论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 英文缩略表 | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-37页 |
| 1 玉米根系简介 | 第17-19页 |
| 1.1 玉米根系结构 | 第17-19页 |
| 1.2 玉米根系发育突变体 | 第19页 |
| 2 生长素的合成、运输及信号转导 | 第19-27页 |
| 2.1 生长素的合成 | 第20-22页 |
| 2.2 生长素的极性运输 | 第22-27页 |
| 2.2.1 PIN(PIN-FORMED)基因家族 | 第24-25页 |
| 2.2.2 ABCB(ATP-binding cassette familyB)基因家族 | 第25-26页 |
| 2.2.3 AUXIN1/LIKE-AUX1s基因家族 | 第26页 |
| 2.2.4 PIN-LIKEs基因家族 | 第26-27页 |
| 2.3 生长素信号转导 | 第27页 |
| 3 生长素参与了植物根的生长发育 | 第27-29页 |
| 3.1 生长素参与了胚胎发育中主根的起始 | 第28页 |
| 3.2 生长素通过调控根尖干细胞微环境米主导根的生长发育 | 第28-29页 |
| 4 生长素介导非生物逆境调控植物根的生长发育 | 第29-33页 |
| 4.1 生长素和ABA参与了盐胁迫对植物根系生长发育的影响 | 第29-30页 |
| 4.2 铝胁迫对植物根系生长发育的影响 | 第30-33页 |
| 4.2.1 铝胁迫抑制根的生长 | 第31页 |
| 4.2.2 生长素参与调控铝胁迫对根生长的抑制 | 第31-32页 |
| 4.2.3 生长素局部合成介导了铝对根伸长的抑制 | 第32页 |
| 4.2.4 生长素极性运输参与了铝胁迫抑制的根伸长 | 第32-33页 |
| 5 microRNA参与了玉米根系响应逆境胁迫的过程 | 第33-35页 |
| 5.1 microRNA是植物根系生长发育的重要调控因子 | 第33-34页 |
| 5.2 玉米中MicroRNA参与了根系对逆境胁迫的响应 | 第34-35页 |
| 6 项目研究和意义 | 第35-37页 |
| 第二章 玉米根系响应逆境胁迫因子的差异性生长反应研究 | 第37-65页 |
| 1 引言 | 第37-38页 |
| 2 实验材料 | 第38页 |
| 2.1 植物材料 | 第38页 |
| 2.2 实验试剂 | 第38页 |
| 2.3 实验仪器 | 第38页 |
| 3 实验方法 | 第38-45页 |
| 3.1 植物培养 | 第38-39页 |
| 3.2 溶液配制 | 第39-40页 |
| 3.3 石蜡切片观察根系结构 | 第40-41页 |
| 3.3.1 染色前处理 | 第40页 |
| 3.3.2 切片 | 第40-41页 |
| 3.3.3 染色 | 第41页 |
| 3.3.4 观察拍照 | 第41页 |
| 3.4 小RNA库的准备和测序 | 第41-42页 |
| 3.5 铝(AlCl_3)处理玉米不同根型 | 第42页 |
| 3.6 盐(NaCl)处理玉米不同根型和cDNA库的准备与测序 | 第42-43页 |
| 3.7 植物总RNA的提取(QIAGEN) | 第43页 |
| 3.8 RNA反转录 | 第43-44页 |
| 3.9 Real-time PCR | 第44页 |
| 3.10 可溶性糖的测定 | 第44-45页 |
| 4 结果与分析 | 第45-61页 |
| 4.1 玉米不同根型(PR、CR和SR)具有不同的解剖结构 | 第45-48页 |
| 4.2 玉米不同根型具有差异的microRNA表达模式 | 第48-50页 |
| 4.2.1 玉米中保守miRNA的鉴定 | 第48页 |
| 4.2.2 玉米novel miRNA的预测 | 第48-49页 |
| 4.2.3 miRNA在玉米不同根中表达模式分析 | 第49-50页 |
