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基于亲电修饰策略设计荜茇酰胺和姜黄素导向的谷胱甘肽-S-转移酶抑制剂和抗癌试剂

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基于亲电修饰策略设计荜茇酰胺和姜黄素导向的谷胱甘肽-S-转移酶抑制剂和抗癌试剂
论文目录
 
中文摘要第1-9页
Abstract第9-12页
缩略语表第12-20页
第一章 研究背景第20-52页
  1.1 癌症-世界性难题第20页
  1.2 癌症及其耐药性第20-28页
    1.2.1 GSTs的分类第21-22页
    1.2.2 GSTs的结构第22-23页
    1.2.3 GSTs的功能第23-26页
    1.2.4 GSTs抑制剂研究进展第26-28页
  1.3 癌症与氧化应激第28-32页
    1.3.1 ROS—生命过程中的“两面性”物质第29-30页
    1.3.2 ROS与氧化应激第30页
    1.3.3 ROS的产生第30-31页
    1.3.4 促氧化策略第31-32页
  1.4 癌症与自噬第32-40页
    1.4.1 自噬的机制第33-34页
    1.4.2 自噬与癌治疗第34-36页
    1.4.3 自噬激活剂/抑制剂研究进展第36-40页
  1.5 课题设计依据及其意义第40-42页
参考文献第42-52页
第二章 基于亲电修饰的策略设计荜茇酰胺导向的谷胱甘肽-S-转移酶抑制剂第52-74页
  2.1 引言第52-54页
  2.2 结果与讨论第54-63页
    2.2.1 荜茇酰胺及其类似物的合成第54-56页
    2.2.2 荜茇酰胺及其类似物对马肝GST的抑制活性及构效关系第56-57页
    2.2.3 测定荜茇酰胺及其类似物对马肝GST抑制的IC50值第57页
    2.2.4 荜茇酰胺及其类似物的亲电性贡献于它们的GST抑制的活性第57-58页
    2.2.5 化合物的几何构象影响了它们的GST抑制活性和亲电性第58-59页
    2.2.6 PL-13 通过抑制马肝GST的G-位点导致其失活第59-60页
    2.2.7 PL-13 以Michael受体单元依赖的方式实现对顺铂耐药的肺癌A549细胞的敏化第60-62页
    2.2.8 PL-13 凭借其Michael受体单元抑制A549细胞内的GSTs来克服细胞对顺铂的耐药第62-63页
  2.3 小结第63-64页
  2.4 材料与方法第64-71页
    2.4.1 仪器与试剂第64-65页
    2.4.2 荜茇酰胺及其类似物对马肝GST抑制活性筛选第65-66页
    2.4.3 测定荜茇酰胺及其类似物与半胱胺反应的速率常数k2值第66页
    2.4.4 PL-13 对马肝GST抑制机理及抑制常数(Ki)的测定第66-68页
    2.4.5 GSTs荧光探针DNs-CV的合成第68页
    2.4.6 化合物细胞毒活性评价第68-69页
    2.4.7 可视化细胞内GSTs活性第69-70页
    2.4.8 数据统计分析第70-71页
参考文献第71-74页
第三章 基于亲电性的促氧化策略设计荜茇酰胺导向的细胞自噬性死亡激活剂第74-89页
  3.1 引言第74-75页
  3.2 结果与讨论第75-83页
    3.2.1 细胞毒性及其构效关系第75-77页
    3.2.2 化合物的亲电性在一定程度上影响了它们的细胞毒性第77页
    3.2.3 PL-13 以Michael受体单元依赖的方式诱导U2OS自噬性细胞死亡第77-78页
    3.2.4 PL-13 以Michael受体单元依赖的方式激活MAPKs通路从而激活U2OS细胞自噬第78-80页
    3.2.5 PL-13 以Michael受体单元依赖的方式诱导H_2O_2的富集第80-82页
    3.2.6 PL-13 激活U2OS细胞中MAPKs通路是通过H_2O_2的富集来实现的第82页
    3.2.7 PL-13 诱导的H_2O_2的富集导致U2OS细胞自噬性死亡第82-83页
  3.3 小结第83-84页
  3.4 材料与方法第84-88页
    3.4.1 材料与试剂第84页
    3.4.2 化合物合成第84-85页
    3.4.3 细胞培养第85页
    3.4.4 化合物的细胞毒活性评价第85页
    3.4.5 测定胞内ROS的含量第85页
    3.4.6 蛋白印迹法测定胞内蛋白的表达水平第85-87页
    3.4.7 数据统计分析第87-88页
参考文献第88-89页
第四章 姜黄素导向的谷胱甘肽-S-转移酶抑制剂的设计和构效关系研究第89-112页
  4.1 引言第89-90页
  4.2 结果与讨论第90-98页
    4.2.1 化合物合成第90-91页
    4.2.2 姜黄素及其类似物作为GST抑制剂的构效关系第91-92页
    4.2.3 GST抑制活性的影响因素:亲电性和几何构型第92-93页
    4.2.4 NC-3 对顺铂耐药的A549细胞的敏化第93-94页
    4.2.5 NC-3 与顺铂以协同作用的方式诱导A549细胞凋亡第94-96页
