的体内CT成像研究 | 第169-171页 |
5.4.9. Lu-UCNPs体内代谢分布研究 | 第171-173页 |
5.4.10. Lu-UCNPs的体内生物安全性评价 | 第173-174页 |
5.5. 本章小结 | 第174-176页 |
参考文献 | 第176-179页 |
第六章 全文总结与展望 | 第179-182页 |
6.1 研究总结 | 第179-181页 |
6.2 研究展望 | 第181-182页 |
附录: 中英文对照表 | 第182-185页 |
附录: 博士期间研究成果 | 第185-188页 |
致谢 | 第188-189页 |