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CCR5近膜区在HIV-1病毒感染过程中的作用研究

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CCR5近膜区在HIV-1病毒感染过程中的作用研究
论文目录
 
摘要第1-4页
abstract第4-9页
主要符号对照表第9-10页
第1章 前言第10-37页
  1.1 艾滋病(AIDS)介绍第10-12页
    1.1.1 艾滋病定义第10页
    1.1.2 首例艾滋病的发现第10页
    1.1.3 全球流行现状第10-12页
  1.2 人类免疫缺陷病毒第12-18页
    1.2.1 HIV-1病毒的结构第13-14页
    1.2.2 HIV-1病毒的生命周期第14-18页
  1.3 HIV-1病毒感染过程中的关键靶点第18-26页
    1.3.1 抗AIDS药物靶点第18-22页
    1.3.2 中和抗体靶点第22-26页
  1.4 抗艾药物和疫苗研发的挑战第26-31页
  1.5 辅助受体第31-35页
    1.5.1 趋化因子受体第31页
    1.5.2 辅助受体转换第31-32页
    1.5.3 CCR5受体第32-33页
    1.5.4 靶向CCR5的抑制剂和抗体第33-35页
  1.6 本研究的目的和内容第35-37页
第2章 实验材料与方法第37-62页
  2.1 实验材料第37-38页
    2.1.1 多肽和引物第37页
    2.1.2 菌株、细胞和质粒第37-38页
    2.1.3 实验试剂第38页
  2.2 实验仪器第38-39页
  2.3 实验方法第39-62页
    2.3.1 抗原表位预测第39-40页
    2.3.2 动物免疫和血清收集第40页
    2.3.3 ELISA法测定血清滴度第40-41页
    2.3.4 总IgG抗体的纯化第41-42页
    2.3.5 总RNA的提取第42-43页
    2.3.6 RT-PCR第43-45页
    2.3.7 PCR扩增产物的电泳和胶回收第45-46页
    2.3.8 重组质粒构建第46-47页
    2.3.9 大肠杆菌Tran1-T1感受态细胞转化第47-48页
    2.3.10 质粒提取第48-49页
    2.3.11 CCR5突变质粒的构建第49-51页
    2.3.12 胆固醇偶联多肽的合成第51-52页
    2.3.13 制备假病毒第52-53页
    2.3.14 检测假病毒的感染能力第53-54页
    2.3.15 HIV-1假病毒感染实验第54-56页
    2.3.16 流式细胞术第56-59页
    2.3.17 膜融合抑制实验第59-60页
    2.3.18 细胞毒性实验第60页
    2.3.19 六螺旋束的抑制实验第60-62页
第3章 CCR5受体上的抗原表位预测以及抗体的功能检测第62-77页
  3.1 抗原表位预测第62-64页
  3.2 诱导针对MPR区域的抗体第64-70页
  3.3 MPR特异性抗体与天然状态CCR5蛋白的结合第70-71页
  3.4 MPR特异性抗体抗病毒感染的活性第71-74页
  3.5 MPR特异性抗体不引起CCR5受体的内吞第74-75页
  3.6 MPR特异性抗体不影响CCR5受体介导的钙流升高第75-76页
  3.7 本章小结第76-77页
第4章 MPR区域的替换和关键位点的确定第77-87页
  4.1 野生型CCR5质粒的构建第77-80页
  4.2 MPR区域在病毒感染过程中的作用验证第80-83页
  4.3 MPR区域上关键位点的确定第83-86页
  4.4 本章小结第86-87页
第5章 MPR区域衍生多肽抑制剂的设计和抗病毒活性第87-97页
  5.1 MPR区域衍生多肽抑制剂的设计第87-92页
  5.2 C17-Chol抗病毒感染的活性第92-93页
  5.3 MPR区域衍生多肽的细胞毒性第93-94页
  5.4 C17-Chol发挥抑制作用的时间第94-96页
  5.5 本章小结第96-97页
第6章 总结与展望第97-102页
  6.1 研究总结第97-100页
  6.2 研究展望第100-102页
参考文献第102-125页
致谢第125-127页
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果第127页

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