论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-18页 |
| 英文缩写词 | 第18-20页 |
| 第1章 绪论 | 第20-22页 |
| 第2章 综述 | 第22-36页 |
| 2.1 滤过泡瘢痕化的机制 | 第22-28页 |
| 2.1.1 生长因子TGF-β在瘢痕形成中的作用 | 第22-25页 |
| 2.1.2 成纤维细胞生物学行为特征与瘢痕化 | 第25页 |
| 2.1.3 抑制滤过泡瘢痕形成的抗代谢药物 | 第25-28页 |
| 2.1.4 结束语 | 第28页 |
| 2.2 氯离子通道的研究进展 | 第28-36页 |
| 2.2.1 CLC型氯离子通道的分子结构 | 第29页 |
| 2.2.2 CLC通道的组织分布 | 第29-30页 |
| 2.2.3 CLC通道的生物学功能 | 第30-35页 |
| 2.2.4 结束语 | 第35-36页 |
| 第3章 TGF-Β1 诱导HCONF细胞纤维化 | 第36-54页 |
| 3.1 实验材料 | 第36-39页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第36-37页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第38-39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-48页 |
| 3.2.1 主要试剂的配制 | 第39页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第39-40页 |
| 3.2.3 用CCK-8 法检测HconF细胞增殖 | 第40页 |
| 3.2.4 流式细胞仪检测HconF细胞周期分布情况 | 第40-41页 |
| 3.2.5 qRT-PCR法检测α-SMA、collagen I和fibronectin在Hcon F细胞中的表达 | 第41-44页 |
| 3.2.6 Western blot法检测α-SMA、collagen I和fibronectin在Hcon F细胞中的蛋白表达 | 第44-46页 |
| 3.2.7 细胞划痕实验检测Hcon F细胞迁移 | 第46-47页 |
| 3.2.8 Transwell迁移实验检测Hcon F细胞迁移 | 第47页 |
| 3.2.9 统计学处理 | 第47-48页 |
| 3.3 实验结果 | 第48-51页 |
| 3.3.1 TGF-β1 对Hcon F细胞增殖的影响 | 第48页 |
| 3.3.2 TGF-β1 对Hcon F细胞周期的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.3 TGF-β1 对Hcon F细胞转化的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.4 TGF-β1 对Hcon F细胞ECM合成的影响 | 第50-51页 |
| 3.3.5 TGF-β1 对Hcon F细胞迁移的影响 | 第51页 |
| 3.4 小结 | 第51-54页 |
| 第4章 NPPB对TGF-β1 诱导的HCONF细胞纤维化的影响 | 第54-66页 |
| 4.1 实验材料 | 第54-55页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第54-55页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第55页 |
| 4.2 实验方法 | 第55-59页 |
| 4.2.1 主要试剂的配制 | 第55-56页 |
| 4.2.2 用CCK-8 法检测NPPB对HconF细胞增殖的影响 | 第56页 |
| 4.2.3 用流式细胞仪检测NPPB对HconF细胞周期分布的影响37 | 第56页 |
| 4.2.4 qRT-PCR法检测NPPB对α-SMA、collagen I和fibronecti在Hcon F细胞中的表达的影响 | 第56页 |
| 4.2.5 Western blot法检测NPPB对HconF细胞α-SMA、collagen I、fibronectin、PI3K、p-PI3K、AKT、和p-Akt表达的影响 | 第56-58页 |
| 4.2.6 细胞划痕实验检测NPPB对HconF细胞迁移的影响 | 第58页 |
| 4.2.7 Transwell迁移实验检测NPPB对HconF细胞迁移的影响 | 第58页 |
| 4.2.8 统计学处理 | 第58-59页 |
| 4.3 实验结果 | 第59-64页 |
| 4.3.1 NPPB对TGF-β1 诱导的HconF细胞增殖的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.2 NPPB对TGF-β1 诱导的HconF细胞周期的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.3 NPPB对TGF-β1 诱导的HconF细胞表型转化的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.4 NPPB对TGF-β1 诱导的HconF细胞ECM合成的影响 | 第62-63页 |
| 4.3.5 NPPB对TGF-β1 诱导的HconF细胞迁移的影响 | 第63页 |
| 4.3.6 NPPB对TGF-β1 诱导的PI3K/Akt信号通路表达的影响 | 第63-64页 |
| 4.4 小结 | 第64-66页 |
| 第5章 抑制CLC-2 的表达对TGF-Β1 诱导的HCONF细胞纤维化的影响 | 第66-82页 |
| 5.1 实验材料 | 第66-67页 |
| 5.1.1 主要试剂 | 第66-67页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第67页 |
| 5.2 实验方法 | 第67-70页 |
| 5.2.1 脂质体Lipofectamine2000介导的CLC-2 si RNA转染 | 第67-68页 |
| 5.2.2 CLC-2 si RNA转染率的检测 | 第68-69页 |
| 5.2.3 用qRT-PCR及Westen blot方法检测转染后的Hcon F细胞CLC-2 在m RNA及蛋白水平表达变化 | 第69页 |
| 5.2.4 用CCK-8 法检测CLC-2 siRNA转染对Hcon F细胞增殖的影响 | 第69页 |
| 5.2.5 qRT-PCR法检测CLC-2 siRNA转染对α-SMA、collagen I和fibronectin在Hcon F细胞中的表达的影响 | 第69页 |
| 5.2.6 Western blot法检测CLC-2 siRNA转染对Hcon F细胞α-SMA、collagen I、fibronectin、PI3K、p-PI3K、AKT、和p-Akt表达的影响 | 第69页 |
| 5.2.7 细胞划痕实验检测CLC-2 siRNA转染对HconF细胞迁移的影响 | 第69-70页 |
| 5.2.8 Transwell迁移实验检测CLC-2 si RNA转染对HconF细胞迁移 | 第70页 |
| 5.2.9 统计学处理 | 第70页 |
| 5.3 实验结果 | 第70-80页 |
| 5.3.1 CLC-2 siRNA转染率的观察 | 第70页 |
| 5.3.2 CLC-2 siRNA转染对HconF细胞CLC-2 mRNA和蛋白表达的影响 | 第70-72页 |
| 5.3.3 TGF-β1 对HconF细胞CLC-2 mRNA和蛋白表达的影响53 | 第72-73页 |
| 5.3.4 抑制ClC-2 表达对TGF-β1 诱导的HconF细胞CLC-2mRNA和蛋白表达的影响 | 第73-74页 |
| 5.3.5 抑制ClC-2 表达对TGF-β1 诱导的HconF细胞增殖的影响55 | 第74-75页 |
| 5.3.6 抑制ClC-2 表达对TGF-β1 诱导的HconF细胞表型转化的影响 | 第75-76页 |
| 5.3.7 抑制ClC-2 表达对TGF-β1 诱导的HconF细胞ECM合成的影响 | 第76-78页 |
| 5.3.8 抑制ClC-2 表达对TGF-β1 诱导的HconF细胞迁移的影响59 | 第78-79页 |
| 5.3.9 抑制ClC-2 表达对TGF-β1 诱导的PI3K/Akt信号通路表达的影响 | 第79-80页 |
| 5.4 小结 | 第80-82页 |
| 第6章 讨论 | 第82-90页 |
| 第7章 结论 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-115页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
