论文目录 | |
| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略语 | 第10-14页 |
| 第一部分 :IL-34在桥本甲状腺炎中的变化研究 | 第14-41页 |
| 1 前言 | 第14-15页 |
| 2 材料与方法 | 第15-30页 |
| 2.1 实验对象与分组 | 第15-16页 |
| 2.1.1 患者甲状腺组织 | 第15页 |
| 2.1.2 血清样本 | 第15-16页 |
| 2.2 实验仪器与试剂 | 第16-18页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第16-17页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-30页 |
| 2.3.1 标本的收集与处理 | 第18页 |
| 2.3.2 荧光定量PCR方法检测IL-34 mRNA水平 | 第18-22页 |
| 2.3.3 ELISA检测检测血清IL-34水平 | 第22-23页 |
| 2.3.4 Nthy-ori3-1正常人甲状腺细胞系培养 | 第23页 |
| 2.3.5 Western Blot蛋白免疫印迹 | 第23-28页 |
| 2.3.6 动物实验及分组 | 第28页 |
| 2.3.7 NOD.H-2h4小鼠甲状腺组织冰冻切片HE染色 | 第28-29页 |
| 2.3.8 人甲状腺组织冰冻切片IL-34免疫组化染色 | 第29-30页 |
| 2.4 统计学处理 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-37页 |
| 3.1 临床研究对象 | 第30-34页 |
| 3.1.1 甲状腺手术患者的临床资料 | 第30-31页 |
| 3.1.2 甲状腺组织中存在IL-34的表达 | 第31页 |
| 3.1.3 HT患者和非HT患者甲状腺组织中IL-34的水平 | 第31-33页 |
| 3.1.4 收取血液样本人群的临床资料 | 第33页 |
| 3.1.5 血清中IL-34的表达水平 | 第33-34页 |
| 3.2 NOD.H-2h4小鼠研究 | 第34-36页 |
| 3.2.1 自身免疫性甲状腺炎小鼠甲状腺形态学 | 第34-35页 |
| 3.2.2 NOD.H-2h4小鼠碘水喂养后甲状腺组织IL-34的表达变化 | 第35-36页 |
| 3.3 IFN-γ对Nthy-ori3-1细胞的刺激作用 | 第36-37页 |
| 3.3.1 IFN-γ刺激后Nthy-ori3-1细胞IL-34的表达 | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37-41页 |
| 第二部分 :IL-34对甲状腺细胞凋亡的影响及其相关通路的研究 | 第41-54页 |
| 1 前言 | 第41-42页 |
| 2 材料与方法 | 第42-46页 |
| 2.1 主要仪器和主要试剂 | 第42-44页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第42-43页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第43-44页 |
| 2.2 实验方法 | 第44-46页 |
| 2.2.1 原代甲状腺细胞培养 | 第44-45页 |
| 2.2.2 Annexin-V-PI染色、流式细胞术检测甲状腺细胞凋亡 | 第45页 |
| 2.2.3 IL-34刺激体外培养的原代甲状腺细胞 | 第45页 |
| 2.2.4 甲状腺细胞CSF-1R抑制实验 | 第45-46页 |
| 2.2.5 荧光定量PCR分析 | 第46页 |
| 2.3 统计学处理 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-50页 |
| 3.1 IL-34抑制甲状腺细胞的凋亡 | 第46-50页 |
| 3.1.1 IL-34通过CSF-1R介导STAT3磷酸化参与对甲状腺细胞凋亡的调节 | 第46-49页 |
| 3.1.2 STAT3/p-STAT3参与IL-34对甲状腺细胞凋亡的调控 | 第49-50页 |
| 4 讨论 | 第50-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 综述 | 第62-76页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 个人简历 | 第78页 |
