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Noggin和BDNF基因修饰的BMSCs、羟基红花黄色素A、重复经颅磁刺激对血管性痴呆大鼠作用机制的研究

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Noggin和BDNF基因修饰的BMSCs、羟基红花黄色素A、重复经颅磁刺激对血管性痴呆大鼠作用机制的研究
论文目录
 
中文摘要第1-6页
Abstract第6-12页
缩略语/符号说明第12-13页
前言第13-17页
研究现状、成果第13-16页
研究目的、方法第16-17页
一、大鼠BMSCs的分离、培养、鉴定及Noggin、BDNF基因转染第17-39页
  1.1 对象和方法第17-26页
    1.1.1 实验动物第17页
    1.1.2 主要仪器第17页
    1.1.3 主要试剂及耗材第17-19页
    1.1.4 实验试剂配置方法第19-20页
    1.1.5 大鼠BMSCs的分离、培养和鉴定第20-23页
    1.1.6 Noggin、BDNF基因转染BMSCs第23-26页
    1.1.7 统计学分析第26页
  1.2 结果第26-34页
    1.2.1 大鼠BMSCs的分离和培养第26页
    1.2.2 大鼠BMSCs的生长曲线第26-27页
    1.2.3 台盼蓝拒染法测定细胞活力第27页
    1.2.4 大鼠BMSCs的鉴定第27-31页
    1.2.5 重组腺病毒介导Noggin、BDNF转染BMSCs及转染效率的测定第31-33页
    1.2.6 Western blotting法检测目的蛋白的表达第33-34页
  1.3 讨论第34-38页
    1.3.1 大鼠BMSCs的分离、培养和鉴定方法第34-35页
    1.3.2 Noggin和BDNF对BMSCs存活和分化的作用第35-37页
    1.3.3 神经营养因子基因修饰BMSCs治疗神经系统疾病的研究现状第37-38页
  1.4 小结第38-39页
二、Noggin、BDNF基因修饰的BMSCs、HSYA和rTMS对VaD大鼠空间记忆和VEGF表达的影响第39-64页
  2.1 对象和方法第39-47页
    2.1.1 实验动物第39页
    2.1.2 主要仪器第39页
    2.1.3 主要试剂及耗材第39-41页
    2.1.4 实验试剂配置方法第41页
    2.1.5 实验方法第41-47页
  2.2 结果第47-55页
    2.2.1 水迷宫实验第47-50页
    2.2.2 Western blotting检测海马区VEGF的表达第50页
    2.2.3 海马区HE染色第50页
    2.2.4 免疫组化检测海马区VEGF的表达第50-55页
  2.3 讨论第55-62页
    2.3.1 血管性痴呆的发病机制及治疗展望第55-57页
    2.3.2 水迷宫在学习记忆过程研究中的作用第57-58页
    2.3.3 VEGF促进血管生成和神经保护作用第58-59页
    2.3.4 BMSCs、Noggin、BDNF、HSYA和rTMS对血管生成的影响第59-62页
  2.4 小结第62-64页
三、Noggin、BDNF基因修饰的BMSCs、HSYA和rTMS对VaD大鼠LTP、BDNF和NMDAR的影响第64-87页
  3.1 对象和方法第64-68页
    3.1.1 主要仪器第64页
    3.1.2 主要试剂及耗材第64-65页
    3.1.3 实验试剂配置方法第65-66页
    3.1.4 实验方法第66-68页
  3.2 结果第68-78页
    3.2.1 海马CA3-CA1区LTP第68页
    3.2.2 Western blotting检测相关蛋白的表达第68-69页
    3.2.3 免疫组化检测相关蛋白的表达第69-78页
  3.3 讨论第78-86页
    3.3.1 LTP的形成机制及其在探讨突触可塑性中的作用第78页
    3.3.2 NMDAR在学习记忆过程中的作用第78-79页
    3.3.3 BDNF、Noggin与LTP和NMDAR的关系第79-82页
    3.3.4 HSYA的神经保护作用第82-84页
    3.3.5 rTMS对学习记忆过程的调节第84-86页
  3.4 小结第86-87页
全文结论第87-89页
论文创新点第89-90页
参考文献第90-114页
发表论文和参加科研情况说明第114-115页
综述 骨髓间充质干细胞和神经营养因子治疗血管性痴呆的研究进展第115-135页
综述参考文献第124-135页
致谢第135页

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