论文目录 | |
| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-20页 |
| 引言 | 第20-22页 |
| 第一章 综述：鱼类对营养素利用研究进展 | 第22-44页 |
| 0 前言 | 第22页 |
| 1 鱼类饲料中可替代蛋白/脂肪源的研究进展 | 第22-29页 |
| 1.1 鱼粉/鱼油替代深层研究的必要性与迫切性 | 第22-24页 |
| 1.2 水产饲料中鱼粉替代的表观限制因素 | 第24-28页 |
| 1.3 水产饲料中鱼油替代的影响 | 第28-29页 |
| 2 鱼类对营养素的摄食、代谢生理 | 第29-33页 |
| 2.1 摄食 | 第29-31页 |
| 2.2 消化吸收 | 第31-33页 |
| 3 鱼类的营养素感知与TOR信号通路 | 第33-39页 |
| 3.1 mTOR信号通路 | 第33-34页 |
| 3.2 mTORC1信号通路活化与胰岛素及氨基酸的感知 | 第34-37页 |
| 3.3 mTORC1信号通路与蛋白质合成调控及糖脂代谢 | 第37-38页 |
| 3.4 mTOR信号通路与细胞增殖、分化等其他功能 | 第38-39页 |
| 4 鱼类的营养素代谢 | 第39-44页 |
| 4.1 糖代谢 | 第39-41页 |
| 4.2 脂类代谢 | 第41-44页 |
| 第二章 饲料中使用复合植物蛋白添加蝇蛆粉替代鱼粉对大菱鲆生长、营养素感知和代谢的影响 | 第44-77页 |
| 0 前言 | 第44-46页 |
| 1 材料和方法 | 第46-55页 |
| 1.1 饲料配制 | 第46页 |
| 1.2 养殖实验过程 | 第46-47页 |
| 1.3 样品采集 | 第47页 |
| 1.4 生长参数计算 | 第47-48页 |
| 1.5 化学分析 | 第48-49页 |
| 1.6 消化率分析 | 第49页 |
| 1.7 消化酶活与代谢物分析 | 第49-50页 |
| 1.8 实时荧光定量PCR分析 | 第50-52页 |
| 1.9 蛋白质印迹分析 | 第52-55页 |
| 1.10 数据统计分析 | 第55页 |
| 2 结果 | 第55-58页 |
| 2.1 生长表现 | 第55-56页 |
| 2.2 体组成分析 | 第56-57页 |
| 2.3 消化率 | 第57页 |
| 2.4 消化酶活 | 第57-58页 |
| 2.5 血液代谢指标 | 第58页 |
| 2.6 TOR雷帕霉素靶蛋白信号通路的mRNA和磷酸化蛋白水平 | 第58页 |
| 3 讨论 | 第58-77页 |
| 第三章 饲料中含硫氨基酸水平对大菱鲆幼鱼自我合成牛磺酸影响的研究 | 第77-93页 |
| 0 引言 | 第77-78页 |
| 1 材料与方法 | 第78-82页 |
| 1.1 饲料配制 | 第78-79页 |
| 1.2 养殖实验过程 | 第79页 |
| 1.3 样品采集 | 第79页 |
| 1.4 生长参数计算 | 第79-80页 |
| 1.5 牛磺酸含量测定 | 第80页 |
| 1.6 酶活测定 | 第80-81页 |
| 1.7 液相色谱分析 | 第81页 |
| 1.8 基因表达分析 | 第81页 |
| 1.9 数据统计分析 | 第81-82页 |
| 2 结果 | 第82-83页 |
| 2.1 生长表现 | 第82页 |
| 2.2 肝脏和鱼体中牛磺酸含量分析 | 第82页 |
| 2.3 CDO和CSD活力 | 第82-83页 |
| 3 讨论 | 第83-93页 |
| 第四章 长期饲喂Rapamycin对大菱鲆生长、TOR信号通路活化、营养素代谢、组织结构等的影响 | 第93-113页 |
| 0 引言 | 第93-94页 |
| 1 实验材料和方法 | 第94-97页 |
