论文目录 | |
中文摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-16页 |
研究现状、成果 | 第13-14页 |
研究目的、方法 | 第14-16页 |
一、人脐带间充质干细胞原代培养及鉴定 | 第16-25页 |
1.1 对象和方法 | 第16-21页 |
1.1.1 对象 | 第16-18页 |
1.1.2 方法 | 第18-21页 |
1.2 结果 | 第21-22页 |
1.2.1 hUC-MSCs的形态学观察 | 第21-22页 |
1.2.2 hUC-MSCs的成脂诱导分化 | 第22页 |
1.2.3 hUC-MSCs的成骨诱导分化 | 第22页 |
1.2.4 hUC-MSCs的染色体核型鉴定 | 第22页 |
1.2.5 hUC-MSCs的细胞表型检测 | 第22页 |
1.3 讨论 | 第22-24页 |
1.4 小结 | 第24-25页 |
二、人脐带间充质干细胞移植对大鼠腹膜纤维化的修复作用 | 第25-37页 |
2.1 对象和方法 | 第25-32页 |
2.1.1 对象 | 第25-27页 |
2.1.2 方法 | 第27-32页 |
2.2 结果 | 第32-33页 |
2.2.1 hUC-MSCs对PF大鼠腹膜功能的影响 | 第32页 |
2.2.2 hUC-MSCs对大鼠腹膜形态学改变的影响 | 第32-33页 |
2.2.3 hUC-MSCs对PF大鼠Ⅰ、Ⅲ型胶原表达的影响 | 第33页 |
2.3 讨论 | 第33-36页 |
2.3.1 大鼠腹膜纤维化模型的建立及hUC-MSCs的干预 | 第33-34页 |
2.3.2 hUC-MSCs对腹膜纤维化大鼠治疗未见免疫排斥反应 | 第34-35页 |
2.3.3 hUC-MSCs对腹膜纤维化大鼠抗纤维化的作用途径 | 第35-36页 |
2.4 小结 | 第36-37页 |
三、人脐带间充质干细胞移植对大鼠腹膜纤维化的修复机制 | 第37-53页 |
3.1 对象和方法 | 第37-44页 |
3.1.1 对象 | 第37-39页 |
3.1.1.1 实验动物 | 第37页 |
3.1.1.2 实验组织 | 第37页 |
3.1.1.3 实验细胞 | 第37页 |
3.1.1.4 主要试剂 | 第37-39页 |
3.1.1.5 主要仪器 | 第39页 |
3.1.2 方法 | 第39-44页 |
3.1.2.1 免疫组化染色 | 第39-40页 |
3.1.2.2 免疫组化分析 | 第40页 |
3.1.2.3 hUC-MSCs的复苏、传代 | 第40-41页 |
3.1.2.4 原代RPMCs的分离、培养、传代、鉴定、分组 | 第41-42页 |
3.1.2.5 细胞总蛋白的提取 | 第42页 |
3.1.2.6 细胞总蛋白浓度的检测 | 第42-43页 |
3.1.2.7 Western Blot检测 | 第43-44页 |
3.1.2.8 统计学分析 | 第44页 |
3.2 结果 | 第44-45页 |
3.2.1 大鼠腹膜组织BMP-7 的表达及半定量分析结果 | 第44页 |
3.2.2 大鼠腹膜组织TGF-β1 的表达及半定量分析结果 | 第44页 |
3.2.3 大鼠腹膜组织E-cadherin的表达及半定量分析结果 | 第44页 |
3.2.4 大鼠腹膜组织α-SMA的表达及半定量分析结果 | 第44-45页 |
3.2.5 大鼠腹膜组织Snail1的表达及半定量分析结果 | 第45页 |
3.2.6 RPMCs的鉴定 | 第45页 |
3.2.7 hUC-MSCs对RPMCs EMT的抑制作用 | 第45页 |
3.2.8 hUC-MSCs对RPMCs pSmad2的抑制作用 | 第45页 |
3.3 讨论 | 第45-52页 |
3.3.1 hUC-MSCs通过抑制EMT改善大鼠腹膜纤维化 | 第45-48页 |
3.3.2 hUC-MSCs通过抑制TGF-β1/Smad2通路改善RPMCs的EMT | 第48-49页 |
3.3.3 hUC-MSCs抑制TGF-β1/Smad2通路的可能机制 | 第49-52页 |
3.4 小结 | 第52-53页 |
全文结论 | 第53-54页 |
论文创新点 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-67页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第67-68页 |
附图 | 第68-97页 |
综述 microRNA与腹膜纤维化 | 第97-110页 |
综述参考文献 | 第104-110页 |
致谢 | 第110-111页 |
个人简历 | 第111页 |