论文目录 | |
| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-51页 |
| · 大麦的营养及主要生物活性成分 | 第19-24页 |
| · 大麦的营养特点 | 第19页 |
| · 大麦主要生物活性成分的含量及功能 | 第19-22页 |
| · 大麦主要生物活性成分的遗传研究 | 第22-24页 |
| · 基于连锁作图的 QTL 定位分析 | 第24-27页 |
| · QTL 作图群体的选择 | 第24-25页 |
| · DNA 分子标记的选择及类型 | 第25-26页 |
| · QTL 作图统计分析方法 | 第26页 |
| · 大麦分子遗传图谱的构建及品质性状的遗传作图 | 第26-27页 |
| · QTL 定位的局限性 | 第27页 |
| · 基于连锁不平衡的关联分析 | 第27-35页 |
| · 关联分析的原理 | 第28-29页 |
| · 关联分析的基本策略 | 第29-31页 |
| · 关联分析在植物遗传研究中的应用 | 第31-34页 |
| · 大麦数量性状的关联分析研究 | 第34-35页 |
| · 本课题立题依据与研究内容 | 第35-38页 |
| · 本课题立题依据 | 第35-36页 |
| · 本课题研究内容 | 第36-38页 |
| 参考文献 | 第38-51页 |
| 第二章 大麦关联定位群体的构建 | 第51-68页 |
| · 仪器与材料 | 第52-55页 |
| · 主要仪器 | 第52页 |
| · 主要材料 | 第52-55页 |
| · 试验方法 | 第55-56页 |
| · 植物基因组 DNA 提取 | 第55页 |
| · SSR 扩增及荧光检测 | 第55页 |
| · 数据处理与分析 | 第55-56页 |
| · 结果与分析 | 第56-62页 |
| · 野生型大麦、地方型大麦及改良栽培型大麦的遗传多样性 | 第56-58页 |
| · 不同地理生态大麦群体的遗传多样性 | 第58-59页 |
| · 不同大麦群体间的分子方差分析 | 第59页 |
| · 大麦群体的遗传分化及聚类分析 | 第59-62页 |
| · 讨论 | 第62-63页 |
| · 供试大麦材料 DNA 分子水平上的遗传多样性 | 第62页 |
| · 大麦的地理生态分化及聚类分析 | 第62-63页 |
| · 本章小结 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
| 第三章 大麦 EcoTILLING 技术体系的优化 | 第68-84页 |
| · 仪器与材料 | 第69-70页 |
| · 主要仪器 | 第69页 |
| · 主要材料 | 第69-70页 |
| · 试验方法 | 第70-72页 |
| · 植物基因组 DNA 提取 | 第70页 |
| · 巢式 PCR 扩增体系的优化 | 第70-71页 |
| · CEL I 酶切体系的优化 | 第71-72页 |
| · 不同大麦材料的 EcoTILLING 技术分析 | 第72页 |
| · 酶切片断的检测及荧光扫描 | 第72页 |
| · 结果与分析 | 第72-78页 |
| · 退火温度对第一次 PCR 扩增的影响 | 第72页 |
| · DNA 模板量对第一次 PCR 扩增的影响 | 第72-73页 |
| · 退火温度和模板量对第二次 PCR 扩增的影响 | 第73-75页 |
| · CEL I 酶用量及酶切时间对 EcoTILLING 的影响 | 第75-76页 |
| · 大麦材料的 EcoTILLING 技术分析 | 第76-78页 |
| · 讨论 | 第78-79页 |
| · EcoTILLING 技术中特异性引物的设计 | 第78页 |
| · EcoTILLING 技术中 PCR 扩增体系的优化 | 第78页 |
| · EcoTILLING 技术中 CEL I 酶切体系的优化 | 第78-79页 |
| · 本章小结 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-84页 |
| 第四章 四个候选基因内单核苷酸多态性的分析 | 第84-103页 |
| · 仪器与材料 | 第85页 |
| · 主要仪器 | 第85页 |
| · 主要材料 | 第85页 |
| · 试验方法 | 第85-87页 |
| · 植物基因组 DNA 提取 | 第85页 |
| · 核苷酸多态性的检测 | 第85-86页 |
| · DNA 测定与统计分析 | 第86-87页 |
| · 结果与分析 | 第87-96页 |
| · 四个候选基因内核苷酸多态性的特征 | 第87-91页 |
| · 核苷酸多样性的评价及自然选择的统计分析 | 第91-93页 |
| · 四个候选基因内多态位点间连锁不平衡分析 | 第93-94页 |
| · 不同大麦群体内核苷酸多态性分析 | 第94-96页 |
| · 讨论 | 第96-97页 |
| · 大麦核苷酸多态性的分布特点 | 第96页 |
| · 四个候选基因内的核苷酸多态性及选择压力 | 第96-97页 |
| · 本章小结 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-103页 |
| 第五章 大麦生物活性成分的 QTL 关联分析 | 第103-124页 |
| · 仪器与材料 | 第104页 |
| · 主要仪器 | 第104页 |
| · 主要材料 | 第104页 |
| · 试验方法 | 第104-107页 |
| · 田间试验及表型性状的观测 | 第104-105页 |
| · 大麦材料的基因型分析 | 第105页 |
| · 群体结构分析 | 第105-106页 |
| · 关联分析 | 第106页 |
| · 优异位点及优异等位变异的确认 | 第106-107页 |
| · 结果与分析 | 第107-120页 |
| · 大麦群体表型性状的变异及相关性分析 | 第107-109页 |
| · 大麦群体结构的分析 | 第109-110页 |
| · 大麦表型性状的关联分析 | 第110-112页 |
| · 大麦表型性状优异等位基因的发掘 | 第112-120页 |
| · 讨论 | 第120-121页 |
| · 大麦材料的分群及表型性状的关联 | 第120页 |
| · 优异关联位点及优异等位变异的应用 | 第120-121页 |
| · 本章小结 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-124页 |
| 第六章 麦绿素的制备及其稳定性研究 | 第124-141页 |
| · 仪器与材料 | 第125页 |
| · 主要仪器 | 第125页 |
| · 主要材料 | 第125页 |
| · 试验方法 | 第125-129页 |
| · 麦苗最佳刈青期的确定 | 第125页 |
| · 麦绿素制备的一般工艺流程 | 第125-126页 |
| · 麦绿素浸提条件的优化 | 第126-127页 |
| · 麦绿素营养品质及抗氧化性的稳定性分析 | 第127页 |
| · 检测方法 | 第127-129页 |
| · 结果与分析 | 第129-135页 |
| · 麦苗不同生长期营养成分的变化 | 第129-131页 |
| · 不同浸提方法对麦绿素品质的影响 | 第131-132页 |
| · 超声波-微波协同浸提麦绿素的最适条件 | 第132-134页 |
| · 贮藏条件对麦绿素营养品质及抗氧化活性的影响 | 第134-135页 |
| · 讨论 | 第135-137页 |
| · 麦绿素加工原料麦苗的适宜刈青期 | 第135-136页 |
| · 超声波-微波协同浸提麦绿素 | 第136-137页 |
| · 麦绿素营养成分及抗氧化活性的稳定性 | 第137页 |
| · 本章小结 | 第137-138页 |
| 参考文献 | 第138-141页 |
| 结论与展望 | 第141-145页 |
| · 结论 | 第141-142页 |
| · 创新点 | 第142-143页 |
| · 展望 | 第143-145页 |
| 附录 | 第145-153页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第153-154页 |
| 致谢 | 第154-155页 |
| 附件 | 第155页 |
