论文目录 | |
| 缩略语表 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-14页 |
| ABSTRACT | 第14-19页 |
| 前言 | 第19-22页 |
| 文献回顾 | 第22-42页 |
| 第一部分 SPIO对人牙髓干细胞的生物学影响及核磁共振示踪观察 | 第42-78页 |
| 实验一 人牙髓干细胞的分离培养与鉴定 | 第42-47页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| 1.1 组织来源 | 第42页 |
| 1.2 主要仪器 | 第42-43页 |
| 1.3 主要试剂 | 第43页 |
| 1.4 主要溶液配方 | 第43页 |
| 2 方法 | 第43-44页 |
| 2.1 人牙髓干细胞的培养 | 第43-44页 |
| 2.2 细胞鉴定 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-45页 |
| 3.1 原代牙髓干细胞的培养与纯化 | 第44页 |
| 3.2 牙髓干细胞的鉴定 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45-47页 |
| 实验二 MIRB标记人牙髓干细胞 | 第47-55页 |
| 1 材料 | 第47-48页 |
| 1.1 主要仪器 | 第47页 |
| 1.2 主要试剂 | 第47-48页 |
| 2 方法 | 第48-50页 |
| 2.1 MIRB标记hDPSCs | 第48页 |
| 2.2 普鲁士蓝染色 | 第48页 |
| 2.3 细胞标记效率测定 | 第48页 |
| 2.4 激光共聚焦观察铁颗粒在细胞内的分布 | 第48-49页 |
| 2.5 透射电镜观察MIRB在hDPSCs内的分布情况 | 第49页 |
| 2.6 细胞内铁含量的测定 | 第49-50页 |
| 3 结果 | 第50-53页 |
| 3.1 MIRB标记hDPSCs后细胞形态学观察及标记效率 | 第50页 |
| 3.2 透射电镜观察MIRB在hDPSCs内的分布情况 | 第50页 |
| 3.3 细胞内铁含量测定 | 第50-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 实验三 MIRB对牙髓干细胞生物学特性的影响 | 第55-70页 |
| 1 材料 | 第55-56页 |
| 1.1 主要仪器 | 第55页 |
| 1.2 主要试剂 | 第55-56页 |
| 2 方法 | 第56-61页 |
| 2.1 MIRB对hDPSCs活力的影响（台盼蓝排斥实验） | 第56页 |
| 2.2 MIRB对hDPSCs增殖能力的影响 | 第56页 |
| 2.3 MIRB标记对hDPSCs细胞表型的影响 | 第56-57页 |
| 2.4 MIRB标记对hDPSCs细胞周期的影响 | 第57页 |
| 2.5 MIRB标记对hDPSCs细胞凋亡的影响 | 第57页 |
| 2.6 MIRB标记对hDPSCs细胞体外成牙/成骨分化的影响 | 第57-60页 |
| 2.7 三维条件下MIRB标记对hDPSCs的生长与体内成骨分化的影响 | 第60-61页 |
| 2.8 统计分析 | 第61页 |
| 3 结果 | 第61-66页 |
| 3.1 MIRB标记对hDPSCs活力的影响 | 第61页 |
| 3.2 MIRB标记对hDPSCs增殖的影响 | 第61-62页 |
| 3.3 MIRB标记对hDPSCs表型的影响 | 第62页 |
| 3.4 MIRB标记对hDPSCs周期和凋亡的影响 | 第62-64页 |
| 3.5 MIRB标记对hDPSCs体外成骨分化的影响 | 第64-66页 |
| 3.6 MIRB标记对支架材料三维培养模式下hDPSCs的生长与体内成骨分化的影响 | 第66页 |
| 4 讨论 | 第66-70页 |
| 实验四 MIRB标记牙髓干细胞的体外体内MRI成像 | 第70-78页 |
| 1 材料 | 第70-71页 |
| 1.1 主要仪器 | 第70页 |
| 1.2 主要试剂 | 第70-71页 |
| 2 方法 | 第71-73页 |
| 2.1 MIRB标记的hDPSCs体外MRI成像观察 | 第71页 |
| 2.2 MIRB标记的hDPSCs体内MRI成像观察 | 第71-73页 |
| 2.3 统计学分析 | 第73页 |
| 3 结果 | 第73-76页 |
| 3.1 MRI体外成像观察 | 第73页 |
| 3.2 MRI体内成像观察 | 第73-76页 |
| 4 讨论 | 第76-78页 |
| 第二部分 SPIO对大鼠骨髓间充质干细胞的生物学影响 | 第78-95页 |
