论文目录 | |
中文摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-15页 |
英文缩略词表 | 第15-16页 |
前言 | 第16-20页 |
第1章 microRNA-223 在幽门螺杆菌相关胃癌中的表达 | 第20-44页 |
1.1 材料和方法 | 第21-25页 |
1.1.1 胃癌组织标本 | 第21-22页 |
1.1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
1.1.3 主要仪器 | 第23页 |
1.1.4 主要溶液的配制 | 第23-25页 |
1.2 实验步骤 | 第25-32页 |
1.2.1 组织标本 H.pylori 感染鉴定 | 第25-29页 |
1.2.2 组织标本 miroRNA-223 表达水平检测 | 第29-32页 |
1.3 统计学分析 | 第32页 |
1.4 结果 | 第32-40页 |
1.4.1 胃癌组织标本中的 H.pylori 感染水平 | 第32页 |
1.4.2 胃癌组织中 CagA 的 mRNA 表达水平 | 第32-35页 |
1.4.3 CagA 在蛋白水平表达的检测 | 第35-37页 |
1.4.4 胃癌组织中 microRNA-223 表达水平 | 第37-38页 |
1.4.5 microRNA-223 表达与胃癌患者临床病理指标相关性 | 第38-40页 |
1.5 讨论 | 第40-42页 |
1.6 结论 | 第42-44页 |
第2章 幽门螺杆菌感染体外诱导胃癌细胞 miroRNA-223 表达研究 | 第44-64页 |
2.1 材料和方法 | 第45-56页 |
2.1.1 实验材料和仪器设备 | 第45-49页 |
2.1.2 实验方法与步骤 | 第49-56页 |
2.2 统计学处理 | 第56页 |
2.3 结果 | 第56-61页 |
2.3.1 H.pylori 诱导胃癌细胞 microRNA-223 表达 | 第56-57页 |
2.3.2 H.pylori 刺激不同胃癌细胞 microRNA-223 表达 | 第57-58页 |
2.3.3 H.pylori 刺激 SGC-7901 胃癌细胞 microRNA-223 表达的时间依赖性 | 第58-59页 |
2.3.4 H.pylori 感染的胃癌细胞 Drosha 和 Dicer 表达水平 | 第59-61页 |
2.4 讨论 | 第61-63页 |
2.5 结论 | 第63-64页 |
第3章 miroRNA-223 对胃癌细胞生长、迁移的影响 | 第64-76页 |
3.1 材料和方法 | 第65-66页 |
3.1.1 实验材料和仪器设备 | 第65页 |
3.1.2 主要试剂 | 第65页 |
3.1.3 主要仪器设备 | 第65-66页 |
3.2 方法与步骤 | 第66-68页 |
3.2.1 细胞培养 | 第66页 |
3.2.2 H.pylori 感染 AGS 或 MKN-45 细胞 | 第66页 |
3.2.3 细胞转染 miroRNA-223 mimics | 第66页 |
3.2.4 MTT 法测定 miroRNA-223 对胃癌细胞活性的影响 | 第66-67页 |
3.2.5 CCK-8 实验测定 miroRNA-223 对胃癌细胞增殖的影响 | 第67页 |
3.2.6 克隆形成实验 | 第67页 |
3.2.7 细胞迁移和侵袭实验 | 第67-68页 |
3.3 统计学处理 | 第68页 |
3.4 结果 | 第68-72页 |
3.4.1 microRNA-223 和对照 microRNA 转染对胃癌细胞活性影响 | 第68-70页 |
3.4.2 microRNA-223 转染促进胃癌细胞生长 | 第70页 |
3.4.3 microRNA-223 转染胃癌细胞后 CCK-8 试验测定 | 第70-71页 |
3.4.4 microRNA-223 转染胃癌细胞后克隆形成试验测定 | 第71页 |
3.4.5 microRNA-223 转染促进胃癌细胞迁移 | 第71-72页 |
3.5 讨论 | 第72-74页 |
3.6 结论 | 第74-76页 |
全文总结 | 第76-78页 |
参考文献 | 第78-100页 |
综述 | 第100-122页 |
参考文献 | 第110-122页 |
攻读期间取得的科研成果 | 第122-124页 |
致谢 | 第124页 |