论文目录 | |
摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
缩略语表 | 第10-16页 |
第一章 绪论 | 第16-36页 |
1.1 高脂血症的危害及防治 | 第16-17页 |
1.2 具有降血脂作用的食药用菌 | 第17-22页 |
1.3 食药用菌降血脂的作用机理研究 | 第22-30页 |
1.3.1 胆固醇的代谢及其调控 | 第22-29页 |
1.3.2 甘油三脂的代谢及其调控 | 第29-30页 |
1.4 蛋白质组学及其在高脂血症中的应用 | 第30-33页 |
1.5 食药用菌降血脂研究中存在的问题和展望 | 第33页 |
1.6 本论文的目的意义与研究内容 | 第33-36页 |
1.6.1 目的意义 | 第33-34页 |
1.6.2 研究内容 | 第34-35页 |
1.6.3 研究路线 | 第35-36页 |
第二章 食药用菌调控脂类代谢关键基因表达的降血脂作用研究 | 第36-60页 |
2.1 实验材料 | 第37-38页 |
2.1.1 实验原料 | 第37页 |
2.1.2 实验动物与饲料 | 第37页 |
2.1.3 实验试剂 | 第37-38页 |
2.1.4 实验仪器 | 第38页 |
2.2 实验方法 | 第38-43页 |
2.2.1 食药用菌超微粉的制备 | 第38页 |
2.2.2 高脂血症大鼠模型的诱导 | 第38-39页 |
2.2.3 实验动物分组和给药 | 第39页 |
2.2.4 实验动物的取材和血脂测定 | 第39页 |
2.2.5 荧光定量PCR评价食药用菌对脂类代谢关键酶mRNA表达的调控作用 | 第39-41页 |
2.2.6 酶联免疫评价食药用菌对脂类代谢关键酶表达量的调控作用 | 第41-42页 |
2.2.7 统计分析 | 第42-43页 |
2.3 结果 | 第43-54页 |
2.3.1 实验动物体重变化 | 第43-44页 |
2.3.2 食药用菌对实验大鼠血清TC、LDL-C和TG水平的影响 | 第44-46页 |
2.3.3 食药用菌对胆固醇代谢关键酶表达的影响 | 第46-51页 |
2.3.4 食药用菌对甘油三酯代谢关键酶表达的影响 | 第51-54页 |
2.4 讨论 | 第54-59页 |
2.4.1 食药用菌对高脂血症大鼠的降血脂作用 | 第54页 |
2.4.2 食药用菌对胆固醇代谢关键酶的作用 | 第54-58页 |
2.4.3 食药用菌对甘油三酯代谢关键酶的作用 | 第58-59页 |
2.5 本章小结 | 第59-60页 |
第三章 灰树花降血脂的蛋白质组学研究 | 第60-80页 |
3.1 实验材料 | 第61-65页 |
3.1.1 实验原料 | 第61页 |
3.1.2 实验试剂 | 第61-64页 |
3.1.3 实验仪器 | 第64-65页 |
3.2 实验方法 | 第65-69页 |
3.2.1 大鼠肝脏蛋白质的提取制备及总蛋白的定量 | 第65-66页 |
3.2.2 双向电泳的实验流程 | 第66-69页 |
3.3 实验结果 | 第69-76页 |
3.3.1 2-DE图像分析结果 | 第69页 |
3.3.2 差异蛋白质点的质谱鉴定结果 | 第69-76页 |
3.4 讨论 | 第76-79页 |
3.4.1 参与胆固醇代谢 | 第76页 |
3.4.2 参与甘油三脂代谢 | 第76-77页 |
3.4.3 与动脉粥样硬化的关系 | 第77-78页 |
3.4.4 与氨基酸代谢的关系 | 第78页 |
3.4.5 与能量代谢的关系 | 第78页 |
3.4.6 与微丝组装的关系 | 第78页 |
3.4.7 与蛋白质降解的关系 | 第78-79页 |
3.5 本章小结 | 第79-80页 |
第四章 食药用菌粗多糖对高脂血症大鼠的降血脂作用研究 | 第80-94页 |
4.1 实验材料 | 第80-82页 |
4.1.1 实验原料 | 第80页 |
4.1.2 实验动物与饲料 | 第80页 |
4.1.3 实验试剂 | 第80-81页 |
4.1.4 实验仪器 | 第81-82页 |
4.2 实验方法 | 第82-85页 |
4.2.1 食药用菌粗多糖的提取 | 第82页 |
4.2.2 食药用菌粗多糖浓度的测定 | 第82-83页 |
4.2.3 大鼠高脂血症模型的诱导和给药 | 第83页 |
4.2.4 实验动物的取材 | 第83页 |
4.2.5 血清中血脂的测定 | 第83-84页 |
4.2.6 免疫组化实验 | 第84-85页 |
4.2.7 统计分析 | 第85页 |
4.3 实验结果 | 第85-91页 |
4.3.1 实验动物体重变化 | 第85-86页 |
4.3.2 食药用菌粗多糖对实验大鼠血清TC和TG水平的影响 | 第86-87页 |
4.3.3 食药用菌粗多糖对大鼠肝脏SOD、Prdx-1蛋白表达量的影响 | 第87-91页 |
4.4 讨论 | 第91-92页 |
4.4.1 食药用菌粗多糖对高脂血症大鼠的降血脂作用 | 第91页 |
4.4.2 食药用菌粗多糖提高大鼠肝脏SOD、Prdx-1的蛋白表达量 | 第91-92页 |
4.5 本章小结 | 第92-94页 |
第五章 灰树花多糖F2的降血脂作用及其机理研究 | 第94-118页 |
5.1 实验材料 | 第94-96页 |
5.1.1 实验原料 | 第94页 |
5.1.2 实验动物与饲料 | 第94-95页 |
5.1.3 实验试剂 | 第95页 |
5.1.4 实验仪器 | 第95-96页 |
5.2 实验方法 | 第96-100页 |
5.2.1 灰树花粗多糖的提取 | 第96页 |
5.2.2 灰树花多糖的分离纯化 | 第96页 |
5.2.3 灰树花多糖F2的组成 | 第96-97页 |
5.2.4 大鼠高脂血症模型的诱导和给药 | 第97-98页 |
5.2.5 实验动物的取材和血脂测定 | 第98页 |
5.2.6 大鼠肝脏RNA的提取和转录组测序 | 第98-100页 |
5.2.7 统计分析 | 第100页 |
5.3 实验结果 | 第100-113页 |
5.3.1 灰树花粗多糖经阴离子交换柱 | 第100-101页 |
5.3.2 灰树花多糖F2的组成 | 第101-103页 |
5.3.3 实验动物体重变化 | 第103-104页 |
5.3.4 灰树花多糖F2对实验大鼠血清中血脂含量的影响 | 第104-105页 |
5.3.5 实验大鼠肝脏的转录组测序 | 第105-113页 |
5.4 讨论 | 第113-115页 |
5.4.1 灰树花多糖F2的组成 | 第113页 |
5.4.2 灰树花多糖F2对高脂血症大鼠的降血脂作用 | 第113页 |
5.4.3 灰树花多糖F2对大鼠肝脏基因差异表达的影响 | 第113-115页 |
5.5 本章小结 | 第115-118页 |
结论与展望 | 第118-122页 |
参考文献 | 第122-138页 |
攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第138-140页 |
致谢 | 第140-141页 |
附件 | 第141页 |