论文目录 | |
中文摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-11页 |
英文缩略语注释 (Abbreviation) | 第11-13页 |
绪论 | 第13-17页 |
第1部分 琥珀酸及其受体 GPR91在早期糖尿病大鼠视网膜病变中的作用及其意义 | 第17-46页 |
1.1 引言 | 第17-19页 |
1.2 材料和方法 | 第19-36页 |
1.2.1 实验材料 | 第19-22页 |
1.2.2 仪器设备 | 第22-24页 |
1.2.3 实验方法 | 第24-36页 |
1.3 结果 | 第36-43页 |
1.3.1 各组大鼠的一般情况 | 第36-37页 |
1.3.2 大鼠视网膜中琥珀酸的含量 | 第37-38页 |
1.3.3 大鼠视网膜中GPR91的表达 | 第38-39页 |
1.3.4 大鼠视网膜中GPR91的定位 | 第39页 |
1.3.5 GPR91 shRNA慢病毒载体转染效率 | 第39-40页 |
1.3.6 各组大鼠视网膜的病理改变 | 第40-41页 |
1.3.7 各组大鼠视网膜的超微结构 | 第41-42页 |
1.3.8 各组大鼠视网膜血管的渗漏情况 | 第42-43页 |
1.4 讨论 | 第43-45页 |
1.5 结论 | 第45-46页 |
第2部分 GPR91 通过 MAPK信号通路调控 神经节细胞 RGC-5 分泌 VEGF 的作用机制 | 第46-70页 |
2.1 引言 | 第46-47页 |
2.2 材料和方法 | 第47-55页 |
2.2.1 实验材料 | 第47-49页 |
2.2.2 仪器设备 | 第49页 |
2.2.3 实验方法 | 第49-55页 |
2.3 结果 | 第55-66页 |
2.3.1 RGC-5 细胞中GPR91的表达和定位 | 第55-56页 |
2.3.2 GPR91 shRNA慢病毒载体的转染 | 第56-57页 |
2.3.3 GPR91 shRNA对RGC-5 细胞活力的影响 | 第57-58页 |
2.3.4 GPR91对高糖/琥珀酸孵育下RGC-5 细胞VEGF表达的调控 | 第58-59页 |
2.3.5 GPR91对高糖/琥珀酸孵育下RGC-5 细胞ERK1/2、JNK信号通路的调控 | 第59-63页 |
2.3.6 GPR91对琥珀酸孵育下RGC-5 细胞ERK1/2 (JNK)/COX-2/PGE2信号通路的调控 | 第63-64页 |
2.3.7 GPR91通过ERK1/2 (JNK)/COX-2/PGE2信号通路调控琥珀酸孵育下RGC-5 细胞VEGF的释放 | 第64页 |
2.3.8 GPR91调控血管内皮细胞的增殖和迁移能力 | 第64-66页 |
2.4 讨论 | 第66-69页 |
2.5 结论 | 第69-70页 |
第3部分 GPR91 介导 MAPK 信号通路调控 原代视网膜神经节细胞 VEGF 转录的分子机制 | 第70-106页 |
3.1 引言 | 第70-72页 |
3.2 材料和方法 | 第72-81页 |
3.2.1 实验材料 | 第72-73页 |
3.2.2 实验方法 | 第73-81页 |
3.3 结果 | 第81-101页 |
3.3.1 大鼠原代RGCs的观察和鉴定 | 第81-83页 |
3.3.2 氯化钴刺激下RGCs中VEGF的表达 | 第83-84页 |
3.3.3 氯化钴对大鼠原代RGCs活力的影响 | 第84-85页 |
3.3.4 原代RGCs中GPR91的表达和定位 | 第85-86页 |
3.3.5 原代RGCs中沉默GPR91基因的效率验证 | 第86-87页 |
3.3.6 氯化钴刺激下GPR91对VEGF表达的影响 | 第87-89页 |
3.3.7 氯化钴刺激下RGCs中ERK1/2 通路的激活情况 | 第89页 |
3.3.8 氯化钴对RGCs中AP1和C/EBP的影响 | 第89-93页 |
3.3.9 氯化钴刺激下GPR91对ERK1/2 通路以及AP1和C/EBP的调控 | 第93-95页 |
3.3.10 VEGF启动子报告基因突变分析 | 第95-98页 |
3.3.11 RGCs内转录因子AP1和C/EBP与VEGF基因启动子区结合 | 第98-99页 |
3.3.12 氯化钴刺激下GPR91通过调节ERK1/2/C/EBPβ对VEGF表达的影响 | 第99-101页 |
3.4 讨论 | 第101-104页 |
3.5 结论 | 第104-106页 |
总结与展望 | 第106-108页 |
参考文献 | 第108-116页 |
致谢 | 第116-118页 |
攻读博士学位期间科研成果 | 第118页 |