论文目录 | |
中文摘要 | 第1-6
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英文摘要 | 第6-11
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1 绪论 | 第11-23
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1.1 引言 | 第11-12
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1.2 基因工程药物生产的基本过程 | 第12-13
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1.3 本文的主要研究内容 | 第13-19
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1.3.1 国内外研究概况及开发变异新型IL(2的必要性 | 第14
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1.3.2 人IL(2的结构及理化性质 | 第14-18
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1.3.3 IL-2R及其基因结构 | 第18
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1.3.4 IL-2生物学活性与IL-2R的相互关系 | 第18-19
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1.4 本文的创新之处 | 第19-23
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1.4.1 IL(2三突变位点的设计思想 | 第19-20
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1.4.2 选用巴斯德毕赤酵母系统(PichiaPastoris)表达IL(2和变异IL(2 | 第20-21
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1.4.3 建立一套用PichiaPastoris分泌表达的变异IL(2并利于工业化生产的纯化工艺 | 第21-23
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2 克隆、表达与纯化 | 第23-45
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2.1 材料与方法 | 第24-45
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2.1.1 细胞株与质粒 | 第24
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2.1.2 主要仪器 | 第24-25
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2.1.3 主要试剂 | 第25-29
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2.1.4 引物设计、合成及目的基因扩增 | 第29-32
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2.1.5 限制性内切酶谱筛选重组子 | 第32-34
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2.1.6 DNA序列分析 | 第34
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2.1.7 将质粒(pPIC9K(IL(2(3m,pPIC9K)转入PichiaPastoris菌株KM71中 | 第34-36
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2.1.8 G418筛选多拷贝工程菌 | 第36-37
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2.1.9 三 突变体rhIL(2在KM71中的诱导表达及Western(blot检测 | 第37-40
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2.1.10 工程菌发酵 | 第40
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2.1.11 人rhIL(2的纯化 | 第40-41
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2.1.12 rhIL(2活性测定 | 第41-44
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2.1.13 蛋白质含量的测定—Bradford | 第44-45
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3 结果 | 第45-65
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3.1 PCR引物的设计、合成和目的基因扩增 | 第45-46
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3.2 三 突变体人rIL(2(C125A/L18M/L19S)质粒的构建筛选及突变位点的序列分析 | 第46-53
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3.2.1 重组子 | 第48
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3.2.2 DNA序列分析 | 第48-53
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3.3 CaCl2法转化大肠杆菌TOP10F(的结果 | 第53-54
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3.4 限制性内切酶分析重组子结果 | 第54
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3.5 碱变性法制备质粒DNA的结果 | 第54-55
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3.6 用PichiaEasyCompTMtransformationKit转染KM71细胞 | 第55-56
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3.7 G418筛选多拷贝阳性转化子的(His+MutS)结果 | 第56-58
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3.8 突变体IL(2在KM71中的诱导表达结果及免疫印迹反应检测表达的结果 | 第58-59
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3.9 hrIL(2的纯化结果 | 第59-62
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3.10 rhIL(2的活性测定结果 | 第62-65
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4 讨论 | 第65-79
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4.1 基因突变的PCR技术制备新型IL-2 | 第65-66
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4.2 受体菌KM71和表达载体pPIC9K的选择 | 第66-69
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4.2.1 受体菌 | 第66-67
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4.2.2 载体 | 第67-69
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· 3 质粒在大肠杆菌中的转化以及在酵母细胞中的转化 | 第69-71
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4.3.1 质粒在大肠杆菌中的转化 | 第69-70
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4.3.2 质粒在酵母细胞中的转化 | 第70-71
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· 4 筛选转化子 | 第71-72
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· 5 巴斯德毕赤酵母表达菌株的生长 | 第72-73
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· 6 测活方法的比较 | 第73-74
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· 7 纯化的设计思路 | 第74-77
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4.8 rhIL-2天然蛋白和突变蛋白的性质比较 | 第77-79
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结论 | 第79-81
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致谢 | 第81-82
页 |
参考文献 | 第82-87
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附录:攻博期间论文发表情况科技查新报告 | 第87-93页 |