氧化葡萄糖酸杆菌高密度培养及生物催化合成羟基酸的研究 |
论文目录 | | | 摘要 | 第1-7
页 | | Abstract | 第7-16
页 | | 第一章 前言 | 第16-36
页 | | · 高密度培养技术 | 第16-17
页 | | · 生物催化与生物转化 | 第17-19
页 | | · 手性技术 | 第19-20
页 | | · 手性技术与手性产品 | 第19
页 | | · 手性化合物的制备方法 | 第19-20
页 | | · 手性源 | 第19-20
页 | | · 消旋体拆分 | 第20
页 | | · 不对称合成 | 第20
页 | | · 氧化葡萄糖酸杆菌的特性 | 第20-21
页 | | · 氧化葡萄糖酸杆菌的基因组特征与脱氢酶 | 第21-23
页 | | · 氧化葡萄糖酸杆菌的应用于开发 | 第23-27
页 | | · 维生素C的生产 | 第24
页 | | · 合成米格列醇 | 第24-25
页 | | · 合成葡萄糖酸和酮基葡萄糖酸 | 第25-26
页 | | · 合成二羟基丙酮 | 第26-27
页 | | · 氧化葡萄糖酸杆菌在手性催化方面的应用 | 第27-28
页 | | · 羟基乙酸的性质和应用及生产工艺 | 第28-30
页 | | · 羟基乙酸的性质及应用 | 第28-29
页 | | · 羟基乙酸的制备方法 | 第29-30
页 | | · 化学法 | 第29
页 | | · 生物法 | 第29-30
页 | | · β-羟基异丁酸的应用和生产工艺 | 第30-34
页 | | · β-羟基异丁酸的应用 | 第30-34
页 | | · β-羟基异丁酸的制备方法 | 第34
页 | | · 化学法 | 第34
页 | | · 生物法 | 第34
页 | | · 本研究论文选题的依据和意义以及主要研究内容 | 第34-36
页 | | 第二章 氧化葡萄糖酸杆菌的高密度培养 | 第36-53
页 | | · 引言 | 第36
页 | | · 材料与方法 | 第36-40
页 | | · 实验材料 | 第36-37
页 | | · 菌种 | 第36
页 | | · 试剂 | 第36-37
页 | | · 实验仪器 | 第37
页 | | · 实验方法 | 第37
页 | | · 菌种活化 | 第37
页 | | · 菌体摇瓶培养 | 第37
页 | | · 菌体发酵罐培养 | 第37
页 | | · 分析方法 | 第37-40
页 | | · 菌体浓度测定 | 第37-38
页 | | · 乙二醇的测定 | 第38
页 | | · 乙二醇标准曲线制作 | 第38-39
页 | | · 羟基乙酸的测定 | 第39
页 | | · 羟基乙酸标准曲线 | 第39-40
页 | | · 细胞催化活性的测定 | 第40
页 | | · 结果与讨论 | 第40-52
页 | | · 不同保藏菌株性能考察 | 第40
页 | | · 培养基优化 | 第40-44
页 | | · 碳源的选择 | 第40-41
页 | | · 氮源的选择 | 第41-42
页 | | · 无机盐的选择 | 第42
页 | | · 均匀设计实验 | 第42-44
页 | | · 模型的验证 | 第44
页 | | · 菌体培养条件的优化 | 第44-48
页 | | · 培养温度对菌体生长和细胞催化活性的影响 | 第44
页 | | · pH对菌体生长和细胞催化活性的影响 | 第44-46
页 | | · 溶氧对菌体生长和细胞催化活性的影响 | 第46-47
页 | | · 培养时间对菌体生长和细胞催化活性的影响 | 第47-48
页 | | · 发酵罐放大培养 | 第48-51
页 | | · 分批发酵 | 第48-49
页 | | · 补料分批发酵 | 第49-51
页 | | · 优化前后细胞催化活性的比较 | 第51-52
页 | | · 本章小结 | 第52-53
