论文目录 | |
摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-10页 |
第一章 绪论 | 第10-26页 |
· IBD及IBDV研究进展 | 第10-17页 |
· IBD概述 | 第10-11页 |
· IBDV形态结构 | 第11页 |
· IBDV基因组 | 第11-12页 |
· IBDV蛋白功能 | 第12-15页 |
· IBDV复制周期 | 第15-17页 |
· 细胞自噬的研究概况 | 第17-22页 |
· 细胞自噬 | 第17-18页 |
· 细胞自噬的发生过程 | 第18页 |
· 细胞自噬的调控 | 第18-20页 |
· 细胞自噬的功能 | 第20-22页 |
· 细胞自噬与病毒感染的相关研究 | 第22-25页 |
· 病毒抵抗自噬机制 | 第22-23页 |
· 病毒诱导自噬以促进病毒的复制 | 第23-25页 |
· IBDV与细胞自噬 | 第25页 |
· 本研究的目的和意义 | 第25-26页 |
第二章 传染性法氏囊病病毒感染诱导细胞自噬 | 第26-32页 |
· 材料 | 第26页 |
· 主要试剂 | 第26页 |
· 病毒、细胞和质粒 | 第26页 |
· 方法 | 第26-28页 |
· IBDV感染与TCID_(50)滴度测定 | 第26-27页 |
· 提取细胞线粒体 | 第27页 |
· SDS-PAGE & Western blot | 第27页 |
· 激光共聚焦观察 | 第27-28页 |
· 电镜观察 | 第28页 |
· 统计分析 | 第28页 |
· 实验结果分析 | 第28-31页 |
· IBDV感染DF-1 细胞 36h诱导细胞凋亡 | 第28-29页 |
· WB检测证明IBDV感染DF-1 细胞 24h诱导细胞自噬 | 第29页 |
· 共聚焦观察证明IBDV感染DF-1 细胞 24h诱导细胞自噬 | 第29页 |
· 电镜观察证明IBDV感染DF-1 细胞 24h诱导细胞自噬 | 第29-31页 |
· 讨论 | 第31-32页 |
第三章 自噬促进传染性法氏囊病病毒的成熟、释放与再感染 | 第32-50页 |
· 材料 | 第32页 |
· 主要试剂 | 第32页 |
· 病毒、细胞和质粒 | 第32页 |
· 方法 | 第32-36页 |
· IBDV感染与TCID50滴度测定 | 第32页 |
· 引物的设计与合成 | 第32-33页 |
· 细胞总RNA的提取和cDNA的合成 | 第33页 |
· 常规PCR | 第33页 |
· 真核表达载体的构建 | 第33页 |
· siRNA & shRNA的转染 | 第33-34页 |
· SDS PAGE & Western Blot | 第34页 |
· 激光共聚焦观察 | 第34页 |
· 3D活细胞成像 | 第34-35页 |
· 高内涵分析 | 第35页 |
· 免疫电镜观察 | 第35-36页 |
· 统计分析 | 第36页 |
· 实验结果分析 | 第36-48页 |
· 诱导自噬促进IBDV的复制 | 第36页 |
· 抑制自噬降低IBDV的复制 | 第36-38页 |
· 敲低LC3B降低IBDV的复制 | 第38页 |
· 敲低ATG5降低IBDV的复制 | 第38-40页 |
· IBDV感染诱导amphisome和/或autolysosome的形成 | 第40页 |
· IBDV组装相关蛋白集聚在LysoTracker标记的酸性囊泡周围 | 第40-42页 |
· IBDV组装相关基本元件与LAMP1共定位 | 第42-43页 |
· 阻断自噬体与溶酶体的融合降低IBDV的复制 | 第43页 |
· 抑制自噬溶酶体的酸化降低IBDV的复制 | 第43-45页 |
· 自噬囊泡促进IBDV的成熟、释放与再感染 | 第45-48页 |
· 讨论 | 第48-50页 |
第四章 全文结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
作者简历 | 第62-63页 |
导师简介 | 第63页 |