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谷子SiASR4基因参与植物响应干旱和盐胁迫的功能研究

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谷子SiASR4基因参与植物响应干旱和盐胁迫的功能研究
论文目录
 
摘要第1-5页
Abstract第5-11页
英文缩略词第11-12页
第一章 文献综述第12-35页
  1.1 植物对干旱胁迫的感知及响应第12-22页
    1.1.1 干旱胁迫对植物生长的影响第12-13页
    1.1.2 植物响应干旱胁迫的生理机制第13-14页
    1.1.3 植物响应干旱胁迫的分子机制第14-18页
    1.1.4 ABA调节气孔运动对植物抗旱的影响第18-22页
  1.2 植物响应盐胁迫的研究进展第22-27页
    1.2.1 盐胁迫对植物生长的影响第22页
    1.2.2 植物响应盐胁迫的生理机制第22-23页
    1.2.3 植物响应盐胁迫的分子机制第23-27页
  1.3 ASR蛋白家族的研究进展第27-31页
    1.3.1 ASR蛋白的发现第27-28页
    1.3.2 ASR蛋白的结构特征第28-29页
    1.3.3 ASR蛋白的生物学功能第29-31页
  1.4 谷子的介绍第31-34页
    1.4.1 谷子的重要地位和特色第31-32页
    1.4.2 谷子的研究进展第32-34页
  1.5 本研究的目的及意义第34-35页
第二章 材料和方法第35-61页
  2.1 实验材料第35-40页
    2.1.1 宿主菌第35页
    2.1.2 质粒载体第35页
    2.1.3 植物材料第35页
    2.1.4 各种酶及实验试剂第35-36页
    2.1.5 主要仪器设备第36-37页
    2.1.6 实验所用引物及探针第37-40页
  2.2 常用培养基及溶液配制第40-42页
    2.2.1 常用培养基配制第40-41页
    2.2.2 常用溶液的配制第41-42页
  2.3 实验所用试剂的配制第42-48页
    2.3.1 大肠杆菌感受态细胞的制备第42页
    2.3.2 碱裂解法小提质粒DNA第42-43页
    2.3.3 植物基因组DNA的提取第43页
    2.3.4 农杆菌介导拟南芥的遗传转化第43页
    2.3.5 烟草表皮亚细胞定位及烟草转录激活实验第43-44页
    2.3.6 GST融合蛋白的原核诱导及纯化第44页
    2.3.7 SDS-PAGE及Western blot第44-45页
    2.3.8 凝胶阻滞实验第45页
    2.3.9 PEG/LiAc法转化酵母第45页
    2.3.10 酵母单杂交实验第45-46页
    2.3.11 GUS组织化学染色第46页
    2.3.12 DAB化学染色第46页
    2.3.13 谷子原生质体的制备及瞬时转化第46-47页
    2.3.14 气孔开度实验第47-48页
  2.4 实验方法第48-61页
    2.4.1 大肠杆菌感受态细胞的制备第48页
    2.4.2 质粒或连接产物转化大肠杆菌第48页
    2.4.3 农杆菌感受态细胞的制备及电击转化第48-49页
    2.4.4 碱裂解法提取质粒DNA第49页
    2.4.5 SDS法小提植物基因组DNA第49页
    2.4.6 CTAB法小提植物基因组DNA第49-50页
    2.4.7 目的基因的PCR扩增第50页
    2.4.8 TRIzol法提取植物总RNA第50-51页
    2.4.9 cDNA第一链的合成、RT-PCR和荧光定量PCR第51-52页
    2.4.10 酵母转录激活实验第52-53页
    2.4.11 酵母单杂交实验第53页
    2.4.12 GST融合蛋白的原核诱导表达及纯化第53-54页
    2.4.13 SDS-PAGE和Western blot第54-55页
    2.4.14 凝胶阻滞实验第55-56页
    2.4.15 谷子原生质体的制备及瞬时转化第56页
    2.4.16 烟草表皮亚细胞定位实验第56-57页
    2.4.17 烟草中的转录激活实验第57页
    2.4.18 农杆菌转化谷子愈伤组织第57-58页
    2.4.19 农杆菌介导的拟南芥转化第58页
    2.4.20 GUS组织化学染色第58-59页
    2.4.21 DAB组织化学染色第59页
    2.4.22 植物培养第59页
    2.4.23 拟南芥、谷子和玉米胁迫处理实验第59-60页
    2.4.24 叶绿素含量的测定第60-61页
