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锌指蛋白A20对氧化性低密度脂蛋白介导的巨噬细胞与血管平滑肌细胞增殖和凋亡的影响及其分子机制的研究

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锌指蛋白A20对氧化性低密度脂蛋白介导的巨噬细胞与血管平滑肌细胞增殖和凋亡的影响及其分子机制的研究
论文目录
 
中文摘要第1-9 页
Abstract第9-13 页
前言第13-30 页
  一、氧化性低密度脂蛋白与动脉粥样硬化密切相关第13-21 页
    1、Ox-LDL的生成机制及影响因素第13-16 页
    2、OxLDL在巨噬细胞中的代谢第16-19 页
      ·、OxLDL的摄取和降解第16-17 页
      ·、Ox-LDL对巨噬细胞功能的影响第17-19 页
        · 诱导巨噬细胞的黏附、趋化和分化第17-18 页
        · 对泡沫细胞形成的影响第18 页
        ·、对巨噬细胞增殖的调控第18-19 页
        ·、Ox-LDL诱导巨噬细胞的凋亡第19 页
    3、OxLDL与血管内皮细胞损伤第19-20 页
    4、OxLDL促进血管平滑肌细胞的增殖与迁移第20 页
    5、OxLDL对细胞生长因子、组织因子及前列腺素类物质代谢的影响第20-21 页
  二、核因子κB信号转导途径与动脉粥样硬化第21-24 页
    1、NF-κB是调控基因转录的重要因子第21-22 页
    2、动脉粥样硬化灶中存在活化的第22-23 页
    3、NF-κB调控动脉粥样硬化第23-24 页
      ·、NF-κB与炎性分子第23 页
      ·、NF-κB与单核细胞的募集第23-24 页
      ·、NF-κB与血管平滑肌细胞的迁移和增生第24 页
  三、锌指蛋白A20第24-28 页
    1、A20的理化特性和分子生物学特性第24-25 页
    2、A20对机体炎症反应的调控作用第25-26 页
    3、A20调控炎症的分子机制第26-28 页
  四、本研究的主要内容第28-30 页
材料与方法第30-47 页
  一、实验材料第30-31 页
    1、菌株与质粒第30 页
    2、实验用大鼠与放射性核素第30 页
    3、限制性内切酶及修饰酶第30 页
    4、试剂盒第30 页
    5、实验用抗体第30-31 页
    6、其它主要试剂和材料第31 页
    7、主要仪器设备第31 页
  二、实验方法第31-47 页
    1、感受态大肠杆菌DH5-α制备第31-32 页
    2、质粒的转化和扩增第32 页
    3、质粒提取和纯化第32-33 页
    4、质粒的鉴定第33 页
    5、重组腺病毒的制备和检测第33-35 页
      ·、重组腺病毒毒株第33 页
      ·、重组腺病毒的制备第33-35 页
        ·、备用细胞的储备第33 页
        ·、建立备用病毒第33-34 页
        ·、重组腺病毒Ad-GFP和Ad-A20的生产第34 页
        ·、病毒纯化第34-35 页
        ·、重组腺病毒质量检测第35 页
    6、AdA20转染RAW264.7细胞与VSMC后A20基因表达持续时间检测第35 页
    7、细胞培养第35-36 页
      ·、细胞传代的操作方法第36 页
      ·、细胞冻存的操作方法第36 页
      ·、细胞复苏的操作方法第36 页
    8、正常大鼠主动脉平滑肌细胞培养第36-38 页
      ·、VSMC原代培养第36-37 页
      ·、VSMC传代培养第37 页
      ·、VSMC的冻存与复苏第37-38 页
        ·、VSMC冻存第37 页
        ·、肌细胞鉴定第37-38 页
    9、MTT分析第38 页
    10、~3H-TdR第38 页
    11、VSMC迁移能力变化的检测第38-39 页
    12、流式细胞仪检测细胞周期第39 页
    13、细胞凋亡的检测第39-40 页
      ·、Hochest 33258染色第39-40 页
      ·、流式细胞术分析第40 页
      ·、DNA琼脂糖凝胶电泳第40 页
    14、线粒体膜电位分析第40 页
    15、线粒体提取第40-41 页
    16、Western-blotting印迹第41-44 页
      ·、细胞裂解第41 页
      ·、聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第41-43 页
        ·、灌制分离胶:第41-42 页
        ·、灌制浓缩(堆积)胶:第42 页
