论文目录 | |
| 前言 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-17页 |
| 英文缩写词表 | 第17-19页 |
| 第1章 绪论 | 第19-33页 |
| 1.1 贝尼地平对骨代谢影响的研究进展 | 第19-25页 |
| 1.1.1 贝尼地平的特性 | 第19-21页 |
| 1.1.2 贝尼地平的药理作用 | 第21-23页 |
| 1.1.3 贝尼地平与骨代谢 | 第23-25页 |
| 1.1.4 小结 | 第25页 |
| 1.2 纳米载药系统在医药领域应用的研究进展 | 第25-33页 |
| 1.2.1 纳米药物载体的分类 | 第25-26页 |
| 1.2.2 纳米载药系统的优越性 | 第26-27页 |
| 1.2.3 纳米载药系统在医药领域的应用 | 第27-31页 |
| 1.2.4 小结 | 第31-33页 |
| 第2章 贝尼地平对成骨细胞功能的影响 | 第33-49页 |
| 2.1 实验材料 | 第33-35页 |
| 2.1.1 实验仪器及设备 | 第33-34页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第34-35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-41页 |
| 2.2.1 梯度浓度贝尼地平药物溶液的配置 | 第35页 |
| 2.2.2 MC3T3-E1 Subelone14 小鼠前成骨细胞的培养 | 第35-36页 |
| 2.2.3 MTT 法测定贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞增殖的影响 | 第36页 |
| 2.2.4 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞碱性磷酸酶活性的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.5 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞矿化能力的影响 | 第37-38页 |
| 2.2.6 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞分化相关基因表达水平的影响 | 第38-39页 |
| 2.2.7 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞分化相关蛋白表达水平的影响 | 第39-41页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第41页 |
| 2.3 实验结果 | 第41-46页 |
| 2.3.1 MC3T3-E1 细胞的形态学观察 | 第41-42页 |
| 2.3.2 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞增殖的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.3 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞碱性磷酸酶活性的影响 | 第43-44页 |
| 2.3.4 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞矿化能力的影响 | 第44-45页 |
| 2.3.5 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞分化相关基因表达水平的影响 | 第45页 |
| 2.3.6 贝尼地平对 MC3T3-E1 细胞分化相关蛋白表达水平的影响 | 第45-46页 |
| 2.4 讨论 | 第46-47页 |
| 2.5 小结 | 第47-49页 |
| 第3章 硅酸镁纳米球的制备及其生物相容性的研究 | 第49-63页 |
| 3.1 实验材料 | 第49-51页 |
| 3.1.1 实验仪器及设备 | 第49-50页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 3.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 3.2.1 硅酸镁纳米球（MSNs）的制备 | 第51页 |
| 3.2.2 MTT 法检测 MSNs 的细胞毒性 | 第51页 |
| 3.2.3 MSNs 对细胞形态的影响 | 第51页 |
| 3.2.4 体外溶血试验 | 第51-52页 |
| 3.2.5 MSNs 对小鼠体重及行为的影响 | 第52页 |
| 3.2.6 血液学及血液生化指标分析 | 第52页 |
| 3.2.7 H&E 染色观察 MSNs 对小鼠主要脏器的影响 | 第52-53页 |
| 3.2.8 MSNs 在小鼠主要脏器的分布情况 | 第53页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第53-54页 |
| 3.3 实验结果 | 第54-61页 |
| 3.3.1 MSNs 的形态及结构特征 | 第54-56页 |
| 3.3.2 MTT 法检测 MSNs 的细胞毒性 | 第56页 |
| 3.3.3 MSNs 对细胞形态的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.4 体外溶血试验 | 第57-58页 |
| 3.3.5 MSNs 对小鼠体重及行为的影响 | 第58页 |
| 3.3.6 血液学及血液生化指标分析 | 第58-59页 |
| 3.3.7 MSNs 对小鼠主要脏器的影响 | 第59-60页 |
| 3.3.8 MSNs 在小鼠主要脏器的分布情况 | 第60-61页 |
| 3.4 讨论 | 第61-62页 |
| 3.5 小结 | 第62-63页 |
| 第4章 载贝尼地平硅酸镁纳米球对成骨细胞功能的影响 | 第63-73页 |
| 4.1 实验材料 | 第63-64页 |
| 4.1.1 实验仪器及设备 | 第63-64页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第64页 |
| 4.2 实验方法 | 第64-66页 |
| 4.2.1 载贝尼地平硅酸镁纳米球（BD-MSNs）的制备 | 第64-65页 |
| 4.2.2 BD-MSNs 对 MC3T3-E1 细胞形态的影响 | 第65页 |
| 4.2.3 MTT 法测定 BD-MSNs 对 MC3T3-E1 细胞增殖的影响 | 第65页 |
| 4.2.4 BD-MSNs 对 MC3T3-E1 细胞碱性磷酸酶活性的影响 | 第65页 |
| 4.2.5 BD-MSNs 对 MC3T3-E1 细胞矿化能力的影响 | 第65-66页 |
| 4.3 实验结果 | 第66-70页 |
| 4.3.1 BD-MSNs 的制备及载药量的测定 | 第66页 |
| 4.3.2 BD-MSNs 对 MC3T3-E1 细胞形态的影响 | 第66-67页 |
| 4.3.3 BD-MSNs 对 MC3T3-E1 细胞增殖的影响 | 第67-68页 |
| 4.3.4 BD-MSNs 对 MC3T3-E1 细胞碱性磷酸酶活性的影响 | 第68-69页 |
| 4.3.5 BD-MSNs 对 MC3T3-E1 细胞矿化能力的影响 | 第69-70页 |
| 4.4 讨论 | 第70-71页 |
| 4.5 小结 | 第71-73页 |
| 第5章 载阿霉素硅酸镁纳米球在抗肿瘤治疗中的应用 | 第73-83页 |
| 5.1 实验材料 | 第73-74页 |
| 5.1.1 实验仪器及设备 | 第73-74页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第74页 |
| 5.2 实验方法 | 第74-76页 |
| 5.2.1 载阿霉素硅酸镁纳米球（DOX-MSNs）的制备及其载药量的测定 | 第74页 |
| 5.2.2 DOX-MSNs 药物体外释放的检测 | 第74-75页 |
| 5.2.3 细胞内吞试验 | 第75页 |
| 5.2.4 MTT 法测定 DOX-MSNs 对 HepG2 细胞的抑制作用 | 第75页 |
| 5.2.5 DOX-MSNs 对荷瘤小鼠体内肿瘤的抑制作用 | 第75-76页 |
| 5.2.6 TUNEL 细胞凋亡检测 | 第76页 |
| 5.3 实验结果 | 第76-80页 |
| 5.3.1 DOX-MSNs 载药量的测定 | 第76-77页 |
| 5.3.2 DOX-MSNs 药物体外释放的检测 | 第77页 |
| 5.3.3 细胞内吞试验 | 第77-78页 |
| 5.3.4 DOX-MSNs 对 HepG2 细胞的抑制作用 | 第78页 |
| 5.3.5 DOX-MSNs 对荷瘤小鼠体内肿瘤的抑制作用 | 第78-79页 |
| 5.3.6 TUNEL 细胞凋亡检测 | 第79-80页 |
| 5.4 讨论 | 第80-81页 |
| 5.5 小结 | 第81-83页 |
| 第6章 结论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-95页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
