论文目录 | |
摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-9页 |
英文缩略词对照表 | 第9-14页 |
1 前言 | 第14-30页 |
1.1 丝核菌的分类地位 | 第14页 |
1.2 R. solani AG-1生理分化及融合亚群划分 | 第14-15页 |
1.3 生物学技术在研究稻纹枯病菌遗传分化中的应用 | 第15-18页 |
1.3.1 同工酶 | 第15-16页 |
1.3.2 可溶性蛋白 | 第16页 |
1.3.3 随机扩增多态性 | 第16-17页 |
1.3.4 扩增片段长度多态性 | 第17-18页 |
1.3.5 简单序列重复间 | 第18页 |
1.4 病原菌的致病与寄主的抗病机理 | 第18-20页 |
1.4.1 病原菌致病机理 | 第18-19页 |
1.4.2 寄主的抗病机理 | 第19-20页 |
1.5 水稻纹枯病抗病育种研究 | 第20-25页 |
1.5.1 水稻纹枯病的抗性鉴定方法 | 第20-22页 |
1.5.1.1 成株期抗性鉴定 | 第20-21页 |
1.5.1.2 苗期抗性鉴定 | 第21-22页 |
1.5.2 水稻纹枯病的接种和调查时期 | 第22页 |
1.5.3 水稻纹枯病的调查标准 | 第22-23页 |
1.5.4 抗源筛选 | 第23-24页 |
1.5.5 水稻的抗性遗传研究 | 第24-25页 |
1.5.6 水稻纹枯病的抗病育种方法 | 第25页 |
1.6 真菌营养体不亲和性鉴定方法 | 第25-26页 |
1.7 真菌营养体不亲和的遗传基础 | 第26-27页 |
1.8 研究真菌营养体不亲和性的意义 | 第27-28页 |
1.9 本研究的目的意义 | 第28-30页 |
2 水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的田间调查 | 第30-46页 |
2.1 材料与方法 | 第31-32页 |
2.1.1 培养基 | 第31页 |
2.1.2 病害样本采集 | 第31页 |
2.1.3 病原菌的分离纯化与保存 | 第31页 |
2.1.4 菌株间营养体亲和性鉴定 | 第31-32页 |
2.2 结果与分析 | 第32-44页 |
2.3 结论与讨论 | 第44-46页 |
3 影响水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的因子研究 | 第46-62页 |
3.1 材料与方法 | 第47-51页 |
3.1.1 培养基 | 第47页 |
3.1.2 供试菌株及水稻材料 | 第47-48页 |
3.1.3 水稻品种对稻纹枯病菌营养体亲和性分化的影响 | 第48页 |
3.1.3.1 水稻的种植及连续接种 | 第48页 |
3.1.3.2 再分离菌株与原始接种菌株的营养体亲和性鉴定 | 第48页 |
3.1.4 水稻抗性对菌株cx-2营养体亲和性分化的影响 | 第48-49页 |
3.1.5 杀菌剂胁迫对菌株cx-2连续继代菌株营养体亲和性分化的影响 | 第49页 |
3.1.5.1 不同杀菌剂对菌株cx-2的毒力曲线 | 第49页 |
3.1.5.2 cx-2在不同杀菌剂胁迫下的连续继代培养及继代菌株的营养体亲和性鉴定 | 第49页 |
3.1.6 培养温度对稻纹枯病菌连续继代菌株营养体亲和性分化的影响 | 第49页 |
3.1.7 不同pH值对菌株cx-2连续继代菌株营养体亲和性分化的影响 | 第49-50页 |
3.1.8 不同营养对菌株cx-2连续继代菌株营养体亲和性分化的影响 | 第50页 |
3.1.9 室内诱导菌株cx-2营养体亲和性分化最佳条件的探讨 | 第50-51页 |
3.1.9.1 不同营养成分对稻纹枯病菌营养体亲和性分化的影响 | 第50页 |
3.1.9.2 影响cx-2营养体亲和性分化因素的最佳组合 | 第50-51页 |
3.2 结果与分析 | 第51-59页 |
3.2.1 水稻品种对菌株cx-2营养体亲和性分化的影响 | 第51-54页 |
3.2.2 水稻抗性对菌株cx-2营养体亲和性分化的影响 | 第54-55页 |
3.2.3 供试杀菌剂对菌株cx-2营养体亲和性分化的影响 | 第55页 |
3.2.4 供试温度对菌株cx-2营养体亲和性分化的影响 | 第55-56页 |
3.2.5 pH对菌株cx-2营养体亲和性分化的影响 | 第56-57页 |
3.2.6 不同营养对菌株cx-2营养体亲和性分化的影响 | 第57页 |
3.2.7 室内诱导菌株cx-2营养体亲和性分化最佳条件的探讨 | 第57-59页 |
3.2.7.1 不同营养成分对稻纹枯病菌营养体亲和性分化的影响 | 第57-58页 |
3.2.7.2 影响菌株cx-2营养体亲和性分化因素的最佳组合 | 第58-59页 |
