论文目录 | |
| 缩略语 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-38页 |
| 1.1 光氧化对植物影响的研究进展 | 第16-19页 |
| 1.1.1 植物光氧化概述 | 第16页 |
| 1.1.2 植物光氧化损伤机制 | 第16-19页 |
| 1.2 光氧化对水稻光合作用的影响 | 第19-20页 |
| 1.2.1 光氧化对水稻叶片色素含量以及光合速率的影响 | 第19页 |
| 1.2.2 光氧化对水稻叶片PSⅡ结构和电子传递链的影响 | 第19-20页 |
| 1.2.3 光氧化对水稻叶片早衰的影响 | 第20页 |
| 1.3 水稻对光氧化条件下的防御保护机制 | 第20-24页 |
| 1.3.1 光呼吸的光保护作用 | 第20页 |
| 1.3.2 依赖于氧还原的Mehler反应与光抑制 | 第20-21页 |
| 1.3.3 在PSⅡ复合体内的3种光能耗散方式 | 第21-22页 |
| 1.3.4 抗氧化物酶清除系统 | 第22-24页 |
| 1.3.5 非酶促性的活性氧清除剂 | 第24页 |
| 1.3.6 形态结构光氧化的光保护机制 | 第24页 |
| 1.4 叶色突变体的应用 | 第24-26页 |
| 1.4.1 叶色突变体在植物基础研究中的应用 | 第24-25页 |
| 1.4.2 叶色突变体在生产实践中的应用 | 第25-26页 |
| 1.5 植物蛋白质组学研究进展 | 第26-31页 |
| 1.5.1 植物蛋白质组学产生背景 | 第26-27页 |
| 1.5.2 蛋白质组学的技术 | 第27-29页 |
| 1.5.3 蛋白质组学在植物科学研究中的应用 | 第29-31页 |
| 1.6 转录组学研究进展 | 第31-34页 |
| 1.6.1 转录组学发展进程 | 第31-32页 |
| 1.6.2 三种常见的测序平台 | 第32-33页 |
| 1.6.3 二代测序技术在水稻转录组学研究中的应用 | 第33-34页 |
| 1.7 本研究的目的和意义 | 第34-38页 |
| 第2章 水稻光氧化突变体812HS特征特性 | 第38-47页 |
| 2.1 材料与方法 | 第38-41页 |
| 2.1.1 材料及采样 | 第38页 |
| 2.1.2 叶绿素的测定 | 第38页 |
| 2.1.3 叶绿素合成代谢中间产物测定 | 第38-39页 |
| 2.1.4 叶绿体超微结构的观察 | 第39-40页 |
| 2.1.5 数据分析 | 第40-41页 |
| 2.2 结果与分析 | 第41-45页 |
| 2.2.1 叶色表型的变化 | 第41-42页 |
| 2.2.2 叶绿素含量的变化 | 第42-43页 |
| 2.2.3 叶绿素合成代谢中间产物含量比较 | 第43-44页 |
| 2.2.4 叶绿体超微结构 | 第44-45页 |
| 2.3 讨论与分析 | 第45-46页 |
| 2.4 结论 | 第46-47页 |
| 第3章 水稻光氧化突变体812HS光合特性分析 | 第47-61页 |
| 3.1 材料与方法 | 第47-51页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第47页 |
| 3.1.2 光合性能测定 | 第47页 |
| 3.1.3 叶绿素a荧光诱导动力学分析 | 第47-49页 |
| 3.1.4 叶黄素循环含量测定 | 第49页 |
| 3.1.5 原初光能转化活性测定 | 第49-50页 |
| 3.1.6 数据分析 | 第50-51页 |
| 3.2 结果与分析 | 第51-58页 |
| 3.2.1 光合作用参数的变化特性 | 第51-52页 |
| 3.2.2 OJIP曲线分析 | 第52-53页 |