页 | | 第三章 氧化葡萄糖酸杆菌催化乙二醇生成羟基酸的研究 | 第53-68
页 | | · 引言 | 第53
页 | | · 材料与方法 | 第53-55
页 | | · 实验材料 | 第53-54
页 | | · 菌种 | 第53-54
页 | | · 试剂 | 第54
页 | | · 实验仪器 | 第54
页 | | · 实验方法 | 第54
页 | | · 菌体的培养 | 第54
页 | | · 乙二醇转化反应 | 第54
页 | | · 分析方法 | 第54-55
页 | | · 乙二醇的测定 | 第54
页 | | · 羟基乙酸的测定 | 第54-55
页 | | · 结果与讨论 | 第55-67
页 | | · 乙二醇催化反应关键酶的确定 | 第55-56
页 | | · 静息细胞催化乙二醇生成羟基乙酸的反应过程研究 | 第56-64
页 | | · 反应温度对催化乙二醇反应的影响 | 第56
页 | | · 溶氧对催化乙二醇反应的影响 | 第56-59
页 | | · 摇床转速对催化乙二醇反应的影响 | 第56-57
页 | | · 添加氧载体对催化乙二醇反应的影响 | 第57-59
页 | | · pH对乙二醇转化的影响 | 第59
页 | | · 细胞浓度对催化乙二醇反应的影响 | 第59-60
页 | | · 底物浓度对催化乙二醇反应的影响 | 第60-61
页 | | · 羟基乙酸浓度对催化乙二醇反应的影响 #46. | 第61
页 | | · 添加不同金属离子对乙二醇转化的影响 | 第61-62
页 | | · 菌体培养阶段添加醇类物质对菌体转化能力的影响 | 第62-63
页 | | · 细胞的重复使用 | 第63-64
页 | | · 3.7L生物反应器放大研究 | 第64-67
页 | | · 不同细胞浓度下转化乙二醇生成羟基乙酸 | 第64-65
页 | | · 用流加方式转化乙二醇 | 第65-67
页 | | · 本章小结 | 第67-68
页 | | 第四章 生物反应分离耦合技术制备羟基乙酸 | 第68-82
页 | | · 引言 | 第68
页 | | · 材料与方法 | 第68-72
页 | | · 实验材料 | 第68-69
页 | | · 菌种 | 第68-69
页 | | · 试剂 | 第69
页 | | · 实验仪器 | 第69
页 | | · 实验方法 | 第69-72
页 | | · 分离介质的筛选 | 第69
页 | | · 树脂的预处理 | 第69-70
页 | | · 树脂的性能研究 | 第70
页 | | · 细胞的固定化 | 第70-71
页 | | · 原位分离 | 第71-72
页 | | · 结果与讨论 | 第72-81
页 | | · 分离介质的筛选及性能考察 | 第72-77
页 | | · 离子交换树脂的筛选 | 第72-73
页 | | · D315树脂静态吸附羟基乙酸的平衡时间 | 第73-74
页 | | · pH值对树脂D315吸附羟基乙酸的影响 | 第74-75
页 | | · 温度对D315树脂吸附羟基乙酸的影响 | 第75-76
页 | | · 溶液中乙二醇浓度对D315树脂吸附羟基乙酸的影响 | 第76
页 | | · D315树脂对乙二醇的吸附能力 | 第76-77
页 | | · 洗脱系统的研究 | 第77
页 | | · 反应分离耦合工艺的研究 | 第77-81
页 | | · 固定化细胞原位分离转化乙二醇生成羟基乙酸工艺的研究 | 第78-80
页 | | · 固定化细胞和游离细胞活性的比较 | 第78
页 | | · 固定化细胞催化稳定性 | 第78-79
页 | | · 原位分离体系中固定化细胞转化乙二醇的过程 | 第79-80
页 | | · 中空纤维膜反应器原位分离转化乙二醇生成羟基乙酸工艺的研究 | 第80-81
页 | | · 本章小结 | 第81-82
页 | | 第五章 羟基乙酸的分离纯化 | 第82-87
