论文目录 | |
致谢 | 第1-8页 |
目录 | 第8-12页 |
术语缩写表 | 第12-14页 |
摘要 | 第14-17页 |
Abstract | 第17-20页 |
第一部分 水稻温敏雄性不育基因tms9-1的定位 | 第20-82页 |
第一章 文献综述 | 第20-37页 |
1.1 植物细胞质核互作雄性不育(CMS)及其分子机理 | 第21-24页 |
1.2 植物光温敏雄性不育(PTGMS) | 第24-34页 |
1.2.1 水稻光温敏雄性不育系的光、温作用模式 | 第25-26页 |
1.2.2 调控水稻光温敏雄性不育系育性转换的理化因子 | 第26-27页 |
1.2.3 水稻光敏雄性不育基因的研究及其分子机理 | 第27-30页 |
1.2.4 水稻温敏雄性不育基因的研究及其分子机理 | 第30-32页 |
1.2.5 反向光温敏雄性不育基因的研究 | 第32-34页 |
1.3 植物细胞质雄性不育(CMS)与光温敏雄性不育(PTGMS)在杂种优势的利用 | 第34-36页 |
1.4 本研究的目的和意义 | 第36-37页 |
第二章 试验材料与方法 | 第37-51页 |
2.1 试验材料 | 第37-38页 |
2.1.1 亲本材料 | 第37页 |
2.1.2 群体构建 | 第37-38页 |
2.2 实验方法 | 第38-51页 |
2.2.1 衡农S-1的温度处理及花粉染色 | 第38页 |
2.2.2 半薄切片的制备与观察 | 第38-39页 |
2.2.3 水稻DNA抽提与基因池构建 | 第39-40页 |
2.2.4 实验中所用的分子标记及连锁图谱构建 | 第40-41页 |
2.2.5 普通PCR反应(用于SSR分子标记检测) | 第41页 |
2.2.6 高保真PCR反应(用于测序和构建克隆) | 第41-42页 |
2.2.7 PCR产物酶切 | 第42页 |
2.2.8 RT-PCR反应 | 第42-43页 |
2.2.9 水稻总RNA抽提 | 第43页 |
2.2.10 RNA反转录 | 第43-44页 |
2.2.11 候选基因分析 | 第44页 |
2.2.12 载体质粒DNA的提取 | 第44-45页 |
2.2.13 大肠杆菌感受态细胞制备、转化及鉴定 | 第45-46页 |
2.2.14 农杆菌感受态细胞制备、转化及鉴定 | 第46-47页 |
2.2.15 载体构建 | 第47页 |
2.2.16 农杆菌介导的水稻转基因 | 第47-49页 |
2.2.17 GUS染色检测 | 第49-50页 |
2.2.18 主要的试剂 | 第50-51页 |
第三章 结果与分析 | 第51-71页 |
3.1 衡农S-1为温度敏感的雄性不育系 | 第51-52页 |
3.2 衡农S-1在不同温度条件下花药的细胞学特性 | 第52-53页 |
3.3 衡农S-1与其他光温敏雄性不育系非等位 | 第53-54页 |
3.4 衡农S-1的遗传分析 | 第54-55页 |
3.5 衡农S-1温敏雄性不育基因的初步定位 | 第55-57页 |
3.6 tms9-1基因的精细定位 | 第57-60页 |
3.7 候选基因的分析与功能注释 | 第60-63页 |
3.8 OsMS1基因的表达特性分析 | 第63-66页 |
3.9 OsMS1氨基酸序列的分析 | 第66-68页 |
3.10 OsMS1基因的过量表达和RNAi载体构建 | 第68-71页 |
第四章 讨论 | 第71-80页 |
4.1 tms9-1基因是一个新的温敏雄性不育基因 | 第71-72页 |
4.2 光温敏雄性不育系育性转换的特点 | 第72-73页 |
4.3 光温敏雄性不育基因涉及的分子机理 | 第73-75页 |
4.4 tms9-1的候选基因OsMS1可能涉及的分子机理 | 第75-78页 |
4.5 利用tms9-1分子标记辅助选择新的光温敏雄性不育系 | 第78-80页 |
第五章 第一部分总结和展望 | 第80-82页 |
第二部分 水稻单糖转运体基因对灌浆的影响 | 第82-110页 |
第一章 文献综述 | 第82-92页 |
1.1 GIF1基因编码一个有活性的细胞壁蔗糖转化酶 | 第84-85页 |
1.2 GIFl基因的表达特征特性 | 第85-86页 |
1.3 GIF1基因可能调控籽粒灌浆的方式 | 第86-87页 |
1.4 水稻单糖转运体基因 | 第87-91页 |
1.4.1 水稻单糖转运体基因OsMST4 | 第88-89页 |
1.4.2 水稻单糖转运体基因OsMST6 | 第89-90页 |
1.4.3 水稻单糖转运体基因OsMST5 | 第90-91页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第91-92页 |
第二章 试验材料与方法 | 第92-97页 |
2.1 试验材料 | 第92-93页 |
2.1.1 水稻品种 | 第92页 |
2.1.2 菌株 | 第92页 |
2.1.3 质粒载体 | 第92页 |
2.1.4 主要试剂 | 第92-93页 |
2.2 实验方法 | 第93-97页 |
2.2.1 水稻不同单糖转运体氨基酸序列的Alignment分析 | 第93页 |
2.2.2 水稻DNA的提取 | 第93页 |
2.2.3 过量表达和RNAi载体的构建 | 第93-95页 |
2.2.4 转基因植株的鉴定 | 第95页 |
2.2.5 转基因植株的千粒重和长宽比统计分析 | 第95-97页 |
第三章 结果与分析 | 第97-107页 |
3.1 不同单糖转运体基因的氨基酸序列比对分析 | 第97-99页 |
3.2 不同单糖转运体基因过量表达和RNAi的载体构建 | 第99-101页 |
3.3 不同转基因株系的千粒重和长宽比统计分析 | 第101-104页 |
3.4 OsMST8过量表达转基因植株结实率下降 | 第104-105页 |
3.5 OsMST4基因过量表达转基因植株的籽粒灌浆受抑制 | 第105-107页 |
第四章 讨论 | 第107-109页 |
4.1 单糖转运体基因在籽粒灌浆中可能起着重要的功能 | 第107-108页 |
4.2 单糖转运体基因可能参与水稻的非生物胁迫 | 第108-109页 |
第五章 第二部分总结和展望 | 第109-110页 |
参考文献 | 第110-125页 |
附录 | 第125-134页 |
附录1:用于不同植物中MS1基因alignmen分析的氨基酸序列 | 第125-130页 |
附录2:不同水稻单糖转运体基因alignmen分析的氨基酸序列 | 第130-134页 |
附录3:作者简介 | 第134页 |