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单核细胞增生李斯特菌:无菌斑马鱼感染模型及Mmp-9在抗细菌感染中的作用机制

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单核细胞增生李斯特菌:无菌斑马鱼感染模型及Mmp-9在抗细菌感染中的作用机制
论文目录
 
摘要第11-15页
Abstract第15-19页
第一部分 文献综述第19-37页
1 单核细胞增生李斯特菌的毒力因子与感染机制第21-27页
  1.1 单增李斯特菌主要毒力因子及感染过程第23-25页
  1.2 李斯特菌引起的宿主的免疫第25-27页
2 斑马鱼作为实验动物模型的应用第27-35页
  2.1 斑马鱼胚胎发育过程第28-30页
  2.2 斑马鱼免疫系统第30-31页
  2.3 斑马鱼感染模型研究进展第31-34页
  2.4 无菌动物模型应用现状第34-35页
3 本研究拟解决科学问题和试验方案第35-37页
第二部分 试验研究第37-113页
第一章 斑马鱼胚胎的无菌培养及评价第39-47页
1 材料与方法第40-43页
  1.1 实验动物及培养条件第40-41页
  1.2 主要试剂及仪器第41-42页
  1.3 斑马鱼胚胎的无菌检验第42-43页
  1.4 斑马鱼胚胎TLRs分子转录水平qPCR检测第43页
2 结果第43-45页
  2.1 斑马鱼胚胎无菌培养系统第43-44页
  2.2 无菌斑马鱼胚胎及其生长环境中未检出能形成菌落的微生物第44页
  2.3 无菌斑马鱼胚胎先天免疫未被激活第44-45页
3 讨论第45-47页
第二章 单增李斯特菌不同感染途径对斑马鱼致病性第47-75页
第一节 卵黄注射感染李斯特菌对斑马鱼胚胎存活和孵化的影响第47-55页
1 材料与方法第48-52页
  1.1 菌株及培养条件第48页
  1.2 实验动物及培养条件第48页
  1.3 主要试剂及仪器第48-49页
  1.4 GFP菌株构建第49-51页
  1.5 卵黄注射第51-52页
  1.6 斑马鱼孵化率试验第52页
2 结果第52-55页
  2.1 GFP表达质粒的鉴定第52页
  2.2 表达GFP李斯特菌的筛选第52页
  2.3 卵黄注射能够引起斑马鱼快速死亡第52-54页
  2.4 卵黄注射感染李斯特菌不同菌株后的孵化率比较第54-55页
第二节 脑室注射李斯特菌引起无菌斑马鱼巨噬细胞向脑内迁移第55-60页
1 材料与方法第56-58页
  1.1 菌株及培养条件第56页
  1.2 实验动物及培养条件第56页
  1.3 主要试剂及仪器第56页
  1.4 斑马鱼脑室注射第56-57页
  1.5 斑马鱼存活试验第57页
  1.6 斑马鱼活体共聚焦显微镜观察第57-58页
2 结果第58-60页
  2.1 脑室注射感染李斯特菌不同菌株后的存活率比较第58页
  2.2 脑室注射能够引起巨噬细胞向脑内迁移第58-60页
第三节 静脉注射李斯特菌对无菌斑马鱼致病性与细菌的毒力及感染量有关第60-66页
1 材料与方法第61-63页
  1.1 菌株及培养条件第61页
  1.2 实验动物及培养条件第61页
  1.3 主要试剂及仪器第61页
  1.4 斑马鱼静脉注射第61-62页
  1.5 斑马鱼存活试验第62页
  1.6 斑马鱼体内细菌计数第62-63页
  1.7 斑马鱼活体共聚焦显微镜观察第63页
2 结果第63-66页
  2.1 静脉注射细菌量与致死率相关第63页
  2.2 脑室注射感染李斯特菌不同菌株后的存活率比较第63页
  2.3 李斯特菌不同菌株在于体内的增殖情况比较第63-64页
  2.4 单增李斯特菌在鱼体内分布情况第64-66页
第四节 浸泡感染李斯特菌能引起无菌斑马鱼先天免疫基因上调第66-72页
1 材料与方法第67-70页
  1.1 菌株及培养条件第67页
  1.2 实验动物及培养条件第67页
  1.3 主要试剂及仪器第67页
  1.4 斑马鱼浸泡试验第67-68页
  1.5 冰冻切片观察斑马鱼体内细菌第68页
  1.6 荧光定量PCR检测斑马鱼免疫相关基因第68-70页
2 结果第70-72页