    4.2.6 NC-3凭借其Michael受体单元抑制顺铂耐药的A549细胞内的GSTs来实现敏化效果第96-97页
    4.2.7 NC-3 能够通过抑制A549细胞内的GSTM1来活化ASK1-JNK/p38信号通路从而增强顺铂诱导的细胞凋亡第97-98页
  4.3 小结第98-99页
  4.4 材料与方法第99-109页
    4.4.1 仪器与试剂第99-100页
    4.4.2 CP和CH系列姜黄素类似物的合成及其谱图数据第100-107页
    4.4.3 姜黄素及其类似物对马肝GST抑制活性的测定第107页
    4.4.4 姜黄素及其类似物亲电性的评价(k2值的测定)第107页
    4.4.5 姜黄素及其类似物和顺铂在A549细胞内的协同作用第107页
    4.4.6 可视化细胞内GSTs活性第107页
    4.4.7 Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡第107-108页
    4.4.8 蛋白印迹法测定胞内蛋白的表达水平第108页
    4.4.9 数据统计分析第108-109页
参考文献第109-112页
第五章 基于亲电性的促氧化策略设计姜黄素导向的细胞凋亡诱导剂和自噬性死亡激活剂第112-138页
  5.1 引言第112-114页
  5.2 结果和讨论第114-126页
    5.2.1 单羰基姜黄素类似物的合成第114-115页
    5.2.2 单羰基姜黄素类似物对NCI-H460细胞的毒性和构效关系第115-116页
    5.2.3 稳定性和亲电性的提高贡献于CNH-3 的细胞毒性第116-118页
    5.2.4 CNH-3 以Michael受体单元依赖的方式诱导NCI-H460细胞凋亡第118-119页
    5.2.5 CNH-3 以Michael受体依赖的方式诱导NCI-H460细胞自噬性死亡第119-121页
    5.2.6 CNH-3 凭借其Michael受体单元诱导NCI-H460细胞内ROS的富集从而导致细胞死亡第121-122页
    5.2.7 CNH-3 以ROS依赖的方式诱导线粒体介导的NCI-H460细胞凋亡第122-124页
    5.2.8 CNH-3 以ROS依赖的方式诱导p38的磷酸化从而导致NCI-H460细胞自噬第124-125页
    5.2.9 CNH-3 诱导的细胞自噬并没有作用于它所诱导的细胞凋亡第125-126页
  5.3 小结第126-127页
  5.4 材料与方法第127-134页
    5.4.1 材料与试剂第127页
    5.4.2 单羰基姜黄素类似物的合成及其谱图数据第127-131页
    5.4.3 细胞培养第131页
    5.4.4 化合物的细胞毒活性评价第131-132页
    5.4.5 化合物稳定性评价第132页
    5.4.6 化合物亲电性评价第132页
    5.4.7 Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡第132页
    5.4.8 测定胞内ROS的含量第132页
    5.4.9 蛋白印迹法测定胞内蛋白的表达水平第132-133页
    5.4.10 数据统计分析第133-134页
参考文献第134-138页
第六章 通过促氧化策略设计姜黄素导向的细胞周期阻滞试剂第138-153页
  6.1 引言第138-139页
  6.2 实验结果第139-145页
    6.2.1 单羰基姜黄素类似物的合成第139页
    6.2.2 单羰基姜黄素类似物对NCI-H460细胞毒性的评价第139-141页
    6.2.3 CP-5 稳定性的提高贡献于它的细胞毒性第141-142页
    6.2.4 CP-5 以Michael受体单元依赖的方式诱导NCI-H460细胞内ROS的富集第142页
    6.2.5 CP-5 凭借其Michael受体单元促进胞内ROS的富集,从而诱导NCI-H460细胞G2/M周期阻滞第142-144页
    6.2.6 CP-5 在NCI-H460细胞中对有关G2/M期蛋白的调控第144-145页
  6.3 讨论第145-147页
  6.4 小结第147页
  6.5 材料与方法第147-150页
    6.5.1 材料与试剂第147-148页
    6.5.2 细胞培养第148页
    6.5.3 化合物的细胞毒活性评价第148页
    6.5.4 化合物稳定性测定第148页
    6.5.5 化合物诱导的细胞周期阻滞的测定第148-149页
    6.5.6 Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡第149页
    6.5.7 测定胞内ROS的含量第149页
    6.5.8 蛋白印迹法测定胞内蛋白的表达水平第149页
    6.5.9 数据统计分析第149-150页
参考文献第150-153页
第七章 全文总结第153-154页
代表性化合物谱图第154-160页
化合物表征一览表第160-164页
在学期间的研究成果第164-165页
致谢第165页

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