| 4.3 玉米PR,CR和SR表现出对铝胁迫的差异生长反应 | 第50-51页 |
| 4.4 miRNAs在玉米不同根型在响应铝胁迫过程中具有不同的表达模式 | 第51-52页 |
| 4.5 PR比CR、SR具有更强的盐胁迫耐受性 | 第52-53页 |
| 4.6 盐胁迫调控的基因在PR、CR和SR中具有不同的表达模式 | 第53-55页 |
| 4.7 盐胁迫下差异响应基因(DTGs)的功能分类 | 第55-61页 |
| 4.7.1 氧化还原酶相关的DTGs | 第56-59页 |
| 4.7.2 糖基水解酶相关的DTGs | 第59页 |
| 4.7.3 植物激素合成相关的DTGs | 第59-60页 |
| 4.7.4 差异表达的转录因子 | 第60-61页 |
| 4.8 盐胁迫下主根积累了更多的可溶性糖 | 第61页 |
| 5 讨论 | 第61-65页 |
| 第三章 zmpgp1突变体的筛选、鉴定和功能分析 | 第65-89页 |
| 1 引言 | 第65页 |
| 2 实验材料 | 第65-66页 |
| 2.1 植物材料 | 第65-66页 |
| 2.2 实验试剂 | 第66页 |
| 2.3 实验仪器 | 第66页 |
| 3 实验方法 | 第66-71页 |
| 3.1 植物培养 | 第66页 |
| 3.2 溶液配制 | 第66-67页 |
| 3.3 CTAB法提取植,物基因组DNA | 第67页 |
| 3.4 目的片段的回收 | 第67-68页 |
| 3.5 植物RNA提取(QIAGEN) | 第68页 |
| 3.6 RNA反转录 | 第68页 |
| 3.7 Real-time PCR | 第68页 |
| 3.8 突变体筛选和遗传分析 | 第68页 |
| 3.9 用EcMutMap进行图位克隆 | 第68-69页 |
| 3.10 铝(Al)胁迫结合NAA和ACC处理玉为主根 | 第69-70页 |
| 3.10.1 铝胁迫处理玉米主根 | 第69-70页 |
| 3.10.2 铝胁迫结合NAA处理玉米主根 | 第70页 |
| 3.10.3 胁迫结合ACC处理玉米主根 | 第70页 |
| 3.11 根尖生长素含量测定 | 第70页 |
| 3.12 苏木精染色 | 第70-71页 |
| 3.13 铝含量的测定 | 第71页 |
| 3.14 激光共聚焦观察 | 第71页 |
| 4 结果与分析 | 第71-85页 |
| 4.1 zmpgp1突变体的鉴定 | 第71-75页 |
| 4.1.1 zmpgp1突变体的筛选与遗传分析 | 第71-73页 |
| 4.1.2 用EcMutMap的方法进行图位克隆 | 第73-75页 |
| 4.2 zmpgp1具有短根表型并且对外源生长素处理敏感性降低 | 第75-76页 |
| 4.3 ZmPGP1的突变缓解了铝胁迫对根伸长的抑制 | 第76-79页 |
| 4.4 外源施加生长素消除了野生型对照B73和zmpgp1突变体在铝胁迫条件下根伸长的差异 | 第79-80页 |
| 4.5 铝胁迫下zmpgp1比野生型B73在根尖中积累了更多的生长素 | 第80-82页 |
| 4.6 zmpgp1突变体根尖具有明显增强的生长素信号响应 | 第82-84页 |
| 4.7 ZmPGP1受铝胁迫和乙烯调控 | 第84-85页 |
| 5 讨论 | 第85-89页 |
| 5.1 铝胁迫降低了玉米根尖生长素水平从而抑制根的生长 | 第85-86页 |
| 5.2 ZmPGP1降低了玉米根尖铝胁迫条件下生长素在根尖的积累进而抑制根伸长 | 第86-87页 |
| 5.3 铝胁迫诱导的玉米ZmPGP1表达受乙烯调控 | 第87-89页 |
| 总结 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-109页 |
| 附表 论文所用部分引物 | 第109-113页 |
| 致谢 | 第113-115页 |
| 博士期间发表论文 | 第115-116页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第116页 |
