论文目录 | |
| 摘要 | 第1-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 主要符号表 | 第20-21页 |
| 1 绪论 | 第21-51页 |
| 1.1 研究背景与意义 | 第21-22页 |
| 1.2 循环肿瘤细胞的捕获技术 | 第22-34页 |
| 1.2.1 基于生物物理原理的循环肿瘤细胞捕获技术 | 第23-28页 |
| 1.2.2 基于生物亲和原理的循环肿瘤细胞捕获技术 | 第28-34页 |
| 1.3 外泌体的捕获技术 | 第34-41页 |
| 1.3.1 基于生物物理原理的外泌体捕获技术 | 第34-40页 |
| 1.3.2 基于生物亲和原理的外泌体捕获技术 | 第40-41页 |
| 1.4 人工抗体技术在循环肿瘤细胞及外泌体富集中的应用 | 第41-49页 |
| 1.4.1 适配体在循环肿瘤细胞和外泌体富集中的应用 | 第41-45页 |
| 1.4.2 哺乳动物细胞印迹技术及其在肿瘤细胞捕获中的应用 | 第45-49页 |
| 1.5 本文主要研究思路 | 第49-51页 |
| 2 基于适配体的功能化开管柱制备及其在循环肿瘤细胞分析中的应用 | 第51-65页 |
| 2.1 引言 | 第51-52页 |
| 2.2 实验部分 | 第52-55页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第52-53页 |
| 2.2.2 毛细管的活化与修饰 | 第53页 |
| 2.2.3 毛细管内接枝甲基丙烯酸缩水甘油酯 | 第53页 |
| 2.2.4 金纳米粒子在毛细管内的修饰 | 第53页 |
| 2.2.5 毛细管内修饰链霉亲和素 | 第53-54页 |
| 2.2.6 适配体功能化开管柱的制备 | 第54页 |
| 2.2.7 适配体功能化开管柱用于捕获和释放SMMC-7721细胞 | 第54页 |
| 2.2.8 适配体功能化开管柱用于选择性捕获SMMC-7721细胞 | 第54页 |
| 2.2.9 被适配体功能化开管柱捕获细胞的质谱鉴定与分析 | 第51-55页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第55-63页 |
| 2.3.1 适配体功能化开管柱的制备与表征 | 第55-58页 |
| 2.3.2 适配体功能化开管柱对SMMC-7721细胞的捕获 | 第58-60页 |
| 2.3.3 适配体功能化开管柱对SMMC-7721细胞的捕获选择性 | 第60-61页 |
| 2.3.4 适配体功能化的开管柱在肿瘤细胞分析中的应用 | 第61-63页 |
| 2.4 本章小结 | 第63-65页 |
| 3 基于细胞印迹与适配体协同效应的人工抗体的制备及其在循环肿瘤细胞捕获与释放中的应用 | 第65-85页 |
| 3.1 引言 | 第65页 |
| 3.2 实验部分 | 第65-71页 |
| 3.2.1 试剂和仪器 | 第65-66页 |
| 3.2.2 三功能交联剂的制备 | 第66-67页 |
| 3.2.3 细胞培养与细胞染色 | 第67-68页 |
| 3.2.4 适配体非定向修饰的细胞印迹材料(APT-CIS)的制备 | 第68-69页 |
| 3.2.5 适配体定向修饰的细胞印迹凝胶(APT-CIH)的制备 | 第69页 |
| 3.2.6 APT-CIS和APT-CIH用于识别与捕获SMMC-7721细胞 | 第69-70页 |
| 3.2.7 APT-CIS和APT-CIH用于SMMC-7721细胞的释放与增殖 | 第70页 |
| 3.2.8 APT-CIS和APT-CIH用于选择性捕获SMMC-7721细胞 | 第70页 |
| 3.2.9 APT-CIH在血液中对肿瘤细胞的捕获 | 第70-71页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第71-84页 |
| 3.3.1 APT-CIS的制备 | 第71-74页 |
| 3.3.2 APT-CIS用于捕获和释放SMMC-7721细胞 | 第74-75页 |
