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右旋龙脑促进姜黄素类化合物抑制HepG2肝癌细胞增殖的分子机制研究

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右旋龙脑促进姜黄素类化合物抑制HepG2肝癌细胞增殖的分子机制研究
论文目录
 
摘要第1-8页
ABSTRACT第8-16页
英文缩略词表第16-17页
第一章 绪论第17-44页
  1.1 膳食干预预防慢性非传染性疾病概述第17-19页
  1.2 姜黄素类化合物的概述第19-28页
    1.2.1 姜黄素类化合物的化学成分、结构和性质第19-23页
    1.2.2 姜黄素类化合物的构效关系第23-25页
    1.2.3 姜黄素类化合物的抗肿瘤机理第25-27页
    1.2.4 姜黄素类化合物在食品中的应用第27-28页
    1.2.5 姜黄素类化合物在应用中存在的问题第28页
  1.3 右旋龙脑概述第28-31页
    1.3.1 右旋龙脑的简介第28-29页
    1.3.2 右旋龙脑促进药物跨膜吸收的研究现状第29-30页
    1.3.3 右旋龙脑在抗肿瘤领域的研究现状第30-31页
  1.4 细胞凋亡机制概述第31-35页
    1.4.1 线粒体途径(mitochondria-mediated pathway)第31-32页
    1.4.2 死亡受体途径 (death receptor-mediated pathway)第32-34页
    1.4.3 细胞周期调控第34-35页
  1.5 细胞信号传导通路概述第35-38页
    1.5.1 MAPK通路对细胞周期的调节第35-36页
    1.5.2 P13K/AKT通路对细胞周期的调节第36-37页
    1.5.3 p53 通路对细胞周期的调节第37-38页
  1.6 蛋白组学概述第38-41页
    1.6.1 蛋白质组学的研究内容第38页
    1.6.2 蛋白质组学的研究方法第38-41页
  1.7 本课题的研究意义和研究内容第41-44页
    1.7.1 本课题的研究意义第41-43页
    1.7.2 本课题的研究内容第43-44页
第二章 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对HepG2 细胞生长影响初探第44-63页
  2.1 引言第44-45页
  2.2 实验材料与仪器设备第45-46页
    2.2.1 材料与试剂第45页
    2.2.2 仪器与设备第45-46页
  2.3 实验方法第46-50页
    2.3.1 溶液的配制第46-48页
    2.3.2 细胞的培养第48-49页
    2.3.3 细胞处理与形态观察第49页
    2.3.4 MTT测定细胞存活率第49-50页
  2.4 实验结果与讨论第50-61页
    2.4.1 姜黄素类化合物对HepG2 和L02 细胞生长的影响第50-53页
    2.4.2 右旋龙脑对HepG2 和L02 细胞生长的影响第53-54页
    2.4.3 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对HepG2 和L02 细胞生长的影响第54-61页
  2.5 本章小结第61-63页
第三章 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对HepG2 细胞的作用靶点研究第63-76页
  3.1 引言第63-64页
  3.2 实验试剂与仪器设备第64-65页
    3.2.1 材料与试剂第64页
    3.2.2 仪器与设备第64-65页
  3.3 实验方法第65-67页
    3.3.1 溶液的配制第65页
    3.3.2 细胞培养第65页
    3.3.3 细胞内姜黄素类化合物含量的测定第65-66页
    3.3.4 细胞内姜黄素类化合物的定位测定第66-67页
    3.3.5 Tf、FA和RGD封闭实验第67页
  3.4 实验结果与讨论第67-75页
    3.4.1 姜黄素类化合物的标准曲线第67-68页
    3.4.2 细胞内姜黄素类化合物的含量第68-70页
    3.4.3 细胞内姜黄素类化合物的定位第70-71页
    3.4.4 姜黄素类化合物进入细胞的途径第71-75页
  3.5 本章小结第75-76页
第四章 右旋龙脑促进姜黄素类化合物在HepG2 细胞中吸收的机理研究第76-90页
  4.1 引言第76-77页
  4.2 实验试剂与仪器设备第77-79页
