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Tirapazamine与拓扑异构酶Ⅰ抑制剂在人肝癌中合用的药效学及机制研究

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Tirapazamine与拓扑异构酶Ⅰ抑制剂在人肝癌中合用的药效学及机制研究
论文目录
 
致谢第1-6页
中文摘要第6-9页
Abstract第9-13页
目次第13-16页
1 第一部分Tirapazamine与拓扑异构酶Ⅰ抑制剂在人肝癌中合用的药效学研究第16-57页
  1.1 引言第16-19页
  1.2 实验材料和仪器第19-22页
    1.2.1 实验仪器第19页
    1.2.2 药物第19页
    1.2.3 试剂第19-21页
    1.2.4 细胞株第21页
    1.2.5 动物第21-22页
  1.3 实验方法第22-28页
    1.3.1 人肝癌细胞和正常肝细胞的常规培养第22页
    1.3.2 SRB染色法测定肿瘤细胞的增殖第22页
    1.3.3 Western blotting法检测蛋白表达第22-25页
    1.3.4 人肝癌Bel-7402裸小鼠移植瘤模型建立及实验治疗作用第25-26页
    1.3.5 双荧光素酶报告基因检测HIF-1α的转录活性第26页
    1.3.6 细胞转染第26-27页
    1.3.7 克隆形成实验第27页
    1.3.8 数据分析第27-28页
  1.4 实验结果第28-54页
    1.4.1 拓扑异构酶Ⅰ抑制剂在人肝癌中存在低氧敏感性下降的现象第28-31页
    1.4.2 拓扑异构酶Ⅰ抑制剂对低氧环境下的人肝癌细胞活性下降,其下降机理与HIF-1α相关第31-35页
    1.4.3 Tirapazamine在人肝癌中可抑制HIF-1α的蛋白表达和转录活性第35-39页
    1.4.4 Tirapazamine可提高拓扑异构酶Ⅰ抑制剂在人肝癌Bel-7402中的抗肿瘤活性第39-45页
    1.4.5 Tirapazamine可提高SN-38在多种人肝癌细胞中的抗肿瘤活性第45-49页
    1.4.6 Tirapazamine与CPT-11合用对人肝细胞癌Bel-7402裸小鼠移植瘤的实验治疗作用第49-54页
  1.5 讨论第54-57页
2 第二部分 Tirapazamine与拓扑异构酶Ⅰ抑制剂在人肝癌中合用的机制研究第57-109页
  2.1 引言第57-60页
  2.2 实验材料和仪器第60-63页
    2.2.1 实验仪器第60页
    2.2.2 药物第60页
    2.2.3 试剂第60-62页
    2.2.4 细胞株第62页
    2.2.5 动物第62-63页
  2.3 实验方法第63-75页
    2.3.1 人肝癌细胞常规培养第63页
    2.3.2 SRB染色法测定肿瘤细胞的增殖第63页
    2.3.3 Western blotting法检测蛋白表达第63-66页
    2.3.4 人肝癌Bel-7402裸小鼠移植瘤模型建立及实验治疗作用第66-67页
    2.3.5 瘤组织苏木素 & 伊红染色法(H&E染色)第67页
    2.3.6 免疫组化第67-69页
    2.3.7 双荧光素酶报告基因检测HIF-1α的转录活性第69-70页
    2.3.8 质粒转染技术第70页
    2.3.9 实时荧光定量PCR法检测HIF-1α和VEGF基因的转录水平第70-72页
    2.3.10 DAPI染色法观察TPZ与SN-38合用对细胞形态的影响第72页
    2.3.11 PI结合流式细胞术检测细胞凋亡第72-73页
    2.3.12 Annexin V/PI结合流式细胞术检测细胞凋亡第73页
    2.3.13 JC1染色法测定线粒体的膜电位变化第73-74页
    2.3.14 免疫荧光第74页
    2.3.15 数据分析第74-75页
  2.4 实验结果第75-105页
    2.4.1 Tirapazamine和拓扑异构酶Ⅰ抑制剂合用可诱导人肝癌细胞产生Caspase依赖的凋亡第75-85页
    2.4.2 Tirapazamine和拓扑异构酶Ⅰ抑制剂合用对HIF-1α的影响第85-93页
    2.4.3 Tirapazamine和拓扑异构酶Ⅰ抑制剂合用可抑制HIF-1α蛋白的合成第93-98页
    2.4.4 Tirapazamine和拓扑异构酶Ⅰ抑制剂合用对DNA同源重组修复通路的影响第98-105页
  2.5 讨论第105-109页
总结与展望第109-110页
参考文献第110-117页
综述 低氧诱导因子1α与DNA损伤修复关系的研究进展第117-141页
摘要第117-131页
参考文献第131-141页
作者简历及在读期间所取得的科研成果第141-142页

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