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鳜传染性脾肾坏死病毒敏感细胞系的建立及病毒增殖依赖于谷氨酰胺的机制研究

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鳜传染性脾肾坏死病毒敏感细胞系的建立及病毒增殖依赖于谷氨酰胺的机制研究
论文目录
 
摘要第1-7页
abstract第7-14页
第一章 文献综述第14-26页
  1.1 鱼类细胞培养第14-17页
    1.1.1 鱼类细胞研究历史第14-15页
    1.1.2 鱼类细胞系培养方法第15-16页
    1.1.3 肿大细胞病毒敏感细胞系的现状第16-17页
    1.1.4 鱼类细胞系保藏现状第17页
  1.2 传染性脾肾坏死病毒第17-24页
    1.2.1 ISKNV的发现及确定第17-18页
    1.2.2 ISKNV的结构及形态发生第18页
    1.2.3 ISKNV的临床症状及组织病理特性第18页
    1.2.4 ISKNV的流行病学第18-23页
    1.2.5 ISKNV疫苗研究第23-24页
  1.3 谷氨酰胺(GLUTAMINE,GLN)代谢与病毒感染第24-25页
  1.4 选题的目的意义第25-26页
第二章 鳜脑组织细胞系的建立及其对ISKNV敏感性研究第26-45页
  2.1 试验材料与方法第26-35页
    2.1.1 实验鱼、病毒、质粒、抗体第26-27页
    2.1.2 原代培养第27页
    2.1.3 传代培养第27页
    2.1.4 细胞冻存第27-28页
    2.1.5 细胞复苏第28页
    2.1.6 核型分析第28-29页
    2.1.7 细胞生长特性测定第29页
    2.1.8 细胞转染效率的测定第29-30页
    2.1.9 ISKNV对CPB细胞感染及滴度测定第30-31页
    2.1.10 ORF006(MCP)在病毒感染细胞中的转录分析第31-33页
    2.1.11 MCP在病毒感染细胞内的鉴定第33-34页
    2.1.12 透射电镜观察第34页
    2.1.13 回归感染试验第34页
    2.1.14 CPB对鱼类弹状病毒的分离第34-35页
  2.2 实验结果与分析第35-43页
    2.2.1 CPB细胞系的建立及其特性第35-36页
    2.2.2 核型分析第36-37页
    2.2.3 细胞最适培养条件第37页
    2.2.4 外源基因在CPB细胞中的表达第37-38页
    2.2.5 ISKNV感染CPB产生的CPE及滴度测定第38-39页
    2.2.6 病毒ORF006(MCP)基因在CPB细胞内的转录、表达第39-40页
    2.2.7 病毒感染细胞后的透射电镜观察第40页
    2.2.8 ISKNV细胞感染液对鳜鱼的致病性第40-41页
    2.2.9 CPB对弹状病毒的分离第41-43页
  2.3 讨论第43-44页
  2.4 小结第44-45页
第三章 荧光定量PCR检测鳜传染性脾肾坏死病毒含量的方法第45-55页
  3.1 实验材料与方法第45-49页
    3.1.1 细胞、病毒、质粒第45页
    3.1.2 病毒感染细胞总DNA的提取第45-46页
    3.1.3 ISKNV ORF007引物设计及PCR扩增第46-47页
    3.1.4 PCR产物胶回收第47页
    3.1.5 回收产物的酶切及纯化第47页
    3.1.6 pcDNA3.1+质粒的提取、酶切和纯化第47页
    3.1.7 载体与基因的连接第47页
    3.1.8 重组质粒的转化第47-48页
    3.1.9 转化子的筛选与鉴定第48页
    3.1.10 荧光定量PCR引物和探针的设计与合成第48页
    3.1.11 标准曲线的建立及灵敏度检测第48页
    3.1.12 特异性和重复性试验第48-49页
    3.1.13 荧光定量PCR检测病毒滴度第49页
    3.1.14 细胞病变法(CPE)测定病毒滴度第49页
  3.2 结果第49-53页
    3.2.1 pcDNA007质粒的构建第49-50页
    3.2.2 定量PCR检测方法的建立第50-52页
    3.2.3 定量PCR法检测不同滴度病毒含量第52页
    3.2.4 CPE法测得病毒滴度第52页
    3.2.5 两种方法测得病毒滴度的比较第52-53页
  3.3 讨论第53-54页
  3.4 小结第54-55页
第四章 鳜传染性脾肾坏死病毒主衣壳蛋白单克隆抗体的制备及鉴定第55-64页
  4.1 材料与方法第55-59页
    4.1.1 细胞、毒株、菌株、实验动物第55-56页
    4.1.2 重组MCP蛋白的表达第56页
    4.1.3 重组MCP蛋白的纯化第56页
    4.1.4 重组MCP蛋白的复性第56页
    4.1.5 病毒培养第56-57页
    4.1.6 动物免疫第57页
    4.1.7 细胞融合与杂交瘤细胞株的克隆筛选第57页
    4.1.8 ELISA筛选阳性孔第57页
    4.1.9 间接免疫荧光法筛选阳性孔第57-58页
    4.1.10 阳性细胞亚克隆及扩大培养第58页
    4.1.11 抗体特异性鉴定第58页
    4.1.12 单抗亚类鉴定第58页
    4.1.13 单抗腹水制备及效价测定第58页
    4.1.14 单抗腹水的应用第58-59页
  4.2 结果第59-62页
    4.2.1 抗原的纯化第59页
    4.2.2 杂交瘤细胞系构建及抗体效价测定第59-60页
    4.2.3 单克隆抗体亚类第60页
    4.2.4 单克隆抗体的特异性第60-61页
    4.2.5 间接免疫荧光实验第61页
    4.2.6 免疫印迹分析第61-62页
  4.3 讨论第62-63页
  4.4 小结第63-64页
第五章 鳜传染性脾肾坏死病毒增殖复制依赖于谷氨酰胺(GLN)的机制研究第64-77页
  5.1 材料与方法第64-66页
    5.1.1 细胞和病毒第64页
    5.1.2 谷氨酰胺饥饿实验第64-65页
    5.1.3 TCA抑制及介质回补实验第65页
    5.1.4 细胞活力测定第65页
    5.1.5 流式细胞仪检测细胞凋亡第65页
    5.1.6 ATP含量测定及ATP拯救实验第65-66页
    5.1.7 ATP拯救实验第66页
    5.1.8 GSH合成抑制和GSHe回补实验第66页
    5.1.9 细胞上清病毒DNA的提取第66页
    5.1.10 间接免疫荧光第66页
    5.1.11 免疫印记分析第66页
  5.2 实验结果与分析第66-75页
    5.2.1 缺失Gln不影响CPB细胞生长第66-67页
    5.2.2 缺失Gln影响病毒产量第67页
    5.2.3 Gln通过回补TCA中间代谢产物促进ISKNV增殖第67-71页
    5.2.4 Gln为病毒增殖提供能量ATP促进病毒释放第71-73页
    5.2.5 Gln为病毒增殖提供适量的谷胱甘肽第73-75页
  5.3 讨论第75-76页
  5.4 小结第76-77页
结论第77-78页
参考文献第78-86页
附录第86-89页
缩略词第89-92页
致谢第92-93页
个人简介第93-94页

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