论文目录 | |
| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 英文缩写和注释 | 第17-19页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 第一部分 文献综述 | 第21-34页 |
| 第一章 氧化应激与免疫抑制 | 第22-30页 |
| 第一节 氧化应激与免疫抑制发生的原因 | 第22-23页 |
| 第二节 机体的抗氧化系统与免疫的关系 | 第23-25页 |
| 第三节 氧化应激和免疫抑制的防治 | 第25-26页 |
| 第四节 诱导免疫抑制的常用药物 | 第26-28页 |
| 第五节 环磷酰胺诱导免疫抑制和氧化应激的原理 | 第28-30页 |
| 第二章 人参的化学组成及其药理作用 | 第30-34页 |
| 第一节 人参多糖的化学组成及其功效 | 第30页 |
| 第二节 人参多肽的化学组成及其功效 | 第30-31页 |
| 第三节 人参皂苷的化学组成及其功效 | 第31-34页 |
| 第二部分 试验研究 | 第34-35页 |
| 第一章 口服不同人参皂苷单体对鸡肠道粘膜免疫功能的影响 | 第35-44页 |
| 1 材料 | 第35-38页 |
| 1.1 试验动物 | 第35页 |
| 1.2 主要试剂与药品 | 第35-38页 |
| 1.3 主要耗材与仪器 | 第38页 |
| 2 方法 | 第38-41页 |
| 2.1 动物分组与处理 | 第38页 |
| 2.2 肠道灌洗液收集和总sIgA检测 | 第38-39页 |
| 2.3 石蜡切片制作 | 第39-40页 |
| 2.4 十二指肠IELs检测 | 第40页 |
| 2.5 统计分析 | 第40-41页 |
| 3 结果 | 第41-43页 |
| 3.1 口服不同人参皂苷单体对肠道总sIgA的影响 | 第41页 |
| 3.2 口服不同人参皂苷对十二指肠IELs数的影响 | 第41-43页 |
| 本章小结 | 第43-44页 |
| 第二章 Rg1对氧化应激鸡免疫IBDV疫苗的影响 | 第44-58页 |
| 第一节 Rg1对氧化应激鸡免疫IBDV疫苗的免疫水平的影响 | 第44-52页 |
| 1 材料 | 第44-45页 |
| 1.1 试验动物 | 第44页 |
| 1.2 主要试剂与药品 | 第44-45页 |
| 1.3 主要耗材与仪器 | 第45页 |
| 2 方法 | 第45-48页 |
| 2.1 动物分组与处理 | 第45-46页 |
| 2.2 血清特异性抗体检测 | 第46-47页 |
| 2.3 血清IFN-Υ和IL-6检测 | 第47页 |
| 2.4 淋巴细胞增殖指数测定 | 第47-48页 |
| 3 结果 | 第48-52页 |
| 3.1 血清IBDV抗体滴度 | 第48-49页 |
| 3.2 血清细胞因子 | 第49-50页 |
| 3.3 淋巴细胞增殖试验 | 第50-52页 |
| 第二节 口服Rg1对氧化应激鸡血清氧化还原指标的影响 | 第52-57页 |
| 1 材料 | 第52页 |
| 1.1 试验动物 | 第52页 |
| 1.2 主要试剂与药品 | 第52页 |
| 1.3 主要耗材与仪器 | 第52页 |
| 2 方法 | 第52-53页 |
| 2.1 动物分组与处理 | 第52-53页 |
| 2.2 抗氧化检测 | 第53页 |
| 3 结果 | 第53-57页 |
| 3.1 抗氧化酶水平 | 第53-55页 |
| 3.2 还原性物质和氧化代谢物水平 | 第55-57页 |
| 本章小结 | 第57-58页 |
| 第三章 口服Rg1对鸡肠道黏膜免疫的影响 | 第58-75页 |
| 第一节 口服Rg1对鸡肠黏膜免疫指标的影响 | 第58-67页 |
| 1 材料 | 第58-59页 |
| 1.1 试验动物 | 第58页 |
| 1.2 主要试剂与药品 | 第58-59页 |
| 1.3 主要耗材与仪器 | 第59页 |
| 2 方法 | 第59-61页 |
| 2.1 动物分组与处理 | 第59页 |
| 2.2 肠道灌洗液总sIgA含量 | 第59-60页 |
| 2.3 肠道灌洗液抗IBDV特异性sIgA检测 | 第60页 |
