论文目录 | |
| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 引言 | 第16-19页 |
| 第一章 文献研究 | 第19-36页 |
| 第一节 水产动物多糖的研究进展 | 第19-30页 |
| 一、水产动物多糖的提取 | 第20-23页 |
| 二、水产动物多糖的分离纯化 | 第23-27页 |
| 三、水产动物多糖的结构表征 | 第27-29页 |
| 四、水产动物多糖的药理活性 | 第29-30页 |
| 五、小结 | 第30页 |
| 第二节 田螺多糖的研究进展 | 第30-31页 |
| 第三节 AS斑块内血管新生与斑块稳定性的研究进展 | 第31-32页 |
| 第四节 PI3K/Akt/mTOR信号转导通路血管新生调控中的研究进展 | 第32-33页 |
| 第五节 硫酸多糖抗AS的研究进展 | 第33-36页 |
| 一、硫酸多糖抑制血管内皮细胞损伤 | 第34页 |
| 二、硫酸多糖调节血管平滑肌细胞增殖和迁移 | 第34-35页 |
| 三、硫酸多糖减少炎性细胞、淋巴细胞、血小板等粘附和聚集到血管内膜 | 第35页 |
| 四、小结 | 第35-36页 |
| 第二章 CCPSs制备方法的构建 | 第36-74页 |
| 第一节 CCPSs粗多糖超声同步耦合酶解提取法的构建 | 第36-52页 |
| 一、实验材料、试剂及主要仪器 | 第36-37页 |
| 二、实验方法 | 第37-40页 |
| 三、实验结果与分析 | 第40-51页 |
| 四、小结与讨论 | 第51-52页 |
| 第二节 CCPSs粗多糖中蛋白杂质循环冻融脱除法的构建 | 第52-66页 |
| 一、实验材料、主要仪器及试剂 | 第52-54页 |
| 二、实验方法 | 第54-57页 |
| 三、实验结果与分析 | 第57-65页 |
| 四、小结与讨论 | 第65-66页 |
| 第三节 CCPSs粗多糖离子交换与分子筛凝胶柱色谱联合分级纯化法的构建 | 第66-73页 |
| 一、实验试剂及主要仪器 | 第66-67页 |
| 二、实验方法 | 第67-70页 |
| 三、实验结果与分析 | 第70-73页 |
| 四、小结与讨论 | 第73页 |
| 第四节 本章小结 | 第71-74页 |
| 第三章 CCPSs理化性质及结构鉴定研究 | 第74-91页 |
| 一、实验主要仪器及试剂 | 第74-76页 |
| (一) 主要仪器 | 第74-75页 |
| (二) 实验试剂 | 第75-76页 |
| 二、实验方法 | 第76-80页 |
| (一) CCPSs的制备 | 第76页 |
| (二) CCPSs的脱硫 | 第76页 |
| (三) CCPSs外观性状观察和溶解度的测定 | 第76页 |
| (四) CCPSs总糖含量的测定 | 第76页 |
| (五) CCPSs蛋白质含量的测定[14] | 第76页 |
| (六) CCPSs中硫酸基含量的测定 | 第76-77页 |
| (七) CCPSs糖醛酸含量的测定 | 第77页 |
| (八) CCPSs的UV-vis光谱分析 | 第77页 |
| (九) CCPSs及其甲基化样品的IR光谱分析 | 第77页 |
| (十) CCPSs单糖组成的测定 | 第77页 |
| (十一) CCPSs分子量测定及均质性的评价 | 第77页 |
| (十二) 高碘酸氧化和Smith降解分析 | 第77-78页 |
| (十三) 甲基化分析 | 第78-80页 |
| (十四) 核磁共振波谱分析 | 第80页 |
| 三、实验结果与分析 | 第80-89页 |
| (一) CCPSs性状观察和溶解度测定结果与分析 | 第80页 |
| (二) 总糖、硫酸基、蛋白质和糖醛酸含量测定结果与分析 | 第80页 |
| (三) CCPSs的UV-vis和IR光谱分析结果与分析 | 第80-81页 |
| (四) CCPSs的单糖组成测定结果与分析 | 第81-82页 |
