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miR-142-3p在博来霉素诱导的IPF模型中的作用及其机制探究

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miR-142-3p在博来霉素诱导的IPF模型中的作用及其机制探究
论文目录
 
摘要第11-14页
ABSTRACT第14-19页
缩略语/符号说明第19-24页
第一章 前言第24-33页
  1.1 特发性肺纤维化第24-26页
  1.2 微小RNA第26-27页
  1.3 环氧化酶第27-28页
References第28-33页
第二章 博来霉素致小鼠肺上皮细胞MLE-12纤维化模型构建第33-51页
  2.1 引言第33-34页
  2.2 材料与方法第34-45页
    2.2.1 试剂耗材第34-36页
    2.2.2 实验仪器第36-37页
    2.2.3 基本溶液配制第37-38页
    2.2.4 细胞培养第38-39页
    2.2.5 CCK-8法第39页
    2.2.6 细胞凋亡率的检测第39-40页
    2.2.7 肺上皮细胞MLE-12总RNA的提取第40-41页
    2.2.8 RNA反转录第41页
    2.2.9 qRT-PCR第41-42页
    2.2.10 蛋白样品的制备及含量测定第42-43页
    2.2.11 Western blot检测第43-45页
    2.2.12 统计方法第45页
  2.3 实验结果第45-46页
    2.3.1 博来霉素对肺上皮细胞MLE-12活力和凋亡率的影响第45页
    2.3.2 博来霉素对肺上皮细胞MLE-12内促炎因子IL-1和TNF-α第45-46页
  2.4 实验讨论第46-47页
  2.5 结论第47-48页
References第48-51页
第三章 miR-142-3p在博来霉素诱导的IPF模型中的作用第51-67页
  3.1 引言第51-52页
  3.2 材料与方法第52-59页
    3.2.1 试剂耗材第52-53页
    3.2.2 实验仪器第53-54页
    3.2.3 基本溶液配制第54-55页
    3.2.4 细胞培养第55页
    3.2.5 细胞转染第55-56页
    3.2.6 总RNA的提取及qRT-PCR第56-57页
    3.2.7 miRNA qRT-PCR第57-58页
    3.2.8 蛋白提取及含量测定第58页
    3.2.9 Western blot检测第58页
    3.2.10 实验处理与分组第58页
    3.2.11 统计方法第58-59页
  3.3 实验结果第59-61页
    3.3.1 博来霉素对肺上皮细胞MLE-12中miR-142-3p的影响第59页
    3.3.2 肺上皮细胞MLE-12中miR-142-3p过表达和抑制第59页
    3.3.3 miR-142-3p在肺上皮细胞MLE-12中的作用第59-61页
  3.4 实验讨论第61-63页
  3.5 结论第63-64页
References第64-67页
第四章 miR-142-3p在博来霉素诱导的IPF模型中的作用机制探究第67-83页
  4.1 引言第67-68页
  4.2 材料与方法第68-74页
    4.2.1 试剂耗材第68-69页
    4.2.2 实验仪器第69-70页
    4.2.3 基本溶液配制第70-71页
    4.2.4 细胞培养第71页
    4.2.5 细胞转染第71页
    4.2.6 总RNA的提取及qRT-PCR第71页
    4.2.7 qRT-PCR第71-72页
    4.2.8 蛋白提取及含量测定第72页
    4.2.9 Western blot检测第72-74页
    4.2.10 实验处理与分组第74页
    4.2.11 统计方法第74页
  4.3 实验结果第74-76页
    4.3.1 肺上皮细胞MLE-12中miR-142-3p对Cox-2表达的影响第74-75页
    4.3.2 miR-142-3p对PI3K/AKT/mTOR信号通路的影响第75-76页
  4.4 实验讨论第76-78页
  4.5 结论第78-79页
References第79-83页
第五章 综述第83-101页
参考文献第93-101页
附图表第101-108页
致谢第108-109页
攻读博士期间发表的论文第109-110页
学位论文评阅及答辩情况表第110-111页
英文文章Ⅰ (已发表)第111-129页
英文文章Ⅱ (待发表)第129-148页

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