论文目录 | |
摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-14页 |
英文缩略语 | 第15-21页 |
第一部分:Ha CaT细胞中JAK/STAT3通路与CEBPD蛋白表达的关系研究 | 第21-37页 |
1 前言 | 第21-23页 |
2 材料与方法 | 第23-29页 |
2.1 材料 | 第23-24页 |
2.1.1 细胞株 | 第23页 |
2.1.2 主要试剂 | 第23页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第23-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-28页 |
2.2.1 细胞培养 | 第24页 |
2.2.2 药物配制 | 第24页 |
2.2.3 MTS法检测IL-17A、Stattic对Ha CaT细胞增殖活性的影响 | 第24-25页 |
2.2.4 慢病毒转染 | 第25页 |
2.2.5 荧光实时定量PCR检测STAT3和CEBPDmRNA水平 | 第25-27页 |
2.2.6 Weastern blot检测p-STAT3、STAT3和CEBPD的蛋白表达水平 | 第27-28页 |
2.3 统计学处理 | 第28-29页 |
3 结果 | 第29-34页 |
3.1 MTS法检测IL-17和Stattic对Ha CaT细胞增殖活性影响 | 第29页 |
3.2 JAK/STAT3通路相关基因mRNA和蛋白表达水平的检测 | 第29-31页 |
3.2.1 JAK/STAT3通路激动剂IL-17和抑制剂Stattic对Ha CaT细胞STAT3及CEBPD mRNA表达水平的影响 | 第29-30页 |
3.2.2 JAK/STAT3通路激动剂IL-17和抑制剂Stattic对Ha CaT细胞p-STAT3、STAT3及CEBPD蛋白表达水平的影响 | 第30-31页 |
3.3 慢病毒转染沉默STAT3基因并检测JAK/STAT3通路相关基因mRNA和蛋白表达水平 | 第31-34页 |
4 讨论 | 第34-36页 |
5 结论 | 第36-37页 |
第二部分:紫草素对Ha CaT细胞凋亡和细胞周期以及JAK/STAT3通路相关蛋白的影响 | 第37-55页 |
1 前言 | 第37-39页 |
2 材料与方法 | 第39-46页 |
2.1 材料 | 第39-40页 |
2.1.1 细胞株 | 第39页 |
2.1.2 主要试剂 | 第39页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第39-40页 |
2.2 实验方法 | 第40-45页 |
2.2.1 细胞培养 | 第40页 |
2.2.2 药物配制 | 第40页 |
2.2.3 MTS法检测紫草素对Ha CaT细胞增殖活性的影响 | 第40页 |
2.2.4 慢病毒转染以建立稳定过表达STAT3基因的Ha CaT细胞 | 第40-41页 |
2.2.5 荧光实时定量PCR检测STAT3 mRNA水平 | 第41-43页 |
2.2.6 Weastern blot检测蛋白表达水平 | 第43-44页 |
2.2.7 流式细胞术检测紫草素对Ha CaT细胞凋亡的影响 | 第44-45页 |
2.2.8 紫草素作用后Ha CaT细胞周期分布的流式细胞术分析 | 第45页 |
2.3 统计学处理 | 第45-46页 |
3 结果 | 第46-52页 |
3.1 慢病毒转染成功建立STAT3过表达的Ha CaT细胞模型 | 第46-47页 |
3.1.1 慢病毒转染建立STAT3过表达的Ha CaT细胞模型 | 第46页 |
3.1.2 RT-qPCR和Western Blot验证STAT3过表达的Ha CaT细胞模型 | 第46-47页 |
3.1.3 MTS检测转染过表达STAT3基因对Ha CaT细胞增殖的影响 | 第47页 |
3.2 紫草素对Ha CaT细胞增殖活性的影响 | 第47-48页 |
3.3 紫草素对Ha CaT细胞凋亡和周期分布以及相关蛋白的影响作用 | 第48-50页 |
3.3.1 紫草素对野生型Ha CaT和LV-STAT3细胞凋亡的影响 | 第48-49页 |
3.3.2 紫草素对野生型Ha CaT和LV-STAT3细胞周期分布的影响 | 第49页 |
3.3.3 WB检测紫草素对野生型Ha CaT和LV-STAT3细胞凋亡及细胞周期相关蛋白的影响 | 第49-50页 |
3.4 紫草素对Ha CaT细胞JAK/STAT3通路相关蛋白的影响 | 第50-52页 |
4 讨论 | 第52-54页 |
5 结论 | 第54-55页 |
第三部分:紫草素对IMQ诱导的银屑病小鼠模型的治疗作用 | 第55-67页 |
1 前言 | 第55-56页 |
2 材料与方法 | 第56-60页 |
2.1 材料 | 第56页 |
2.1.1 研究对象 | 第56页 |
2.1.2 主要试剂 | 第56页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第56页 |
2.2 实验方法 | 第56-59页 |
2.2.1 药物配制 | 第56-57页 |
2.2.2 小鼠造模及给药 | 第57页 |
2.2.3 小鼠表皮厚度测量 | 第57页 |
2.2.4 免疫组化分析 | 第57-58页 |
2.2.5 Weastern Blot检测p-STAT3、STAT3和CEBPD的蛋白表达水平 | 第58-59页 |
2.3 统计学处理 | 第59-60页 |
3 结果 | 第60-65页 |
3.1 咪喹莫特在小鼠皮肤中诱导银屑病样表现,紫草素具有治疗作用 | 第60-62页 |
3.2 紫草素对咪喹莫特诱导的银屑病小鼠模型中JAK/STAT3通路相关蛋白表达的影响 | 第62-65页 |
3.2.1 免疫组化检测p-STAT3、STAT3、CEBPD蛋白表达情况 | 第62-64页 |
3.2.2 Western blot检测p-STAT3、STAT3、CEBPD蛋白表达情况 | 第64-65页 |
4 讨论 | 第65-66页 |
5 结论 | 第66-67页 |
本研究创新性的自我评价 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-72页 |
综述 JAK/STAT3 传导途径相关基因 CEBPD 参与银屑病发病机制的研究进展 | 第72-78页 |
参考文献 | 第75-78页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第78-79页 |
致谢 | 第79-80页 |
个人简介 | 第80页 |