论文目录 | |
摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略语 | 第8-12页 |
第一部分 :NIPA2与2型糖尿病性骨质疏松相关性的研究 | 第12-26页 |
1 前言 | 第12-13页 |
2 实验材料与方法 | 第13-21页 |
2.1 主要试剂、抗体、仪器及相关液体的配制 | 第13-14页 |
2.1.1 主要试剂及抗体 | 第13-14页 |
2.1.2 主要仪器 | 第14页 |
2.1.3 主要液体的配制 | 第14页 |
2.2 实验动物 | 第14-15页 |
2.3 Micro-CT扫描 | 第15页 |
2.4 免疫组化 | 第15-16页 |
2.5 细胞来源与培养方法 | 第16页 |
2.6 CCK8细胞活性检测 | 第16页 |
2.7 RNA提取 | 第16-17页 |
2.8 RNA纯度和浓度的测定 | 第17页 |
2.9 反转录反应 | 第17页 |
2.10 实时定量PCR | 第17-18页 |
2.11 Western blot检测 | 第18-19页 |
2.12 细胞内镁离子检测 | 第19-20页 |
2.13 统计学分析 | 第20-21页 |
3 结果 | 第21-24页 |
3.1 2型糖尿病性骨质疏松动物模型建立及骨组织NIPA2检测 | 第21-23页 |
3.2 不同糖浓度及处理时间对人成骨细胞hFOB1.19细胞活性的影响 | 第23页 |
3.3 高糖对hFOB1.19细胞NIPA2表达及细胞内镁离子影响 | 第23-24页 |
4 讨论 | 第24-25页 |
5 结论 | 第25-26页 |
第二部分 :2型糖尿病性骨质疏松中NIPA2与成骨细胞线粒体自噬的相关性研究 | 第26-38页 |
1 前言 | 第26-27页 |
2 实验材料与方法 | 第27-33页 |
2.1 主要试剂、抗体及仪器 | 第27页 |
2.1.1 主要试剂及抗体 | 第27页 |
2.1.2 主要仪器 | 第27页 |
2.2 细胞来源与培养方法 | 第27-28页 |
2.3 慢病毒转染 | 第28页 |
2.4 Western blot检测 | 第28-30页 |
2.5 细胞内镁离子检测 | 第30页 |
2.6 线粒体膜电位检测 | 第30-31页 |
2.7 电镜观察线粒体自噬 | 第31页 |
2.8 免疫荧光染色 | 第31-32页 |
2.9 统计学分析 | 第32-33页 |
3 结果 | 第33-36页 |
3.1 高糖对成骨细胞线粒体自噬的影响 | 第33-34页 |
3.2 高糖环境下NIPA2对成骨线粒体自噬的调控作用 | 第34-36页 |
4 讨论 | 第36-37页 |
5 结论 | 第37-38页 |
第三部分 :NIPA2通过调控线粒体自噬影响成骨细胞功能的作用及相关机制研究 | 第38-48页 |
1 前言 | 第38-39页 |
2 实验材料与方法 | 第39-43页 |
2.1 主要抗体、试剂及仪器 | 第39页 |
2.2 细胞来源与培养方法 | 第39页 |
2.3 慢病毒转染 | 第39-40页 |
2.4 Western blot检测 | 第40-42页 |
2.5 茜素红S染色 | 第42页 |
2.6 统计学分析 | 第42-43页 |
3 结果 | 第43-46页 |
3.1 NIPA2在高糖环境下调控成骨细胞功能的作用 | 第43页 |
3.2 NIPA2在高糖环境下通过线粒体自噬途径调控成骨细胞功能 | 第43-45页 |
3.3 高糖环境下NIPA2对PGC-1α/FoxO3a信号通路的影响 | 第45页 |
3.4 高糖环境下PGC-1α/FoxO3a信号通路对成骨细胞线粒体自噬及成骨功能的影响 | 第45-46页 |
4 讨论 | 第46-47页 |
5 结论 | 第47-48页 |
本研究创新性的自我评价 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-53页 |
综述 | 第53-67页 |
参考文献 | 第59-67页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第67-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
个人简介 | 第69页 |