  2.1 浸泡感染不能引起斑马鱼死亡第70页
  2.2 浸泡感染细菌滞留在斑马鱼肠腔内第70页
  2.3 浸泡感染能引起斑马鱼免疫相关基因显著上调第70-72页
第五节 讨论第72-75页
第三章 致病性与非致病性李斯特菌浸泡感染斑马鱼幼鱼的比较转录组学分析第75-87页
1 材料与方法第76-80页
  1.1 菌株及培养条件第76页
  1.2 实验动物及培养条件第76页
  1.3 主要试剂及仪器第76页
  1.4 RNA提取第76-77页
  1.5 基因芯片杂交第77-78页
  1.6 差异表达基因比较第78页
  1.7 荧光定量验证第78页
  1.8 Gene Ontology分析第78-80页
  1.9 Gene Cluster分析第80页
2 结果第80-85页
  2.1 RNA质量鉴定第80-81页
  2.2 差异表达基因分析第81-82页
  2.3 荧光定量PCR验证第82页
  2.4 差异表达基因及其功能分析第82-83页
  2.5 免疫相关基因差异表达的聚类分析第83-85页
3 讨论第85-87页
第四章 Mmp-9在无菌斑马鱼抗李斯特菌感染中的作用机制探索第87-113页
第一节 Mmp-9重组蛋白多克隆抗体制备第87-96页
1 材料与方法第88-93页
  1.1 菌株、质粒及实验动物培养条件第88页
  1.2 主要试剂及仪器第88页
  1.3 生物信息学分析第88-89页
  1.4 重组表达质粒构建第89页
  1.5 Mmp-9蛋白表达纯化及多抗制备第89-93页
2 结果第93-96页
  2.1 不同物种Mmp-9同源性比较第93页
  2.2 重组表达质粒的鉴定第93页
  2.3 重组Mmp-9的表达及纯化第93-94页
  2.4 Mmp-9多抗效价测定及免疫印迹第94-96页
第二节 Mmp-9在无菌斑马鱼抗李斯特菌感染中的作用第96-102页
1 材料与方法第97-98页
  1.1 菌株及培养条件第97页
  1.2 实验动物及培养条件第97页
  1.3 主要试剂及仪器第97页
  1.4 Morpholino抑制浓度优化第97-98页
  1.5 斑马鱼活体共聚焦显微镜观察第98页
  1.6 斑马鱼存活试验第98页
  1.7 斑马鱼体内细菌计数第98页
  1.8 斑马鱼冰冻切片观察第98页
2 结果第98-102页
  2.1 Morpholino抑制效果检测第98-99页
  2.2 Mmp-9抑制使迁移至脑室巨噬细胞显著减少第99-100页
  2.3 Mmp-9抑制导致鱼静脉注射感染后更早死亡第100-101页
  2.4 Mmp-9抑制导致鱼浸泡感染后消化道出血第101-102页
第三节 Mmp-9在小鼠巨噬细胞中的作用分析第102-111页
1 材料与方法第103-107页
  1.1 菌株及培养条件第103页
  1.2 细胞及培养条件第103页
  1.3 Transwell细胞迁移试验第103-104页
  1.4 RNAi条件优化第104-105页
  1.5 细胞吞噬能力试验第105页
  1.6 间接免疫荧光第105-106页
  1.7 扫描电镜观察第106页
  1.8 RhoA通路药物作用第106-107页
2 结果第107-111页
  2.1 RNAi效果分析第107页
  2.2 单增李斯特菌感染或LPS刺激细胞能引起Mmp-9上调第107-109页
  2.3 Mmp-9沉默显著抑制细胞的跨膜迁移第109页
  2.4 Mmp-9沉默不影响细胞吞噬细菌的能力第109页
  2.5 Mmp-9沉默不影响细菌周边及侧端肌动蛋白聚集第109页
  2.6 Mmp-9沉默不影响细胞伪足形成第109-110页
  2.7 抑制RhoA通路能减少因Mmp-9高表达引起的细胞迁移第110-111页
第四节 讨论第111-113页
全文结论第113-115页
创新点第115-117页
展望第117-119页
参考文献第119-133页
致谢第133-135页
附录第135-137页
主要名词缩写第135-137页
作者简介第137-139页
攻读博士期间科研成果第139-141页
附表第141-161页

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