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神经保护药物TBN在缺血脑卒中大鼠模型中的药效与作用机理研究

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神经保护药物TBN在缺血脑卒中大鼠模型中的药效与作用机理研究
论文目录
 
中文摘要第1-6页
ABSTRACT第6-10页
缩略词一览表第10-14页
前言第14-16页
第一章 综述第16-51页
    1.1. 缺血性脑卒中第16-42页
      1.1.1. 脑卒中发病概述第16页
      1.1.2. 缺血性脑卒中定义及其病理变化第16-17页
      1.1.3. CIS发病机制第17-34页
      1.1.4. CIS主要治疗策略第34-36页
      1.1.5. 神经保护剂研发概况第36-42页
    1.2. 神经保护剂临床前药效学研究要点概述第42-51页
      1.2.1. 神经保护剂临床前药效研究总体指导原则第42-43页
      1.2.2. 实验动物的选择第43页
      1.2.3. 实验模型的选择第43-44页
      1.2.4. 线栓法脑卒中模型造模过程中的要点概述第44-46页
      1.2.5. 实验环境的影响和生理指标的控制第46-48页
      1.2.6. 实验指标第48-49页
      1.2.7. 神经保护剂量效关系研究第49-50页
      1.2.8. 神经保护剂治疗时间窗研究第50页
      1.2.9. 神经保护剂药代动力学研究第50页
      1.2.10. 其它问题第50-51页
第二章 神经保护剂药效学研究关键技术的建立及实验质量控制第51-57页
  1. 实验人员技能水平的培训、实验方案的设计优化与实验管理体系的建立第51-52页
  2. CIS大鼠模型的建立与优化第52-57页
第三章 TBN在永久性缺血脑卒中大鼠模型中量效关系研究第57-72页
  1. 实验材料与实验仪器第57-60页
  2. 实验方法第60-63页
  3. 实验结果第63-70页
  4. 实验结论第70-72页
第四章 TBN在永久性缺血脑卒中大鼠模型中药效学作用研究第72-91页
  1. 实验材料与实验仪器第72-73页
  2. 实验方法第73页
  3. 实验结果第73-89页
  4. 结论与讨论第89-91页
第五章 TBN、NXY-059、TMP在大鼠永久性缺血脑卒中模型中药效学研究第91-100页
  1. 实验材料与实验仪器第91页
  2. 实验方法第91-92页
  3. 实验结果第92-98页
  4. 小结与讨论第98-100页
第六章 TBN在永久性缺血脑卒中大鼠模型中治疗时间窗的研究第100-109页
  1. 实验材料与实验仪器第100页
  2. 实验方法第100-101页
  3. 实验结果第101-107页
  4. 小结与讨论第107-109页
第七章 TBN不同给药方式对永久性缺血脑卒中大鼠的保护作用研究第109-120页
1. 实验材料第109页
2. 实验方法第109-110页
3. 实验结果第110-118页
    3.1. TBN静脉推注给药和静脉点滴给药对P-MCAO模型大鼠保护作用研究第110-117页
    3.2. TBN在正常大鼠中单次静脉点滴和静脉推注给药血浆药物浓度的研究第117-118页
4. 实验结论与讨论第118-120页
第八章 TBN对缺血再灌注脑卒中大鼠模型的保护作用研究第120-148页
  1. 实验目的第120页
  2. 符合性第120页
  3. 实验材料与实验仪器第120-126页
  4. 实验方法第126-129页
  5. 实验结果第129-146页
  6. 实验讨论与结论第146-148页
第九章 TBN对全脑缺血脑卒中大鼠的保护作用研究第148-165页
  1. 实验目的第148页
  2. 实验材料与实验仪器第148-151页
  3. 实验方法第151-155页
  4. 实验结果第155-164页
  5. 实验结论第164-165页
第十章 TBN对缺血脑卒中大鼠保护作用机理研究第165-187页
  1. 实验材料与实验仪器第165-166页
  2. 实验方法第166-169页
  3. 实验结果第169-181页
  3.1 TBN在正常大鼠皮层神经线粒体和P-MCAO模型大鼠半影区脑组织神经细胞中的抗氧化作用机理研究第169-173页
      3.1.1. TBN对抗霉素A诱导的SD正常大鼠皮层神经细胞线粒体内自由基的清除作用第169-170页
      3.1.2. TBN对抗霉素A诱导的SD大鼠线粒体MDA的影响第170-171页
      3.1.3. TBN对CACL2诱导的SD大鼠线粒体肿胀的影响第171-172页
      3.1.4. TBN通过降低P-MCAO大鼠皮层脑组织神经细胞 4-HNE和 8-OHDG含量,保护半影区脑组织神经细胞损伤第172-173页
  3.2 TBN通过抑制神经细胞凋亡,保护P-MCAO大鼠半影区脑组织神经细胞损伤第173-178页
      3.2.1. TBN给药后P-MCAO大鼠半影区脑组织HE染色结果第173-174页
      3.2.2. TBN对P-MCAO大鼠半影区脑组织神经元细胞和神经胶质细胞免疫组化染色结果第174-175页
      3.2.3. TBN通过抑制线粒体凋亡通路保护P-MCAO大鼠半影区神经细胞的损伤第175-177页
      3.2.4. TBN对P-MCAO大鼠半影区脑组织P-AKT蛋白表达的影响第177-178页
  3.3 TBN通过促进CNPASE、PSD95和MEF2C蛋白表达,抑制P-MCAO大鼠半影区神经细胞轴突和突触的损伤第178-181页
    3.3.1 TBN对永久性缺血脑卒中大鼠半影区脑组织CNPASE蛋白表达的影响第178-179页
    3.3.2 TBN对永久性缺血脑卒中大鼠半影区脑组织PSD95蛋白表达的影响第179-180页
    3.3.3 TBN对永久性缺血脑卒中大鼠半影区脑组织神经修复蛋白MEF2C的影响第180-181页
  3.4 TBN通过调控P-MCAO大鼠半影区脑组织VEGF蛋白表达,保护神经细胞损伤和血管损伤第181页
  4. 实验结论与讨论第181-187页
实验结论与展望第187-193页
参考文献第193-206页
附录第206-210页
致谢第210-213页

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