页 | | · 引言 | 第82
页 | | · 材料和方法 | 第82-83
页 | | · 主要仪器和材料 | 第82
页 | | · 实验方法 | 第82-83
页 | | · 羟基乙酸转化液 | 第82-83
页 | | · 脱色 | 第83
页 | | · 离子交换树脂的处理 | 第83
页 | | · 离子交换树脂纯化羟基乙酸 | 第83
页 | | · 结晶 | 第83
页 | | · 分析方法 | 第83
页 | | · 乙二醇和羟基乙酸的测定 | 第83
页 | | · 脱色率的测定 | 第83
页 | | · 具体步骤 | 第83
页 | | · 结果与讨论 | 第83-86
页 | | · 羟基乙酸转化液脱色 | 第83-85
页 | | · 活性炭用量对脱色的影响 | 第83-85
页 | | · 时间对活性炭吸附及脱色的影响 | 第85
页 | | · 阴离子交换 | 第85
页 | | · 阳离子交换 | 第85
页 | | · 羟基乙酸结晶的研究 | 第85-86
页 | | · 本章小结 | 第86-87
页 | | 第六章 氧化葡萄糖酸杆菌立体选择催化2-甲基-1,3-丙二醇合成(R)-β-羟基异丁酸 | 第87-103
页 | | · 引言 | 第87
页 | | · 材料与方法 | 第87-91
页 | | · 实验材料 | 第87-88
页 | | · 菌种 | 第87-88
页 | | · 试剂 | 第88
页 | | · 实验仪器 | 第88
页 | | · 实验方法 | 第88
页 | | · 菌体培养 | 第88
页 | | · 2-甲基-1,3-丙二醇转化反应 | 第88
页 | | · 分析方法 | 第88-91
页 | | · 2-甲基-1,3-丙二醇测定方法的确定 | 第88-89
页 | | · 2-甲基-1,3-丙二醇标准曲线制作 | 第89
页 | | · β-羟基异丁酸测定方法的确定 | 第89-90
页 | | · β-羟基异丁酸标准曲线的制作 | 第90
页 | | · β-羟基异丁酸对映体过量值测定条件的确定 | 第90-91
页 | | · 光学纯度的计算 | 第91
页 | | · 产物的分离纯化 | 第91
页 | | · 结果与讨论 | 第91-102
页 | | · 氧化葡萄糖酸杆菌静息细胞催化2-甲基-1,3-丙二醇生成的产物鉴定 | 第91-96
页 | | · 氧化葡萄糖酸杆菌静息细胞催化2-甲基-1,3-丙二醇时的产物生成情况 | 第91-93
页 | | · 产物的分离纯化 | 第93-94
页 | | · 产物的鉴定 | 第94-95
页 | | · 产物β-羟基异丁酸的精制 | 第95-96
页 | | · 氧化葡萄糖酸杆菌中负责催化2-甲基-1,3-丙二醇的关键酶的确定 | 第96-97
页 | | · 静息细胞转化2-甲基-1,3-丙二醇生成(R)-β-羟基异丁酸的反应过程研究 | 第97-101
页 | | · 底物浓度对产物生成和选择性的影响 | 第97-98
页 | | · 细胞浓度对反应的影响 | 第98-99
页 | | · pH对2-甲基-1,3-丙二醇转化反应的影响 | 第99-100
页 | | · 温度对2-甲基-1,3-丙二醇转化的影响 | 第100
页 | | · 在培养基中添加诱导物对反应的影响 | 第100-101
页 | | · 3.7L生物反应器放大反应 | 第101-102
页 | | · 本章小结 | 第102-103
页 | | 第7章 结论与展望 | 第103-106
页 | | · 结论 | 第103-104
页 | | · 展望 | 第104-106
页 | | 参考文献 | 第106-115
页 | | 博士期间论文发表情况 | 第115-116
页 | | 致谢 | 第116-118
页 |
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