    4.2.1 材料与试剂第77-78页
    4.2.2 仪器与设备第78-79页
  4.3 实验方法第79-83页
    4.3.1 溶液的配制第79-80页
    4.3.2 蛋白质样品的准备第80-81页
    4.3.3 Western blot检测ABC家族蛋白第81-83页
    4.3.4 YO-PRO-1 染色检测细胞膜通透性第83页
  4.4 实验结果与讨论第83-88页
    4.4.1 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对ABCB1 耐药蛋白的影响第83-85页
    4.4.2 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对ABCC1 和ABCG2 耐药蛋白的影响第85-86页
    4.4.3 右旋龙脑对细胞通透性的影响第86-88页
    4.4.4 右旋龙脑促进姜黄素类化合物吸收的物理模型第88页
  4.5 本章小结第88-90页
第五章 右旋龙脑联合姜黄素类化合物抑制HepG2 细胞增殖的机理研究第90-108页
  5.1 引言第90页
  5.2 实验试剂与仪器设备第90-91页
    5.2.1 材料与试剂第90-91页
    5.2.2 仪器与设备第91页
  5.3 实验方法第91-94页
    5.3.1 溶液的配制第91页
    5.3.2 流式细胞术检测细胞周期第91-93页
    5.3.3 蛋白样品的准备第93页
    5.3.4 Western blot检测第93页
    5.3.5 ROS检测第93-94页
    5.3.6 NAC预处理对细胞存活率的影响第94页
  5.4 实验结果与讨论第94-106页
    5.4.1 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对HepG2 细胞的细胞周期分布的影响第94-96页
    5.4.2 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对细胞周期蛋白cyclin B1 及其激酶cdc2 活性的影响第96-99页
    5.4.3 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对MAPK通路和Akt通路的影响第99-102页
    5.4.4 右旋龙脑联合姜黄素类化合物对ROS产生的影响第102-105页
    5.4.5 右旋龙脑与姜黄素类化合物引起细胞发生G2/M期阻滞涉及的信号通路图第105-106页
  5.5 本章小结第106-108页
第六章 基于蛋白组学技术分析右旋龙脑联合姜黄素类化合物抑制HepG2 细胞增殖的分子机制第108-133页
  6.1 引言第108页
  6.2 实验试剂与仪器设备第108-110页
    6.2.1 材料与试剂第108-110页
    6.2.2 仪器与设备第110页
  6.3 实验方法第110-120页
    6.3.1 流式细胞实验第110页
    6.3.2 蛋白组学的方法步骤第110-119页
    6.3.3 蛋白样品的准备第119页
    6.3.4 Western blot检测第119-120页
    6.3.5 ROS检测第120页
    6.3.6 NAC预处理对细胞存活率的影响第120页
    6.3.7 NAC预处理对细胞周期的影响第120页
    6.3.8 NAC预处理对p53、p21 和p-histone的影响第120页
  6.4 实验结果与讨论第120-131页
    6.4.1 右旋龙脑联合姜黄素对HepG2 细胞的细胞周期分布的影响第120-121页
    6.4.2 右旋龙脑联合姜黄素处理HepG2 细胞后蛋白组学分析第121-126页
    6.4.3 右旋龙脑联合姜黄素对PSMA5、NPM和nhRNPC1/C2 蛋白的影响第126-128页
    6.4.4 右旋龙脑联合姜黄素对cdc2 和cyclin B1 蛋白的影响第128-129页
    6.4.5 右旋龙脑联合姜黄素对ROS产生的影响第129-131页
    6.4.6 右旋龙脑与姜黄素引起细胞发生G2/M期阻滞涉及的信号通路图第131页
  6.5 本章小结第131-133页
结论与展望第133-136页
参考文献第136-158页
攻读博士学位期间取得的研究成果第158-160页
致谢第160-162页
附件第162页

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