| (五) CCPSs的分子量测定及均质性评价结果与分析 | 第82-83页 |
| (六) CCPSs和dsCCPSs的高碘酸氧化和Smith降解结果与分析 | 第83页 |
| (七) CCPSs和dsCCPSs的甲基化结果与分析 | 第83-86页 |
| (八) CCPSs的NMR波谱结果与分析 | 第86-89页 |
| 四、本章小结与讨论 | 第89-91页 |
| 第四章 CCPSs稳定动脉粥样硬化斑块的作用研究 | 第91-109页 |
| 一、实验动物、材料、主要试剂及仪器 | 第91-92页 |
| (一) 实验动物 | 第91-92页 |
| (二) 实验原料 | 第92页 |
| (三) 主要试剂 | 第92页 |
| (四) 主要仪器 | 第92页 |
| 二、实验方法 | 第92-97页 |
| (一) 给药剂量的选择 | 第92-93页 |
| (二) 动物饲养及伦理 | 第93页 |
| (三) 动物模型复制及给药方案 | 第93-94页 |
| (四) 病理取材 | 第94页 |
| (五) 药效评价 | 第94-96页 |
| (六) 数据统计学分析与处理 | 第96-97页 |
| 三、实验结果与分析 | 第97-106页 |
| (一) 分组给药前的模型确认 | 第97页 |
| (二) 药物干预过程中各组小鼠体重的变化情况 | 第97页 |
| (三) CCPSs对AS小鼠血脂水平及AI的影响 | 第97-99页 |
| (四) CCPSs对小鼠主动脉和斑块形态及斑块与管腔面积比例的影响 | 第99-101页 |
| (五) CCPSs对小鼠主动脉斑块内脂质含量的影响 | 第101页 |
| (六) CCPSs对小鼠主动脉斑块内巨噬细胞含量的影响 | 第101-102页 |
| (七) CCPSs对小鼠主动脉斑块内胶原含量的影响 | 第102-104页 |
| (八) CCPSs对小鼠主动脉斑块内平滑肌细胞含量的影响 | 第104-105页 |
| (九) CCPSs对小鼠主动脉斑块内VI值的影响 | 第105-106页 |
| 四、小结与讨论 | 第106-109页 |
| 第五章 CCPSs稳定AS斑块的作用机制研究 | 第109-126页 |
| 一、实验材料、主要仪器及试剂 | 第110-111页 |
| (一) 实验动物 | 第110页 |
| (二) 实验细胞 | 第110页 |
| (三) 实验材料 | 第110页 |
| (四) 主要仪器 | 第110页 |
| (五) 主要试剂 | 第110-111页 |
| 二、实验方法 | 第111-115页 |
| (一) 体内动物实验 | 第111-113页 |
| (二) 体外细胞实验 | 第113-115页 |
| (三) 统计学方法 | 第115页 |
| 三、实验结果与分析 | 第115-123页 |
| (一) CCPSs对斑块内血管新生的影响 | 第115-116页 |
| (二) CCPSs对斑块内PI3K/Akt/mTOR通路信号分子的mRNA和蛋白表达影响 | 第116-118页 |
| (三) CCPSs对斑块内VEGF和MMP-9信号分子的mRNA和蛋白表达影响 | 第118-119页 |
| (四) CCPSs对HUVECs的细胞毒性 | 第119-122页 |
| (五) CCPSs对HUVECs通路信号分子的mRNA和蛋白表达影响 | 第122页 |
| (六) CCPSs对HUVECs的Matrigel胶管腔形成情况的影响 | 第122-123页 |
| 四、小结与讨论 | 第123-126页 |
| 结语 | 第126-128页 |
| 参考文献 | 第128-141页 |
| 附录 | 第141-143页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第143-144页 |
| 致谢 | 第144-146页 |
| 统计学审核证明 | 第146页 |
