论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-20页 |
| 研究现状、成果 | 第14-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-20页 |
| 一、衣原体噬菌体phiCPG1衣壳蛋白Vp1的表达、鉴定与纯化及对沙眼衣原体的抑制作用 | 第20-43页 |
| 1.1 对象和方法 | 第20-31页 |
| 1.1.1 菌株、细胞株、沙眼衣原体株 | 第20页 |
| 1.1.2 试剂及液体配置 | 第20-22页 |
| 1.1.3 仪器及耗材 | 第22-23页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第23-31页 |
| 1.2 结果 | 第31-37页 |
| 1.2.1 表达Vp1蛋白 | 第31-32页 |
| 1.2.2 Vp1蛋白鉴定、纯化结果 | 第32-35页 |
| 1.2.3 BCA蛋白定量 | 第35页 |
| 1.2.4 Vp1蛋白对沙眼衣原体标准株的抑制作用 | 第35-37页 |
| 1.3 讨论 | 第37-42页 |
| 1.3.1 Vp1的表达、纯化、复性和定量 | 第39-40页 |
| 1.3.2 沙眼衣原体的培养 | 第40-41页 |
| 1.3.3 Vp1蛋白对沙眼衣原体的作用 | 第41-42页 |
| 1.4 小结 | 第42-43页 |
| 二、Vp1蛋白对小鼠生殖道中E型沙眼衣原体增殖的作用 | 第43-60页 |
| 2.1 对象和方法 | 第43-48页 |
| 2.1.1 沙眼衣原体株、细胞株、实验动物 | 第43页 |
| 2.1.2 所需的试剂、药品、试剂盒 | 第43-44页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第44页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第44-48页 |
| 2.2 结果 | 第48-54页 |
| 2.2.1 E型沙眼衣原体的增量培养 | 第48页 |
| 2.2.2 E型沙眼衣原体接种物定量 | 第48-49页 |
| 2.2.3 Vp1蛋白对小鼠生殖道感染的E型沙眼衣原作用 | 第49-54页 |
| 2.3 讨论 | 第54-59页 |
| 2.3.1 关于构建试验用感染动物模型 | 第54-57页 |
| 2.3.2 小鼠分泌物Ct的检测结果讨论 | 第57-59页 |
| 2.4 小结 | 第59-60页 |
| 三、Vp1蛋白对感染K型沙眼衣原体小鼠生殖道炎症的作用 | 第60-80页 |
| 3.1 对象和方法 | 第60-68页 |
| 3.1.1 细胞株、沙眼衣原体株、实验动物 | 第60页 |
| 3.1.2 所需试剂、药品、试剂盒 | 第60-61页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第61-62页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第62-68页 |
| 3.2 结果 | 第68-75页 |
| 3.2.1 K型沙眼衣原体的增量培养、纯化和定量 | 第68-70页 |
| 3.2.2 小鼠模型阴道分泌物细胞培养 | 第70-71页 |
| 3.2.3 小鼠模型生殖系统的大体观察 | 第71-74页 |
| 3.2.4 小鼠模型生殖系统组织切片HE染色观察 | 第74-75页 |
| 3.2.5 小鼠模型生殖系统组织匀浆细胞培养 | 第75页 |
| 3.3 讨论 | 第75-78页 |
| 3.3.1 人型株感染小鼠生殖道的特点 | 第75-76页 |
| 3.3.2 小鼠清除Ct感染的时间 | 第76-77页 |
| 3.3.3 泌尿生殖道感染不同基因型Ct引起不同症状 | 第77-78页 |
| 3.3.4 实验结果讨论 | 第78页 |
| 3.4 小结 | 第78-80页 |
| 全文结论 | 第80-81页 |
| 论文创新点 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-87页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第87-88页 |
| 综述 | 第88-97页 |
| 综述参考文献 | 第93-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 个人简历 | 第98页 |
