论文目录 | |
摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-19页 |
1 引言 | 第19-41页 |
1.1 土壤碳的损失与土壤固碳 | 第20-28页 |
1.1.1 土壤碳损失 | 第20-21页 |
1.1.2 土壤碳的固定措施与意义 | 第21-24页 |
1.1.3 水稻土中的固碳 | 第24-27页 |
1.1.4 土壤碳通量及测量 | 第27-28页 |
1.2 影响碳分解的非生物因素 | 第28-32页 |
1.2.1 环境条件因素 | 第28-29页 |
1.2.2 土壤条件差异 | 第29-30页 |
1.2.3 理化过程扰动 | 第30-32页 |
1.3 影响碳分解的生物因素 | 第32-37页 |
1.3.1 碳激发效应 | 第32-34页 |
1.3.2 生物多样性 | 第34-35页 |
1.3.3 根与根系分泌物 | 第35-37页 |
1.4 论文研究目标和技术路线 | 第37-41页 |
1.4.1 研究目标 | 第37-38页 |
1.4.2 研究内容 | 第38页 |
1.4.3 技术路线 | 第38-41页 |
2 水温肥耦合对秸秆-土壤体系矿化中碳氮的影响 | 第41-61页 |
2.1 引言 | 第41-42页 |
2.2 材料和方法 | 第42-45页 |
2.2.1 供试土壤 | 第42-43页 |
2.2.2 供试植物物料及N肥 | 第43页 |
2.2.3 培养试验设定 | 第43-44页 |
2.2.4 测定及计算方法 | 第44页 |
2.2.5 统计分析与绘图 | 第44-45页 |
2.3 结果与分析 | 第45-53页 |
2.3.1 分解过程中CO_2释放动态 | 第45-46页 |
2.3.2 分解过程中DOC含量的动态变化 | 第46-47页 |
2.3.3 分解过程中总有机碳(TOC)的变化 | 第47-50页 |
2.3.4 分解过程中N的释放动态 | 第50-52页 |
2.3.5 分解过程中土壤pH的动态变化 | 第52-53页 |
2.4 讨论 | 第53-59页 |
2.4.1 水温肥耦合对秸秆-土壤体系中C各形态的影响 | 第53-56页 |
2.4.2 水温肥耦合对秸秆-土壤体系中N各形态及pH的影响 | 第56-59页 |
2.5 结论 | 第59-61页 |
3 微生物腐解菌剂的水温优化运用评估与作用机制 | 第61-77页 |
3.1 引言 | 第61-62页 |
3.2 材料和方法 | 第62-65页 |
3.2.1 供试土壤 | 第62页 |
3.2.2 供试物料 | 第62页 |
3.2.3 供试菌剂 | 第62-63页 |
3.2.4 培养试验设定 | 第63页 |
3.2.5 理化指标测定 | 第63-64页 |
3.2.6 试验分析方法 | 第64页 |
3.2.7 数据分析 | 第64-65页 |
3.3 结果与分析 | 第65-70页 |
3.3.1 CO_2释放 | 第65-66页 |
3.3.2 DOC产生 | 第66-67页 |
3.3.3 无机N、总溶解性N和土壤pH | 第67-70页 |
3.4 讨论 | 第70-76页 |
3.4.1 微生物菌剂分解对环境条件适应机理 | 第70-71页 |
3.4.2 微生物腐解菌剂可能的作用机制 | 第71-75页 |
3.4.3 秸秆分解过程中的体系N周转及pH变化 | 第75-76页 |
3.5 结论 | 第76-77页 |
4 植物物料引起土壤碳激发效应差异及其微生物驱动机制 | 第77-97页 |
4.1 引言 | 第77-78页 |
4.2 材料和方法 | 第78-82页 |
4.2.1 供试土壤 | 第78-79页 |
4.2.2 供试植物材料 | 第79页 |
4.2.3 培养试验设定 | 第79-80页 |
4.2.4 性质分析方法 | 第80页 |
4.2.5 CO_2释放与~(13)C-CO_2检测 | 第80-81页 |
4.2.6 DNA提取与测序 | 第81-82页 |
4.2.7 统计与数理分析 | 第82页 |
4.3 结果与分析 | 第82-89页 |
4.3.1 CO_2总释放量 | 第82-83页 |
4.3.2 C源定量分析和土壤激发效应 | 第83-85页 |
4.3.3 不同激发效应对微生物组成分类单元的影响 | 第85-89页 |
4.4 讨论 | 第89-95页 |
4.4.1 植物物料矿化及土壤C激发解释机理 | 第89-90页 |
4.4.2 土壤碳激发的其它解释机理 | 第90-93页 |
4.4.3 土壤微生物群落特定分类单元的响应 | 第93-94页 |
4.4.4 环境应用的启示 | 第94-95页 |
4.5 结论 | 第95-97页 |
5 步进迭代方法表征物料-土壤-根分泌物体系碳矿化及作用机制 | 第97-113页 |
5.1 引言 | 第97-98页 |
5.2 材料和方法 | 第98-102页 |
5.2.1 供试土壤 | 第98页 |
5.2.2 植物材料及根系分泌物制备 | 第98页 |
5.2.3 培养试验设定 | 第98-99页 |
5.2.4 碳同位素测定 | 第99-100页 |
5.2.5 碳同位素分馏计算 | 第100-102页 |
5.3 结果与分析 | 第102-104页 |
5.3.1 培养过程中总C与激发C释放 | 第102-104页 |
5.3.2 培养中微生物生物量的差异 | 第104页 |
5.4 讨论 | 第104-112页 |
5.4.1 迭代计算模型对土壤激发C计算的影响 | 第104-108页 |
5.4.2 2C与3C体系中的土壤碳激发 | 第108-111页 |
5.4.3 交互作用分析 | 第111-112页 |
5.5 结论 | 第112-113页 |
6 结论与展望 | 第113-117页 |
6.1 结论 | 第113-114页 |
6.1.1 水温肥耦合对秸秆-土壤体系矿化中碳氮的影响 | 第113页 |
6.1.2 微生物腐解菌剂的水温优化运用评估与作用机制 | 第113-114页 |
6.1.3 植物物料引起土壤碳激发效应差异及其微生物驱动机制 | 第114页 |
6.1.4 步进迭代方法表征物料-土壤-根分泌物体系碳矿化及作用机制 | 第114页 |
6.2 研究创新点 | 第114-115页 |
6.3 研究展望 | 第115-117页 |
参考文献 | 第117-135页 |
致谢 | 第135-137页 |
攻读博士学位期间主要学术成果 | 第137-138页 |