第三章 谷子ASR基因家族的鉴定和分析第61-69页
  3.1 前言第61页
  3.2 谷子中ASR蛋白的结构分析及同源性比对第61-63页
  3.3 谷子ASR基因家族表达模式分析第63-69页
    3.3.1 ASR基因家族组织表达模式分析第63-65页
    3.3.2 ASR基因家族在逆境下的表达模式分析第65-69页
第四章 谷子SiASR4基因对植物响应非生物胁迫的作用第69-98页
  4.1 前言第69页
  4.2 SiASR4生物信息学分析第69-70页
  4.3 SiASR4自身特性分析第70-75页
    4.3.1 SiASR4组织表达特性第70-71页
    4.3.2 SiASR4蛋白的亚细胞定位第71-73页
    4.3.3 SiASR4转录活性分析第73-75页
  4.4 SiASR4提高拟南芥对干旱及盐胁迫的耐受性第75-83页
    4.4.1 异源表达SiASR4转基因拟南芥的获得第75-76页
    4.4.2 异源表达SiASR4转基因拟南芥在盐胁迫下的表型观察第76-79页
    4.4.3 异源表达SiASR4转基因拟南芥在干旱胁迫下的表型观察第79-82页
    4.4.4 ABA等处理异源表达SiASR4转基因拟南芥的气孔运动情况第82-83页
  4.5 超表达SiASR4增强谷子对干旱及盐胁迫的耐受能力第83-89页
    4.5.1 转SiASR4-OE超表达载体和SiASR4-RNAi干扰载体转基因谷子的获得第83-86页
    4.5.2 转基因谷子种子在萌发期抗盐性和抗旱性分析第86-87页
    4.5.3 转基因谷子在干旱胁迫下的表型观察第87-88页
    4.5.4 转基因谷子在盐胁迫下的表型观察第88-89页
  4.6 过表达SiASR4拟南芥和谷子植株中ROS积累量降低第89-90页
  4.7 SiASR4增强玉米对干旱及盐胁迫的耐受能力第90-92页
    4.7.1 异源表达SiASR4玉米在盐胁迫下的表型观察第90-91页
    4.7.2 异源表达SiASR4玉米在干旱胁迫下的表型观察第91-92页
  4.8 SiASR4受谷子DREB类转录因子SiARDP正向调控第92-95页
    4.8.1 SiASR4启动子区分析第92-93页
    4.8.2 SiARDP能够在体内及体外结合SiASR4启动子区第93-95页
    4.8.3 SiASR4在SiARDP超表达谷子中的表达量分析第95页
  4.9 SiASR4激活胁迫响应相关基因的表达第95-98页
    4.9.1 在异源表达SiASR4的拟南芥中胁迫响应相关基因表达分析第95-96页
    4.9.2 在超表达SiASR4的谷子中胁迫响应相关基因的表达分析第96-98页
第五章 谷子SiASR3和SiASR9基因的克隆及分析第98-106页
  5.1 SiASR3和SiASR9基因编码序列的克隆第98页
  5.2 SiASR3和SiASR9蛋白的亚细胞定位第98-99页
  5.3 SiASR3和SiASR9转录激活活性分析第99-100页
  5.4 异源表达SiASR3和SiASR9拟南芥在逆境下表型观察第100-104页
    5.4.1 pCambia1307-SiASR3和pCambia1307-SiASR9过表达载体的构建第100-101页
    5.4.2 异源表达SiASR3和SiASR9拟南芥的获得第101-102页
    5.4.3 异源表达SiASR3和SiASR9拟南芥在非生物胁迫下的表型观察第102-104页
  5.5 SiASR3和SiASR9在拟南芥体内可能存在26S蛋白酶体降解途径第104-106页
第六章 讨论第106-110页
  6.1 在谷子中鉴定了ASR基因家族第106页
  6.2 SiASR4蛋白亚细胞定位与其功能的关系第106页
  6.3 SiASR4超表达增强转基因植株抵抗干旱和盐胁迫的能力第106-107页
  6.4 SiASR4在植物响应干旱和盐胁迫中可能存在的作用机制第107-108页
  6.5 SiASR4的表达受DREB类转录因子SiARDP的调控第108页
  6.6 SiASR3和SiASR9受翻译后调节作用第108-109页
  6.7 进一步研究设想第109-110页
第七章 结论第110-111页
参考文献第111-127页
附录Ⅰ SiASR4在玉米品质改良中的应用第127-135页
  1.1 研究背景第127-128页
  1.2 SiASR4在玉米品质改良中的研究结果第128-133页
  1.3 结论第133-134页
  1.4 参考文献第134-135页
致谢第135-136页
个人简历第136页

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