| 3.3.3 APT-CIS对SMMC-7721细胞的捕获选择性 | 第75-76页 |
| 3.3.4 APT-CIH的表征分析 | 第76-79页 |
| 3.3.5 APT-CIH对SMMC-7721细胞的捕获 | 第79-81页 |
| 3.3.6 APT-CIH对SMMC-7721细胞的捕获选择性 | 第81-82页 |
| 3.3.7 APT-CIH对SMMC-7721细胞的释放及被释放细胞的增殖 | 第82-83页 |
| 3.3.8 APT-CIH在血液中对SMMC-7721细胞的捕获行为 | 第83-84页 |
| 3.4 本章小结 | 第84-85页 |
| 4 基于细胞印迹与苯硼酸协同效应的人工抗体制备及其在循环肿瘤细胞捕获与释放中的应用 | 第85-99页 |
| 4.1 引言 | 第85-86页 |
| 4.2 实验部分 | 第86-88页 |
| 4.2.1 试剂和仪器 | 第86页 |
| 4.2.2 细胞培养与细胞染色 | 第86-87页 |
| 4.2.3 苯硼酸辅助细胞印迹凝胶(PBA-CIH)的制备 | 第87页 |
| 4.2.4 PBA-CIH对SMMC-7721细胞的识别与捕获 | 第87-88页 |
| 4.2.5 PBA-CIH对SMMC-7721细胞的释放与增殖 | 第88页 |
| 4.2.6 PBA-CIH对SMMC-7721细胞的选择性捕获 | 第88页 |
| 4.2.7 PBA-CIH在血液中对SMMC-7721细胞的捕获 | 第88页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第88-98页 |
| 4.3.1 PBA-CIH的制备与表征分析 | 第88-91页 |
| 4.3.2 PBA-CIH对SMMC-7721细胞的捕获效率 | 第91-95页 |
| 4.3.3 PBA-CIH对SMMC-7721细胞的捕获选择性 | 第95-96页 |
| 4.3.4 PBA-CIH对SMMC-7721细胞的释放及被释放细胞的增殖 | 第96-97页 |
| 4.3.5 PBA-CIH用于血液中SMMC-7721细胞的捕获 | 第97-98页 |
| 4.4 本章小结 | 第98-99页 |
| 5 基于静电原理与空间效应的外泌体富集材料用于尿液和细胞培养液中外泌体的捕获与蛋白质组分析 | 第99-116页 |
| 5.1 引言 | 第99-100页 |
| 5.2 实验部分 | 第100-102页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第100页 |
| 5.2.2 纳米二氧化硅颗粒的制备 | 第100-101页 |
| 5.2.3 替代模板法制备外泌体富集材料(EXO-MIP) | 第101页 |
| 5.2.4 Hela细胞培养和培养液预处理 | 第101页 |
| 5.2.5 EXO-MIP对尿液和细胞培养液外泌体的捕获 | 第101页 |
| 5.2.6 EXO-MIP富集到外泌体的质谱鉴定与蛋白质组分析 | 第101-102页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第102-114页 |
| 5.3.1 EXO-MIP的制备与结构表征 | 第102-104页 |
| 5.3.2 EXO-MIP对尿液外泌体的富集与蛋白质组分析 | 第104-109页 |
| 5.3.3 EXO-MIP对Hela细胞培养液外泌体的富集与蛋白质组分析 | 第109-114页 |
| 5.4 本章小结 | 第114-116页 |
| 6 结论与展望 | 第116-118页 |
| 6.1 结论 | 第116页 |
| 6.2 创新点 | 第116-117页 |
| 6.3 展望 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-129页 |
| 附录A 三功能交联剂合成过程中的~1H-NMR表征结果 | 第129-131页 |
| 攻读博士学位期间科研项目及科研成果 | 第131-133页 |
| 致谢 | 第133-134页 |
| 作者简介 | 第134页 |
