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活性氧簇(ROS)介导的蛋白翻译后修饰调控肿瘤细胞死亡的作用及其机制研究

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活性氧簇(ROS)介导的蛋白翻译后修饰调控肿瘤细胞死亡的作用及其机制研究
论文目录
 
致谢第1-7页
中文摘要第7-15页
Abstract第15-27页
绪论第27-30页
1 第一部分 ROS调控AKT蛋白分子内二硫键形成及其在4-HPR诱导白血病细胞凋亡中的作用研究第30-61页
  1.1 引言第30-32页
  1.2 实验材料与仪器第32-36页
    1.2.1 细胞株与实验动物第32页
    1.2.2 药物与主要试剂第32-34页
    1.2.3 主要仪器第34-36页
  1.3 实验方法第36-41页
    1.3.1 细胞培养第36页
    1.3.2 流式细胞术测定细胞凋亡第36页
    1.3.3 JC-1染色测定线粒体膜电位变化第36页
    1.3.4 Western-blot法检测蛋白含量变化第36-38页
    1.3.5 免疫沉淀检测蛋白相互作用第38页
    1.3.6 流式细胞术测定细胞相内活性氧变化第38页
    1.3.7 免疫荧光法观察Akt和HSP90或PP2Ac在细胞内的共定位情况第38-39页
    1.3.8 Akt1蛋白活性测定第39页
    1.3.9 蛋白氧化还原态测定第39页
    1.3.10 细胞内蛋白二硫键含量测定第39-40页
    1.3.11 动物体内血糖测定第40页
    1.3.12 数据分析第40-41页
  1.4 实验结果第41-59页
    1.4.1 Akt蛋白的去磷酸化参与4-HPR诱导的白血病细胞凋亡第41-46页
    1.4.2 4-HPR诱导的ROS调控Akt蛋白磷酸化及其在细胞凋亡中的作用第46-51页
    1.4.3 4-HPR诱导产生的ROS调控Akt蛋白形成分子内二硫键第51-55页
    1.4.4 4-HPR调控的Akt蛋白分子内二硫键形成与Akt蛋白去磷酸化的关系第55-59页
  1.5 讨论第59-61页
2 第二部分 ROS调控DJ-1蛋白氧化态在4-HPR诱导肿瘤细胞自噬/凋亡间转化中的作用研究第61-109页
  2.1 引言第61-63页
  2.2 实验材料与仪器第63-65页
    2.2.1 细胞株、质粒、SiRNA与实验动物第63页
    2.2.2 药物与主要试剂第63-64页
    2.2.3 仪器第64-65页
  2.3 实验方法第65-71页
    2.3.1 细胞培养第65页
    2.3.2 流式细胞术测定细胞凋亡第65页
    2.3.3 JC-1染色测定线粒体膜电位变化第65页
    2.3.4 Western-blot法检测蛋白含量变化第65页
    2.3.5 免疫沉淀检测蛋白相互作用第65页
    2.3.6 流式细胞术测定细胞相内活性氧变化第65页
    2.3.7 免疫荧光法观察DJ-1和ASK-1在细胞内的共定位情况第65-66页
    2.3.8 质粒转染及siRNA干扰技术第66页
    2.3.9 慢病毒颗粒细胞转染第66-67页
    2.3.10 RT-PCR测定相关基因转录水平变化第67-68页
    2.3.11 稳定敲除DJ-1人官颈癌细胞Hela裸小鼠移植瘤模型的建立及实验治疗作用第68-69页
    2.3.12 电子显微镜观察细胞自噬与凋亡第69页
    2.3.13 细胞内谷胱甘肽及蛋白质中自由巯基含量测定第69页
    2.3.14 二维电泳及质谱鉴定第69-70页
    2.3.15 TUNEL法检测细胞凋亡第70页
    2.3.16 数据分析第70-71页
  2.4 实验结果第71-105页
    2.4.1 4-HPR诱导的ROS介导肿瘤细胞自噬/凋亡转化第71-83页
    2.4.2 JNK1和p38信号通路分别介导ROS诱发的细胞自噬和凋亡第83-87页
    2.4.3 4-HPR诱导的ROS可影响DJ-1/ASK1蛋白复合物稳定性第87-91页
    2.4.4 ROS调控的DJ-1蛋白氧化态在肿瘤细胞自噬/凋亡转化中的作用第91-96页
    2.4.5 DJ-1蛋白的表达在肿瘤细胞对4-HPR敏感性中的作用第96-102页
    2.4.6 内质网应激在4-HPR诱导的ROS诱发细胞自噬中的作用第102-105页
  2.5 讨论第105-109页
参考文献第109-118页
综述第118-127页
参考文献第124-127页
作者简历及在学期间所取得的科研成果第127-131页

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