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棉花转基因雄性不育种质创新及不育相关基因的挖掘

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棉花转基因雄性不育种质创新及不育相关基因的挖掘
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摘要第1-6页
Abstract第6-14页
1 前言第14-26页
  1.1 棉花雄性不育研究进展第14-15页
    1.1.1 国、内外主要棉花不育系来源及研究背景第14页
    1.1.2 棉花核不育突变体及基因研究现状第14-15页
  1.2 基因工程创造雄性不育研究策略第15-17页
    1.2.1 通过细胞质雄性不育基因创造雄性不育第15页
    1.2.2 借助反义RNA和RNAi技术创造植物雄性不育第15-16页
    1.2.3 利用分子伴侣创造植物雄性不育第16页
    1.2.4 通过特异表达基因破坏花药绒毡层创造植物雄性不育第16-17页
    1.2.5 通过提早降解胼胝质产生雄性不育第17页
  1.3 雄性不育相关基因研究进展第17-20页
    1.3.1 核不育相关基因第17-18页
      1.3.1.1 花药开裂相关基因第17页
      1.3.1.2 绒毡层发育相关基因第17-18页
      1.3.1.3 小孢子发育相关基因第18页
    1.3.2 胞质不育相关基因第18-20页
  1.4 蛋白二硫键异构酶(Protein disulfide isomerase)研究进展第20-23页
    1.4.1 PDI结构域组成第20-21页
    1.4.2 内质网中的PDI第21-22页
    1.4.3 PDI催化过程中与底物的相互作用第22-23页
    1.4.4 PDI的其他功能第23页
  1.5 转录组测序(RNA-Seq)应用进展第23-24页
  1.6 本研究的背景、目的意义第24-26页
2 棉花雄性不育种质的创造及其相关分析第26-59页
  2.1 料与方法第26-29页
    2.1.1 材料第26页
      2.1.1.1 受体材料第26页
      2.1.1.2 供试基因第26页
      2.1.1.3 不育性状调查材料第26页
      2.1.1.4 转基因植株分子检测材料第26页
      2.1.1.5 小孢子败育的细胞学研究材料第26页
    2.1.2 方法第26-29页
      2.1.2.1 红麻/棉花gDNA的提取第26-27页
      2.1.2.2 质粒DNA的提取第27页
      2.1.2.3 花粉管通道法转化雄性不育相关基因第27-28页
      2.1.2.3 转基因雄性不育资源的保存第28页
      2.1.2.4 转基因后代育性调查第28页
      2.1.2.5 不育株的形态学观察第28页
      2.1.2.6 PCR检测引物序列及程序第28页
      2.1.2.7 不育株花粉败育率调查第28页
      2.1.2.8 不育株花期、吐絮期调查第28页
      2.1.2.9 花粉发育的分期及判断方法第28-29页
      2.1.2.10 花药的石蜡切片观察第29页
    2.1.3 主要仪器和试剂第29页
      2.1.3.1 主要试剂第29页
      2.1.3.2 主要仪器第29页
  2.2 结果与分析第29-55页
    2.2.1 基因组DNA及质粒质量检测第29-30页
    2.2.2 花粉管通道法转基因体系的优化第30-36页
      2.2.2.1 4批转基因材料成铃率总结第30-31页
      2.2.2.2 注射浓度对成铃率的影响第31-32页
      2.2.2.3 注射方式对成铃率和转化率的影响第32页
      2.2.2.4 受体对成铃率和转化率的影响第32-34页
      2.2.2.5 基因对成铃率和转化率的影响第34-36页
    2.2.3 雄性不育突变单株的命名第36页
    2.2.4 NPTII(新霉素磷酸转移酶基因)检测转基因不育株第36-37页
    2.2.5 雄性不育突变体的形态、细胞学分析第37-51页
      2.2.5.1 雄性不育突变体的农艺性状分析第37页
      2.2.5.2 雄性不育突变体的花器官变异分析第37-39页
      2.2.5.3 雄性不育突变单株成熟花药游离压片观察第39-40页
      2.2.5.4 不育突变单株花粉败育率调查第40-41页