        ·、制备样品和上样:第42 页
        ·、电泳:第42-43 页
        ·、染色:第43 页
      ·、免疫印迹第43-44 页
    17、电泳迁移实验EMSA第44-45 页
      ·、核蛋白的提取第44 页
      ·、探针的标记与纯化第44 页
      ·、探针的纯化第44-45 页
      ·、测定探针的放射活性第45 页
      ·、凝胶迁移阻滞法测定NF-κB第45 页
    18、报告基因转录活性的检测第45-46 页
    19、细胞的泡沫化实验第46-47 页
实验结果第47-74 页
  一、A20对RAW264.7细胞的作用第47-66 页
    1、A20基因穿梭质粒载体的构建第47-48 页
    2、A20基因重组腺病毒的产生第48 页
    3、Ad-A20的扩增与滴度测定第48-49 页
      ·、Ad-A20的扩增:第48-49 页
      ·、Ad-A20收集、纯化:第49 页
      ·、倍比稀释法测定:第49 页
    4、A20对OxLDL诱导的NF-κB信号传导通路的影响第49-51 页
    5、A20对OxLDL介导的RAW264.7细胞毒性作用的影响第51-52 页
      ·、细胞形态的观察第51 页
      ·、MTT分析第51-52 页
    6、A20对OxLDL介导的RAW264.7巨噬细胞凋亡的影响第52-55 页
      ·、Hochest 33258染色第52-53 页
      ·、细胞DNA含量分析第53 页
      ·、DNA ladder分析第53-55 页
    7、A20对OxLDL介导的细胞周期及相关周期蛋白的作用第55-56 页
    8、A20对OxLDL介导的RAW264.7细胞Caspase激活的影响第56-59 页
    9、A20对OxLDL介导的RAW264.7细胞线粒体凋亡通路的影响第59-62 页
    10、A20对OxLDL介导的RAW264.7细胞Fas/FasL凋亡通路的影响第62-63 页
    11、A20对OxLDL介导的MCP-1表达的影响第63-64 页
    12、A20对OxLDL诱导的MMPs表达的影响第64-65 页
    13、A20对OxLDL介导的RAW264.7细胞泡沫化的影响第65-66 页
  二、A20对VSMC的作用第66-74 页
    1、大鼠VSMC的培养及鉴定第66 页
      ·、细胞的生长特征第66 页
      ·、培养细胞的纯化和鉴定第66 页
    2、A20对OxLDL诱导的NF-κB信号传导通路的影响第66-68 页
    3、A20对VSMC增殖的影响第68-69 页
      ·、MTT分析第68-69 页
      ·、DNA合成分析第69 页
    4、A20对OxLDL诱导的VSMC迁移的影响第69-70 页
    5、A20对OxLDL介导的细胞周期以及细胞周期相关蛋白的影响第70-72 页
    6、A20对OxLDL诱导的MMP-2、MMP-9以及MCP-1的影响第72-74 页
讨论第74-90 页
  一、A20抑制OxLDL介导的RAW264.7巨噬细胞的细胞毒性第74-75 页
  二、A20通过不同机制抑制OxLDL所诱导的RAW264.7细胞的凋亡第75-82 页
    1、A20的表达抑制OxLDL介导的NF-κB的激活而抑制细胞凋亡发生第75-76 页
    2、A20通过改变细胞周期而抑制OxLDL所诱导的细胞的凋亡第76-77 页
    3、A20通过阻断Caspase活化的外源性途径而抑制OxLDL所诱导的细胞的凋亡第77-79 页
    4、A20通过阻断线粒体通路而抑制OxLDL所诱导的细胞的凋亡第79-80 页
    5、A20通过阻断Fas/FasL通路而抑制OxLDL所诱导的细胞的凋亡第80-82 页
  三、A20的表达抑制MMP-2、MMP-9在OxLDL激活的巨噬细胞中的水平第82-83 页
  四、A20的表达抑制MCP-1的表达与转录而逆转巨噬细胞泡沫化第83-84 页
  五、A20抑制VSMC增殖与迁移第84-90 页
    1、A20的表达抑制VSMC增殖与迁移第84-85 页
    2、A20抑制OxLDL介导的VSMC NF-κB信号第85-86 页
    3、A20通过调节细胞周期蛋白的表达而影响细胞周期抑制OxLDL介导的VSMC增殖第86-87 页
    4、A20通过抑制OxLDL介导的MMP-2、MMP-9、MCP-1的表达而抑制VSMC迁移第87-90 页
小结第90-91 页
参考文献第91-103 页
文献综述第103-117 页
英文名词及缩写第117-119 页
致谢第119-120 页
个人简历第120页

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