| 2.4 石蜡切片制作 | 第60页 |
| 2.5 十二指肠黏膜IgA+细胞的检测 | 第60-61页 |
| 2.6 十二指肠IELs的检测 | 第61页 |
| 3 结果 | 第61-67页 |
| 3.1 肠道总sIgA | 第61-62页 |
| 3.2 肠道特异性sIgA | 第62-63页 |
| 3.3 十二指肠IgA+细胞数目 | 第63-65页 |
| 3.4 十二指肠IELs数目 | 第65-67页 |
| 第二节 Rg1对鸡十二指肠组织免疫相关基因mRNA表达的影响 | 第67-74页 |
| 1 材料 | 第67页 |
| 1.1 试验动物 | 第67页 |
| 1.2 主要试剂与药品 | 第67页 |
| 1.3 主要耗材与仪器 | 第67页 |
| 2 方法 | 第67-69页 |
| 2.1 动物分组与处理 | 第67-68页 |
| 2.2 十二指肠组织肠组织免疫调节基因mRNA的检测 | 第68-69页 |
| 3 结果 | 第69-74页 |
| 3.1 十二指肠组织TLR4、NF-κB基因mRNA相对表达量 | 第69-70页 |
| 3.2 十二指肠组织CD40、CD80、CD86和MHCⅡ基因的mRNA相对表达量 | 第70-71页 |
| 3.3 十二指肠组织TGF-β、IL-6和TNF-α基因的mRNA相对表达量 | 第71-72页 |
| 3.4 十二指肠组织IgA、pIgR和CCR-9基因的mRNA相对表达量 | 第72-74页 |
| 本章小结 | 第74-75页 |
| 第四章 Rg1保护过氧化氢诱导的氧化应激的鸡脾脏淋巴细胞 | 第75-96页 |
| 第一节 Rg1对氧化应激的鸡脾脏淋巴细胞的保护作用 | 第75-85页 |
| 1 材料 | 第75-76页 |
| 1.1 试验动物 | 第75页 |
| 1.2 主要试剂与药品 | 第75-76页 |
| 1.3 主要耗材与仪器 | 第76页 |
| 2 方法 | 第76-78页 |
| 2.1 细胞分离培养 | 第76页 |
| 2.2 脾脏淋巴细胞氧化应激模型的建立 | 第76页 |
| 2.3 实验设计 | 第76-77页 |
| 2.4 MTT法检测细胞存活力 | 第77页 |
| 2.5 抗氧化指标测定 | 第77页 |
| 2.6 细胞凋亡检测 | 第77-78页 |
| 2.7 膜电位变化 | 第78页 |
| 2.8 钙离子检测 | 第78页 |
| 2.9 数据统计 | 第78页 |
| 3 结果 | 第78-85页 |
| 3.1 细胞存活力 | 第78-79页 |
| 3.2 细胞内ROS、SOD和MDA变化 | 第79-80页 |
| 3.3 细胞凋亡 | 第80-81页 |
| 3.4 线粒体膜电位变化 | 第81-84页 |
| 3.5 钙离子检测 | 第84-85页 |
| 第二节 Rg1对氧化应激的鸡淋巴细胞转录组的影响 | 第85-95页 |
| 1 材料 | 第85页 |
| 1.1 试验动物 | 第85页 |
| 1.2 主要试剂与药品 | 第85页 |
| 1.3 主要耗材与仪器 | 第85页 |
| 2 方法 | 第85-89页 |
| 2.1 细胞分离培养 | 第85-86页 |
| 2.2 实验设计 | 第86页 |
| 2.3 RNA提取及生物信息学分析 | 第86-87页 |
| 2.4 差异表达基因的荧光定量PCR检测 | 第87-89页 |
| 3 结果 | 第89-95页 |
| 3.1 测序质量评估 | 第89页 |
| 3.2 差异表达分析 | 第89-92页 |
| 3.3 差异表达基因的GO功能分析 | 第92页 |
| 3.4 差异表达基因的KEGG通路分析 | 第92-93页 |
| 3.5 转录组测序分析结果的验证 | 第93-95页 |
| 本章小结 | 第95-96页 |
| 综合讨论 | 第96-104页 |
| 全文总结 | 第104-105页 |
| 创新点 | 第105-106页 |
| 研究展望 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-120页 |
| 作者筒介 | 第120-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