| 1.1 饲料配方 | 第94-95页 |
| 1.2 养殖实验过程 | 第95页 |
| 1.3 生长统计 | 第95-96页 |
| 1.4 鱼体成分分析 | 第96页 |
| 1.5 消化率 | 第96页 |
| 1.6 血液生化分析 | 第96页 |
| 1.7 组织切片分析 | 第96-97页 |
| 1.8 RNA提取以及荧光定量PCR分析 | 第97页 |
| 1.9 蛋白质印迹分析 | 第97页 |
| 1.10 统计分析 | 第97页 |
| 2 结果 | 第97-99页 |
| 2.1 长期使用rapamycin抑制了大菱鲆的生长表现和饲料利用,但并未改变其体型 | 第97-98页 |
| 2.2 长期使用rapamycin抑制了mTOR信号蛋白的活化 | 第98页 |
| 2.3 长期使用rapamycin改变了血液代谢酶活力 | 第98页 |
| 2.4 长期使用rapamycin改变了营养素代谢 | 第98页 |
| 2.5 长期使用rapamycin通过抑制connexin 43改变了肝细胞的缝隙连接 | 第98-99页 |
| 2.6 长期使用rapamycin改变了肠道结构及细胞分化 | 第99页 |
| 3 讨论 | 第99-113页 |
| 第五章 饲料中添加不同水平亚麻油对大菱鲆生长、营养素代谢及免疫活力等的影响 | 第113-132页 |
| 0 引言 | 第113-114页 |
| 1 材料和方法 | 第114-116页 |
| 1.1 实验饲料 | 第114-115页 |
| 1.2 养殖实验步骤 | 第115页 |
| 1.3 取样过程 | 第115页 |
| 1.4 生物化学分析 | 第115页 |
| 1.5 血液分析 | 第115页 |
| 1.6 免疫指标测定 | 第115-116页 |
| 1.7 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第116页 |
| 1.8 数据分析 | 第116页 |
| 2 实验结果 | 第116-118页 |
| 2.1 生长表现 | 第117页 |
| 2.2 鱼体组成 | 第117页 |
| 2.3 血液分析 | 第117页 |
| 2.4 脂肪代谢基因表达 | 第117-118页 |
| 2.5 免疫活力测定 | 第118页 |
| 3 讨论 | 第118-132页 |
| 第六章 一株海洋微藻应用于大菱鲆幼鱼饲料中的效果试验 | 第132-150页 |
| 0 引言 | 第132-133页 |
| 1 实验材料和方法 | 第133-135页 |
| 1.1 实验饲料 | 第133页 |
| 1.2 养殖实验 | 第133页 |
| 1.3 消化率测定 | 第133-134页 |
| 1.4 生化分析 | 第134页 |
| 1.5 血清代谢物测定 | 第134页 |
| 1.6 代谢基因表达测定 | 第134页 |
| 1.7 免疫活力测定 | 第134页 |
| 1.8 数据分析 | 第134-135页 |
| 2 实验结果 | 第135-136页 |
| 2.1 生长表现 | 第135页 |
| 2.2 鱼体组成 | 第135页 |
| 2.3 饲料干物质和营养素的消化率 | 第135页 |
| 2.4 血清代谢指标 | 第135-136页 |
| 2.5 免疫活力测定 | 第136页 |
| 2.6 代谢基因表达 | 第136页 |
| 3 讨论 | 第136-150页 |
| 总结与展望 | 第150-152页 |
| 1 总结 | 第150-151页 |
| 2 展望 | 第151-152页 |
| 参考文献 | 第152-192页 |
| 致谢 | 第192-194页 |
| 个人简历 | 第194-195页 |
| 发表的学术论文 | 第195-196页 |