| 3.2.3 PSⅡ受体侧的变化分析 | 第53-54页 |
| 3.2.4 PSⅡ效率和能量耗散 | 第54-55页 |
| 3.2.5 PSⅡ性能指标 | 第55页 |
| 3.2.6 叶黄素循环组分含量的变化 | 第55-58页 |
| 3.2.7 原初光能转化效率 | 第58页 |
| 3.3 讨论与分析 | 第58-60页 |
| 3.4 结论 | 第60-61页 |
| 第4章 水稻光氧化突变体812HS抗氧化物酶和暗反应酶活分析 | 第61-73页 |
| 4.1 材料与方法 | 第61-66页 |
| 4.1.1 O_2·~-和H_2O_2组织化学定位 | 第61页 |
| 4.1.2 O_2·~-产生速率和H_2O_2含量的测定 | 第61-62页 |
| 4.1.3 粗酶液准备 | 第62页 |
| 4.1.4 MDA含量的测定 | 第62页 |
| 4.1.5 抗氧化物酶活性的测定 | 第62-63页 |
| 4.1.6 暗反应酶活性的测定 | 第63-65页 |
| 4.1.7 类囊体膜蛋白复合体亚基的免疫探测 | 第65-66页 |
| 4.2 结果与分析 | 第66-70页 |
| 4.2.1 O_2·~-和H_2O_2组织化学定位和含量变化 | 第66-67页 |
| 4.2.2 MDA含量变化 | 第67-68页 |
| 4.2.3 抗氧化物酶活性变化 | 第68-69页 |
| 4.2.4 暗反应关键酶活性变化 | 第69-70页 |
| 4.2.5 蛋白含量变化 | 第70页 |
| 4.3 讨论与分析 | 第70-71页 |
| 4.4 结论 | 第71-73页 |
| 第5章 水稻光氧化突变体812HS差异蛋白质组学分析 | 第73-88页 |
| 5.1 材料与方法 | 第73-77页 |
| 5.1.1 材料 | 第73页 |
| 5.1.2 蛋白质的提取 | 第73-74页 |
| 5.1.3 双向电泳 | 第74-76页 |
| 5.1.4 图像采集与分析 | 第76页 |
| 5.1.5 质谱鉴定 | 第76-77页 |
| 5.2 结果与分析 | 第77-85页 |
| 5.2.1 二维电泳图谱分析 | 第77-78页 |
| 5.2.2 差异蛋白点的质谱鉴定和功能分析 | 第78-85页 |
| 5.2.3 差异蛋白点的亚细胞定位 | 第85页 |
| 5.3 讨论与分析 | 第85-87页 |
| 5.4 结论 | 第87-88页 |
| 第6章 水稻光氧化突变体812HS转录组分析 | 第88-110页 |
| 6.1 材料与方法 | 第88-92页 |
| 6.1.1 研究材料 | 第88页 |
| 6.1.2 试剂、试剂盒和仪器等实验材料 | 第88-89页 |
| 6.1.3 试验方法 | 第89-92页 |
| 6.2 结果与分析 | 第92-106页 |
| 6.2.1 RNA样品的制备及质量评价 | 第92-93页 |
| 6.2.2 水稻叶片RNA-Seq测序数据统计与质量评估 | 第93-96页 |
| 6.2.3 水稻叶片RNA-Seq测序表达差异分析 | 第96-99页 |
| 6.2.4 基因功能注释 | 第99页 |
| 6.2.5 差异基因的KEGG Pathway生物通路富集分析 | 第99-105页 |
| 6.2.6 对部分差异表达基因的实时RT-qPCR验证 | 第105-106页 |
| 6.3 讨论与分析 | 第106-109页 |
| 6.4 结论 | 第109-110页 |
| 全文结论 | 第110-112页 |
| 本论文创新之处及展望 | 第112-113页 |
| 参考文献 | 第113-129页 |
| 攻读博士学位期间研究成果及获奖情况 | 第129-132页 |
| 致谢 | 第132页 |
