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聚噻吩基导电水凝胶研制及其在心肌组织工程中的应用研究

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聚噻吩基导电水凝胶研制及其在心肌组织工程中的应用研究
论文目录
 
摘要第1-6页
abstract第6-12页
前言第12-14页
第一章 文献综述第14-39页
  1.1 心肌组织工程在心脏缺损疾病治疗中的应用第14-18页
    1.1.1 心肌组织工程第14-15页
    1.1.2 心肌组织工程用生物材料第15-18页
      1.1.2.1 海藻酸钠第15-16页
      1.1.2.2 明胶第16-17页
      1.1.2.3 壳聚糖第17页
      1.1.2.4 心肌组织工程用生物材料的发展趋势第17-18页
  1.2 导电聚合物材料第18-25页
    1.2.1 电子型有机导电聚合物简介第18-19页
    1.2.2 生物医用导电高分子第19-25页
      1.2.2.1 聚苯胺第19-21页
      1.2.2.2 聚吡咯第21-23页
      1.2.2.3 聚噻吩第23-25页
  1.3 导电水凝胶的制备及其在组织工程中的应用第25-35页
    1.3.1 导电水凝胶的分类第25-27页
      1.3.1.1 碳纳米杂化水凝胶第26-27页
      1.3.1.2 导电聚合物水凝胶第27页
    1.3.2 导电聚合物水凝胶的制备第27-35页
      1.3.2.1 单组分导电水凝胶的制备第27-29页
      1.3.2.2 多组分导电水凝胶的制备第29-35页
  1.4 导电性生物材料对细胞生物学行为的调控作用第35-37页
  1.5 课题的提出和研究内容第37-39页
第二章 聚-3-噻吩乙酸/明胶双网络水凝胶的研制及性能调控第39-55页
  2.1 引言第39-40页
  2.2 实验部分第40-44页
    2.2.1 实验原料和仪器第40-41页
    2.2.2 聚 3-噻吩乙酸的合成第41页
      2.2.2.1 3-噻吩乙酸甲酯的合成第41页
      2.2.2.2 聚 3-噻吩乙酸甲酯的制备第41页
      2.2.2.3 聚 3-噻吩乙酸的合成第41页
    2.2.3 甲基丙烯酸酰肼化明胶的制备第41-42页
      2.2.3.1 酰肼化明胶的制备第41-42页
      2.2.3.2 甲基丙烯酸化酰肼明胶(MAAG)的制备第42页
    2.2.4 双网络导电水凝胶的制备第42页
    2.2.5 核磁和红外检测第42-43页
    2.2.6 HEDN平衡溶胀度测定第43页
    2.2.7 HEDN水凝胶力学性能检测第43页
    2.2.8 HEDN水凝胶电学性能的测定第43-44页
  2.3 结果与讨论第44-54页
    2.3.1 均一的导电双网络水凝胶的形成第44-48页
    2.3.2 HEDN双网络水凝胶的溶胀度第48页
    2.3.3 HEDN双网络水凝胶力学性能第48-50页
    2.3.4 HEDN双网络水凝胶电学性能第50-54页
  2.4 本章结论第54-55页
第三章 聚-3-噻吩乙酸/明胶双网络水凝胶对BADSCs生物学行为的调控作用第55-71页
  3.1 引言第55-56页
  3.2 实验部分第56-61页
    3.2.1 实验原料和仪器第56-58页
    3.2.2 棕色脂肪来源间充质干细胞的分离与培养第58页
    3.2.3 吖啶橙/碘化丙锭(AO/PI)染色第58页
    3.2.4 BADSCs在HEDN水凝胶表面增殖活性检测第58-59页
    3.2.5 BrdU染色第59页
    3.2.6 HEDN水凝胶皮下埋植实验第59页
    3.2.7 电刺激实验第59页
    3.2.8 免疫荧光染色第59-60页
    3.2.9 Western blotting第60页
    3.2.10 统计学分析第60-61页
  3.3 结果与讨论第61-70页
    3.3.1 HEDN水凝胶的体外生物相容性第61-63页
    3.3.2 HEDN水凝胶的体内生物相容性第63-65页
    3.3.3 HEDN水凝胶对BADSCs向心肌细胞分化的影响第65-68页
    3.3.4 HEDN水凝胶对细胞Connexin 43 蛋白表达的影响第68-70页
  3.4 本章结论第70-71页
第四章 聚 3,4-乙烯二氧噻吩/海藻酸钠粒子增强型多孔支架研制及性能调控第71-86页
  4.1 引言第71-72页
  4.2 实验部分第72-75页
    4.2.1 实验原料和仪器第72-73页
4.2.2“一步法”制备PEDOT/海藻酸钠水凝胶第73页
    4.2.3 导电PEDOT/海藻酸钠多孔支架(PAMCS)的制备第73页
    4.2.4 PAMCS多孔支架红外表征第73-74页
    4.2.5 PEDOT/海藻酸钠水凝胶透射电镜观察第74页
    4.2.6 PEDOT/海藻酸钠水凝胶溶胀度测定第74页
    4.2.7 PEDOT/海藻酸钠水凝胶降解性能检测第74页
    4.2.8 PEDOT/海藻酸钠水凝胶力学性能测试第74页
    4.2.9 PEDOT/海藻酸钠水凝胶电学性能测试第74-75页
    4.2.10 PEDOT/海藻酸钠水凝胶对蛋白的吸附性能第75页
    4.2.11 扫描电镜观察多孔海绵(PAMCS)的形态第75页
  4.3 结果与讨论第75-85页
    4.3.1 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的制备及化学结构的表征第75-78页
    4.3.2 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的溶胀性能第78-79页
    4.3.3 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的力学性能第79-80页
    4.3.4 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的降解性能第80-81页
    4.3.5 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的电化学性能第81-83页
    4.3.6 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的蛋白吸附能力第83-84页
    4.3.7 PAMCS多孔支架的空间结构第84-85页
  4.4 本章结论第85-86页
第五章 基于聚 3,4-乙烯二氧噻吩/海藻酸钠多孔支架的工程化心肌组织构建第86-96页
  5.1 引言第86页
  5.2 实验部分第86-89页
    5.2.1 实验原料和仪器第86页
    5.2.2 棕色脂肪来源间充质干细胞的分离第86页
    5.2.3 Alamar Blue测试第86-87页
    5.2.4 BADSCs在支架材料内部的粘附和分布情况第87页
    5.2.5 BADSCs在支架中的激光共聚焦显微镜观察第87-88页
    5.2.6 BADSCs在支架中的扫描电镜观察第88页
    5.2.7 BADSCs在支架中免疫荧光染色第88页
    5.2.8 统计学分析第88-89页
  5.3 结果与讨论第89-95页
    5.3.1 BADSCs在PAMCS中的增殖行为第89页
    5.3.2 BADSCs在PAMCS中的分布第89-92页
    5.3.3 PAMCS对BADSCs心肌分化的调控作用第92-94页
    5.3.4 PAMCS对Connexin 43 表达的促进作用第94-95页
  5.4 本章结论第95-96页
第六章 结论与展望第96-99页
  6.1 结论第96-97页
  6.2 创新点第97页
  6.3 实验中的不足以及对后续工作建议第97-99页
参考文献第99-117页
发表论文和参加科研情况说明第117-118页
致谢第118-119页

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