| 实验一 SD大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养与鉴定 | 第78-84页 |
| 1 材料 | 第78-79页 |
| 1.1 实验动物 | 第78页 |
| 1.2 主要仪器 | 第78-79页 |
| 1.3 主要试剂 | 第79页 |
| 1.4 主要溶液配方 | 第79页 |
| 2 方法 | 第79-80页 |
| 2.1 大鼠骨髓干细胞的分离与培养与形态观察 | 第79页 |
| 2.2 rBMMSCs的鉴定 | 第79-80页 |
| 3 结果 | 第80-82页 |
| 3.1 原代大鼠骨髓间充质干细胞的分离、培养 | 第80页 |
| 3.2 rBMMSCs的克隆形成率测定 | 第80页 |
| 3.3 rBMMSCs的鉴定 | 第80-82页 |
| 4 讨论 | 第82-84页 |
| 实验二 MIRB标记大鼠骨髓间充质干细胞及对其生物学特性的影响 | 第84-95页 |
| 1 材料 | 第84-85页 |
| 1.1 主要仪器 | 第84页 |
| 1.2 主要试剂 | 第84-85页 |
| 2 方法 | 第85-86页 |
| 2.1 Resovist标记rBMMSCs | 第85页 |
| 2.2 Resovist标记效率及普鲁士蓝染色 | 第85页 |
| 2.3 透射电镜观察Resovist在rBMMSCs内的分布情况 | 第85页 |
| 2.4 Resovist标记对rBMMSCs细胞活力和增殖的影响 | 第85-86页 |
| 2.5 Resovist标记对rBMMSCs细胞周期和凋亡的影响 | 第86页 |
| 2.6 Resovist标记对rBMMSCs细胞体外成骨分化的影响 | 第86页 |
| 3 结果 | 第86-92页 |
| 3.1 Resovist标记rBMMSCs后细胞形态学观察及标记效率 | 第86-88页 |
| 3.2 透射电镜观察Resovist在rBMMSCs内的分布情况 | 第88页 |
| 3.3 Resovist标记对rBMMSCs增殖的影响 | 第88-89页 |
| 3.4 Resovist标记对rBMMSCs周期和凋亡的影响 | 第89-90页 |
| 3.5 Resovist标记对rBMMSCs体外成骨分化的影响 | 第90-91页 |
| 3.6 Resovist标记对rBMMSCs成骨分化相关基因表达的影响 | 第91-92页 |
| 4 讨论 | 第92-95页 |
| 第三部分 SPIO标记的大鼠骨髓间充质干细胞在体外体内磁场环境下迁移和定植的实验研究 | 第95-106页 |
| 实验一 体外磁场环境下SPIO标记的RBMMSCS迁移 | 第95-100页 |
| 1 材料 | 第95-96页 |
| 1.1 主要仪器 | 第95-96页 |
| 1.2 主要试剂 | 第96页 |
| 2 方法 | 第96-97页 |
| 2.1 Transwell实验检测体外磁场环境下SPIO标记的rBMMSCs迁移 | 第96页 |
| 2.2 体外磁场环境下SPIO标记的rBMMSCs迁移实验 | 第96-97页 |
| 3 结果 | 第97-98页 |
| 3.1 Transwell实验检测磁场环境下细胞迁移 | 第97页 |
| 3.2 体外环境下SPIO标记的rBMMSCs向磁场迁移实验 | 第97-98页 |
| 4 讨论 | 第98-100页 |
| 实验二 体内磁场环境下SPIO标记的RBMMSCS向牙槽骨缺损处的磁靶向迁移或定植 | 第100-106页 |
| 1 材料 | 第100页 |
| 1.1 主要仪器 | 第100页 |
| 1.2 主要试剂 | 第100页 |
| 2 方法 | 第100-103页 |
| 2.1 牙槽骨缺损模型的构建 | 第100-101页 |
| 2.2 经静脉途径输入干细胞 | 第101页 |
| 2.3 局部注射途径植入干细胞 | 第101页 |
| 2.4 组织取材及处理 | 第101-102页 |
| 2.5 统计学分析 | 第102-103页 |
| 3 结果 | 第103-104页 |
| 3.1 体内磁场环境下静脉输入的SPIO标记的rBMMSCs向牙槽骨缺损处的磁靶向迁移或定植 | 第103页 |
| 3.2 体内磁场环境下局部注射的SPIO标记的rBMMSCs在牙槽骨缺损处的定植 | 第103-104页 |
| 4 讨论 | 第104-106页 |
| 小结 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-123页 |
| 个人简历和研究成果 | 第123-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
