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免疫毒素Onconase-V3的组成型表达及抗肿瘤作用研究

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免疫毒素Onconase-V3的组成型表达及抗肿瘤作用研究
论文目录
 
中文摘要第1-7页
abstract第7-17页
英文缩略词表第17-18页
第1章 绪论第18-32页
  1.1 免疫毒素第19-20页
    1.1.1 免疫毒素的靶向结构域第19页
    1.1.2 毒素结构域第19-20页
  1.2 ONCONASE的来源及结构第20-23页
    1.2.1 北美豹蛙第20页
    1.2.2 Onconase的发现第20-21页
    1.2.3 Onconase的结构第21-22页
    1.2.4 Onconase的性质第22页
    1.2.5 Onconase的核糖核酸酶活性第22-23页
    1.2.6 Onconase的抗肿瘤作用第23页
  1.3 趋化因子及其受体第23-27页
    1.3.1 趋化因子的命名第24页
    1.3.2 趋化因子的分类第24-25页
    1.3.3 CXC类趋化因子及定位第25-26页
    1.3.4 CXCR4第26-27页
    1.3.5 V3的来源第27页
  1.4 毕赤酵母表达系统第27-30页
    1.4.1 毕赤酵母表达菌株第27-28页
    1.4.2 毕赤酵母表达载体第28-29页
    1.4.3 启动子第29页
    1.4.4 信号肽第29-30页
    1.4.5 发酵策略第30页
  1.5 重组免疫毒素ONC-V3的设计第30-32页
第2章 ONCONASE- V3毕赤酵母分泌表达体系的建立第32-54页
  2.1 材料和方法第32-45页
    2.1.1 仪器及设备第32页
    2.1.2 实验材料第32-34页
    2.1.3 酵母表达质粒pGAPZαA-Pre-Onconase-V3的构建第34-36页
    2.1.4 pGAPZαA-Onc-V3转化毕赤酵母X-33第36-37页
    2.1.5 高拷贝转化子的获得第37-38页
    2.1.6 高拷贝转化子的摇瓶发酵第38页
    2.1.7 表达产物Tricine电泳分析第38-39页
    2.1.8 重组子遗传稳定性研究第39页
    2.1.9 酵母染色体DNA的提取第39-40页
    2.1.10 PCR鉴定第40页
    2.1.11 Onc4的摇瓶发酵第40-41页
    2.1.12 Western Blot分析第41-42页
    2.1.13 Onc-V3的纯化小试第42-43页
    2.1.14 Onc-V3蛋白的Rnase活性测定第43-44页
    2.1.15 Onc-V3蛋白含量测定第44-45页
  2.2 结果第45-53页
    2.2.1 pGAPZαA-Onc-V3质粒第45-46页
    2.2.2 毕赤酵母电转化条件筛选第46页
    2.2.3 毕赤酵母高拷贝转化子筛选第46-47页
    2.2.4 Tricine电泳筛选高表达Onc-V3的毕赤酵母X-33工程菌第47页
    2.2.5 重组子Onc4遗传稳定性研究第47-48页
    2.2.6 pGAPZα A-Onc-V3转化X-33阳性克隆PCR结果第48-49页
    2.2.7 含Onc-V3毕赤酵母X-33工程菌摇瓶培养第49-50页
    2.2.8 Western Blot分析第50页
    2.2.9 Onc-V3的纯化小试第50-51页
    2.2.10 Onc-V3酶活性测定第51-52页
    2.2.11 Onc-V3蛋白含量测定第52-53页
  2.3 讨论第53-54页
第3章 重组毕赤酵母ONC-V3的优化表达第54-78页
  3.1 材料与方法第54-61页
    3.1.1 仪器及设备第54页
    3.1.2 主要溶液配制第54-55页
    3.1.3 毕赤酵母表达Onc-V3的培养条件选择第55-56页
    3.1.4 响应面分析法对于发酵表达Onc-V3条件的优化第56-58页
    3.1.5 毕赤酵母发酵罐发酵表达Onc-V3第58-60页
    3.1.6 发酵液Onc-V3样品粗处理第60页
    3.1.7 Ni-Sepharose亲和层析第60页
    3.1.8 凝胶过滤层析第60-61页
    3.1.9 Onc-V3的测定第61页
    3.1.10 HPLC法检测Onc-V3纯度第61页
  3.2 结果第61-75页
    3.2.1 毕赤酵母表达Onc-V3最佳碳源的确定第61-62页
    3.2.2 毕赤酵母表达Onc-V3最佳氮源的确定第62-63页
    3.2.3 毕赤酵母表达ONC-V3最佳温度的确定第63页
    3.2.4 毕赤酵母表达ONC-V3最佳PH值的确定第63-64页
    3.2.5 ONC-V3摇瓶发酵条件响应面分析优化第64-72页
    3.2.6 ONC-V3发酵罐发酵结果第72-73页
    3.2.7 ONC-V3发酵罐发酵纯化结果第73-74页
    3.2.8 高效液相色谱法检测ONC-V3纯度第74-75页
  3.3 讨论第75-78页
第4章 ONC-V3对肿瘤细胞抑制作用研究第78-121页
  4.1 材料与方法第78-89页
    4.1.1 器材及设备材料第78-79页
    4.1.2 主要试剂第79页
    4.1.3 细胞株第79页
    4.1.4 试剂配制第79-80页
    4.1.5 Onc-V3的溶血实验第80页
    4.1.6 细胞培养第80-81页
    4.1.7 Onc-V3对肿瘤细胞的生长抑制作用第81-82页
    4.1.8 DNA ladder实验第82-83页
    4.1.9 观察蛋白Onc-V3在细胞中的分布第83-84页
    4.1.10 DAPI染色观察细胞形态第84页
    4.1.11 流式细胞术分析Onc-V3的作用机制第84-85页
    4.1.12 Onc-V3对于肿瘤细胞迁移的影响第85页
    4.1.13 Onc-V3对于肿瘤细胞侵袭的影响第85-86页
    4.1.14 Onc-V3诱导肿瘤细胞HO-8910PM凋亡的细胞信号通路第86-89页
  4.2 实验结果第89-118页
    4.2.1 Onc-V3溶血实验第89-91页
    4.2.2 Onc-V3对细胞的抑制作用第91-103页
      4.2.2.1 Onc-V3 对 HEK293 细胞的作用第91-93页
      4.2.2.2 Onc-V3对A549细胞的作用第93-95页
      4.2.2.3 Onc-V3对HepG2细胞的作用第95-97页
      4.2.2.4 Onc-V3对MCF-7 细胞的作用第97-99页
      4.2.2.5 Onc-V3对Hela细胞的作用第99-101页
      4.2.2.6 Onc-V3对HO-8910PM细胞的作用第101-103页
    4.2.3 DNA ladder实验第103-104页
    4.2.4 Onc-V3在HO-8910PM细胞中的分布第104-106页
    4.2.5 DAPI染色观察细胞形态第106-107页
    4.2.6 流式细胞仪检测Onc-V3对HO-8910PM细胞的抑制作用第107-110页
    4.2.7 Onc-V3对HO-8910PM细胞迁移的影响第110-114页
    4.2.8 Onc-V3对HO-8910PM细胞侵袭的影响第114-116页
    4.2.9 Onc-V3诱导HO-8910PM细胞凋亡的信号通路分析第116-118页
  4.3 讨论第118-121页
第5章 结论第121-122页
参考文献第122-144页
作者简介第144-146页
致谢第146页

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