      2.2.5.5 转红麻Hcpdil5-2a基因不育单株小孢子败育的细胞学研究第41-51页
    2.2.6 陆地棉雄性不育单株的花期比较第51-52页
    2.2.7 转基因不育突变单株遗传学分析第52-55页
      2.2.7.1 陆地棉13个雄性不育突变株的遗传模式第52-54页
      2.2.7.2 海岛棉雄性不育突变株276s的遗传模式第54-55页
  2.3 结论与讨论第55-59页
    2.3.1 结论第55-56页
      2.3.1.1 建立了以红麻Hcpdil5-2a基因为基础的雄性不育系创造体系第55页
      2.3.1.2 雄性不育突变单株形态、细胞学分析第55-56页
    2.3.2 讨论第56-59页
      2.3.2.1 对成铃率和转化率的影响因素第56页
      2.3.2.2 关于不育突变单株的遗传分析第56页
      2.3.2.3 雄性不育突变株败育类型分析第56-57页
      2.3.2.4 雄性不育突变株败育原因分析第57-59页
3 红麻Hcpdil5-2a基因在转基因棉花后代中的表达分析第59-72页
  3.1 材料与方法第60-62页
    3.1.1 材料第60页
    3.1.2 方法第60-62页
      3.1.2.1 棉花总RNA的提取第60页
      3.1.2.2 棉花cDNA的合成第60页
      3.1.2.3 Ghpdil5-2a基因的克隆第60-61页
      3.1.2.4 碱裂解法提取大肠杆菌质粒DNA第61页
      3.1.2.5 半量检测Ghpdil5-2a基因的表达第61-62页
      3.1.2.6 数据分析第62页
    3.1.3 主要试剂和仪器第62页
  3.2 结果与分析第62-69页
    3.2.1 棉花Ghpdil5-2a基因的克隆及表达分析第62-69页
      3.2.1.1 RNA及cDNA质量检测第62-63页
      3.2.1.2 Ghpdil5-2a基因的克隆第63-64页
      3.2.1.3 Ghpdil5-2a基因的结构分析第64页
      3.2.1.4 Ghpdil5-2a基因的进化分析第64-65页
      3.2.1.5 Ghpdil5-2a蛋白预测第65-67页
      3.2.1.6 Ghpdil5-2a基因的表达分析第67-69页
    3.2.2 Hcpdil5-2a在转基因基因后代中的表达分析第69页
  3.3 结论与讨论第69-72页
    3.3.1 结论第69-70页
    3.3.2 讨论第70-72页
4 转录组测序挖掘棉花雄性不育相关基因第72-100页
  4.1 材料与方法第73-75页
    4.1.1 材料第73-74页
    4.1.2 方法第74-75页
      4.1.2.1 取材第74页
      4.1.2.2 光学显微观察第74页
      4.1.2.3 RNA提取和建库、测序和组装、Unigene功能注释第74页
      4.1.2.4 Unigene表达量计算和差异基因的筛选第74页
      4.1.2.5 RT-PCR验证激素相关差异表达基因第74-75页
  4.2 结果与分析第75-97页
    4.2.1 最佳取材时期的选择第75-78页
    4.2.2 转录组测序结果与分析第78-96页
      4.2.2.1 样品总RNA质量检测第78-79页
      4.2.2.2 转录组测序结果统计第79-82页
      4.2.2.3 Unigene功能注释第82-83页
      4.2.2.4 Unigene表达差异分析第83-96页
    4.2.3 棉花pdil基因在“洞A”不育株和可育株中的表达第96-97页
  4.3 结论与讨论第97-100页
    4.3.1 结论第97页
    4.3.2 讨论第97-100页
5 全文结论与讨论第100-104页
  5.1 主要结论与讨论第100-102页
    5.1.1 结论第100页
    5.1.2 讨论第100-102页
      5.1.2.1 转红麻Hcpdil5-2a基因创造棉花雄性不育资源的机理分析第100-102页
      5.1.2.2 转基因雄性不育性表现出不同的遗传规律第102页
  5.2 本研究创新点第102页
  5.3 有待深入研究的问题第102-104页
致谢第104-105页
附录第105-106页
参考文献第106-123页

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