论文目录 | |
提要 | 第1-5页 |
中文摘要 | 第5-9页 |
Abstract | 第9-17页 |
英文缩写表 | 第17-20页 |
第1章 绪论 | 第20-34页 |
综述 1 靶向 PI3K/AKT/mTOR 信号途径治疗乳腺癌的研究进展 | 第20-31页 |
1.1 乳腺癌治疗研究进展 | 第20-21页 |
1.2 PI3K/AKT/mTOR 信号途径 | 第21-25页 |
1.2.1 癌症中 PI3K/AKT/mTOR 信号途径的激活 | 第23-24页 |
1.2.2 乳腺癌亚型与 PI3K/AKT/mTOR 信号途径的激活 | 第24页 |
1.2.3 PI3K/AKT/mTOR 信号途径中特定靶点的特异性突变 | 第24-25页 |
1.3 PI3K/AKT/mTOR 信号途径抑制剂 | 第25-29页 |
1.3.1 靶向 PI3K/AKT/mTOR 信号途径的基本原理 | 第25-27页 |
1.3.2 第一代 PI3K 抑制剂 | 第27页 |
1.3.3 新一代 PI3K 抑制剂 | 第27-28页 |
1.3.4 双靶向 PI3K-mTOR 抑制剂 | 第28页 |
1.3.5 PTEN 与 PI3K/AKT/mTOR 信号途径 | 第28页 |
1.3.6 AKT 抑制剂 | 第28-29页 |
1.3.7 mTOR 抑制剂 | 第29页 |
1.4 结语 | 第29-31页 |
综述 220(S)-原人参二醇的研究进展 | 第31-34页 |
1.5 20(S)-原人参二醇的研究进展 | 第31-34页 |
第2章 20(S)-原人参二醇诱导人乳腺癌 MCF-7 细胞凋亡作用及机制 | 第34-64页 |
2.1 引言 | 第34-35页 |
2.2 材料与方法 | 第35-48页 |
2.2.1 主要试剂与仪器 | 第35-40页 |
2.2.2 实验方法 | 第40-48页 |
2.3 实验结果 | 第48-61页 |
2.3.1 PPD 对 MCF-7 细胞增殖的影响 | 第48-49页 |
2.3.2 PPD 对 MCF-7 细胞生长状态的影响 | 第49页 |
2.3.3 PPD 对 MCF-7 细胞凋亡的影响 | 第49-52页 |
2.3.4 PPD 对 MCF-7 细胞线粒体膜电位(Δ Ψm)的影响 | 第52-53页 |
2.3.5 PPD 对 MCF-7 细胞 Caspase-3 和 Caspase-9 活性的影响 | 第53-55页 |
2.3.6 PPD 对 MCF-7 细胞 Caspase 家族蛋白表达及 PARP 剪切的影响 | 第55-56页 |
2.3.7 PPD 对 MCF-7 细胞 Bcl-2 家族蛋白和基因水平的影响 | 第56-58页 |
2.3.8 PPD 对 MCF-7 细胞周期的影响 | 第58-61页 |
2.4 讨论 | 第61-63页 |
2.5 小结 | 第63-64页 |
第3章 PPD 体外抑制 MCF-7 细胞 PI3K/AKT/mTOR 信号途径的研究 | 第64-86页 |
3.1 引言 | 第64页 |
3.2 材料与方法 | 第64-69页 |
3.2.1 主要试剂与仪器 | 第64-67页 |
3.2.2 实验方法 | 第67-69页 |
3.3 实验结果 | 第69-83页 |
3.3.1 PPD 对 MCF-7 细胞 PI3K/AKT/mTOR 信号途径的影响 | 第69-74页 |
3.3.2 体外瞬时转染 mTOR 过表达质粒对 PPD 诱导 MCF-7 细胞凋亡的影响 | 第74-78页 |
3.3.3 体外瞬时转染 mTOR siRNA 质粒对 PPD 诱导 MCF-7 细胞凋亡的影响 | 第78-83页 |
3.4 讨论 | 第83-85页 |
3.5 小结 | 第85-86页 |
第4章 PPD 体内抑制 MCF-7 细胞 PI3K/AKT/mTOR 信号途径的研究 | 第86-96页 |
4.1 引言 | 第86页 |
4.2 材料与方法 | 第86-88页 |
4.2.1 主要试剂与抗体 | 第86-87页 |
4.2.2 实验方法 | 第87-88页 |
4.3 实验结果 | 第88-93页 |
4.3.1 PPD 对裸鼠体内 MCF-7 细胞移植瘤的抗肿瘤作用 | 第88-91页 |
4.3.2 PPD 对裸鼠体内 MCF-7 细胞移植瘤的抗肿瘤机制研究 | 第91-93页 |
4.4 讨论 | 第93-94页 |
4.5 小结 | 第94-96页 |
第5章 结论 | 第96-98页 |
本论文创新性 | 第98-100页 |
参考文献 | 第100-116页 |
作者简介及在读期间取得科研成果 | 第116-118页 |
致谢 | 第118页 |