3.3 结论与讨论 | 第59-62页 |
4 营养体亲和性分化菌株的致病力测定和AFLP分析 | 第62-75页 |
4.1 材料与方法 | 第62-69页 |
4.1.1 供试菌株 | 第62-63页 |
4.1.2 致病力测定 | 第63-64页 |
4.1.3 AFLP分析 | 第64-69页 |
4.1.3.1 菌株总DNA的提取 | 第64页 |
4.1.3.2 DNA浓度和纯度的测定 | 第64-65页 |
4.1.3.3 基因组酶切 | 第65页 |
4.1.3.4 接头连接 | 第65-66页 |
4.1.3.5 预扩增 | 第66页 |
4.1.3.6 选择性扩增 | 第66-67页 |
4.1.3.7 聚丙烯酰胺变性胶电泳 | 第67-69页 |
4.2 结果与分析 | 第69-73页 |
4.2.1 菌株的致病力 | 第69-70页 |
4.2.2 菌株AFLP分析 | 第70-73页 |
4.2.2.1 预扩增 | 第70-71页 |
4.2.2.2 选择性扩增 | 第71-72页 |
4.2.2.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第72-73页 |
4.3 结论与讨论 | 第73-75页 |
5 营养体亲和性分化菌株不亲和原因初步分析 | 第75-96页 |
5.1 材料与方法 | 第75-82页 |
5.1.1 主要试剂和仪器 | 第75-76页 |
5.1.1.1 主要试剂 | 第75-76页 |
5.1.1.2 主要仪器 | 第76页 |
5.1.2 供试菌株 | 第76页 |
5.1.3 融合细胞观察 | 第76-77页 |
5.1.4 胞外分泌物 | 第77页 |
5.1.5 融合细胞的DNAladder观察 | 第77页 |
5.1.6 双向电泳分析 | 第77-81页 |
5.1.6.1 菌株生长速率测定 | 第77页 |
5.1.6.2 供试菌株及菌体制备 | 第77-78页 |
5.1.6.3 菌体总蛋白提取 | 第78页 |
5.1.6.4 蛋白的溶解及定量 | 第78-79页 |
5.1.6.5 SDS-PAGE检测 | 第79页 |
5.1.6.6 等电聚焦相关参数的优化 | 第79-80页 |
5.1.6.7 IPG胶条平衡 | 第80页 |
5.1.6.8 第二向电泳(SDS-PAGE电泳) | 第80页 |
5.1.6.9 染色 | 第80-81页 |
5.1.6.10 不同蛋白提取方案的评估 | 第81页 |
5.1.7 亲和性分化菌株与原始菌株的总蛋白图谱分析 | 第81页 |
5.1.8 营养体亲和性分化菌株与原始菌株互作的蛋白质组学分析 | 第81-82页 |
5.1.9 质谱鉴定 | 第82页 |
5.2 结果与分析 | 第82-93页 |
5.2.1 融合细胞死亡观察 | 第82-83页 |
5.2.2 胞外分泌物 | 第83页 |
5.2.3 融合细胞的DNA ladder观察 | 第83-84页 |
5.2.4 双向电泳体系的建立 | 第84-89页 |
5.2.4.1 生长速率测定 | 第84页 |
5.2.4.2 标准曲线 | 第84页 |
5.2.4.3 SDS-PAGE电泳检测 | 第84-85页 |
5.2.4.4 电泳相关参数的确定 | 第85-87页 |
5.2.4.5 不同蛋白提取方案的比较 | 第87-89页 |
5.2.5 营养体亲和性分化菌株与原始菌株的蛋白质双向电泳分析 | 第89-91页 |
5.2.5.1 单向比较 | 第89-90页 |
5.2.5.2 向电泳 | 第90-91页 |
5.2.6 营养体亲和性分化菌株与原始菌株互作的蛋白质组学分析 | 第91-92页 |
5.2.7 质谱鉴定 | 第92-93页 |
5.3 结论与讨论 | 第93-96页 |
6 全文总结 | 第96-99页 |
6.1 全文结论 | 第96-97页 |
6.1.1 田间菌株营养体亲和性变化情况 | 第96页 |
6.1.2 影响水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的因子 | 第96页 |
6.1.3 诱导水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的条件 | 第96-97页 |
6.1.4 菌株营养体亲和性分化与致病力的关系 | 第97页 |
6.1.5 菌株营养体不亲和的原因 | 第97页 |
6.2 本文的特色和创新点 | 第97-98页 |
6.3 进一步的研究设想 | 第98-99页 |
致谢 | 第99-100页 |
参考文献 | 第100-114页 |
攻读学位期间发表的主要论文(著作)及科研项目和成果 | 第114页 |