论文目录 | |
| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩写词表 | 第8-13页 |
| 1 引言 | 第13-21页 |
| 1.1 多氯联苯 | 第13-17页 |
| 1.1.1 多氯联苯对肝脏的毒性 | 第14-15页 |
| 1.1.2 多氯联苯对内分泌的干扰作用 | 第15-16页 |
| 1.1.3 多氯联苯对生殖功能的毒性 | 第16-17页 |
| 1.2 细胞色素酶 P450 | 第17-18页 |
| 1.2.1 多氯联苯对 CYP450 的影响 | 第17-18页 |
| 1.2.2 中药成分对 CYP450 的影响 | 第18页 |
| 1.3 妊娠的免疫调控 | 第18-21页 |
| 1.3.1 激素对妊娠的作用 | 第19页 |
| 1.3.2 细胞因子对妊娠的作用 | 第19-21页 |
| 2 槲皮素对 Aroclor 1254 所致孕鼠肝细胞和子宫内膜细胞损伤的保护作用 | 第21-43页 |
| 2.1 试验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂及药品 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-31页 |
| 2.2.1 大鼠肝细胞的分离及原代培养 | 第23-24页 |
| 2.2.2 肝细胞的形态鉴定 | 第24-25页 |
| 2.2.3 MTT 法确定 Aroclor 1254 诱导的肝细胞损伤的最适浓度 | 第25页 |
| 2.2.4 槲皮素处理损伤的大鼠肝细胞模型 | 第25页 |
| 2.2.5 RT-PCR 检测肝细胞中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 mRNA 的表达 | 第25-27页 |
| 2.2.6 Western Blot 法检测 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 的蛋白表达 | 第27-28页 |
| 2.2.7 ELISA 法检测肝细胞中 TNF-α、IFN-γ、IL-2 和 IL-6 的含量 | 第28-29页 |
| 2.2.8 怀孕大鼠子宫内膜细胞的分离和原代培养 | 第29-30页 |
| 2.2.9 子宫内膜细胞的形态鉴定 | 第30页 |
| 2.2.10 MTT 法确定 Aroclor 1254 诱导的子宫内膜细胞损伤的最适浓度 | 第30页 |
| 2.2.11 槲皮素处理损伤大鼠子宫内膜细胞模型 | 第30-31页 |
| 2.2.12 RT-PCR 法检测 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 mRNA 的表达 | 第31页 |
| 2.2.13 Western Blot 法检测 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 的蛋白表达 | 第31页 |
| 2.2.14 ELISA 法检测子宫内膜细胞中 TNF-α、IFN-γ、IL-2、IL-6、E2和 P4的含量 | 第31页 |
| 2.2.15 统计处理 | 第31页 |
| 2.3 结果 | 第31-42页 |
| 2.3.1 大鼠肝细胞的形态观察 | 第31页 |
| 2.3.2 Aroclor 1254 诱导的肝细胞损伤的最适浓度 | 第31-32页 |
| 2.3.3 Aroclor 1254 诱导 CYP1A1 和 CYP2B1 的蛋白表达 | 第32页 |
| 2.3.4 槲皮素对损伤大鼠肝细胞的最佳保护浓度 | 第32-33页 |
| 2.3.5 槲皮素对损伤大鼠肝细胞 CYP450 mRNA 表达的影响 | 第33-35页 |
| 2.3.6 槲皮素对损伤大鼠肝细胞 CYP450 蛋白表达的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.7 槲皮素对损伤肝细胞 TNF-α、IFN-γ、IL-2 和 IL-6 含量的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.8 大鼠子宫内膜细胞形态观察 | 第37页 |
| 2.3.9 Aroclor 1254 诱导子宫内膜细胞损伤的最适浓度 | 第37-38页 |
| 2.3.10 Aroclor 1254 诱导 CYP1A1 和 CYP2B1 的蛋白表达 | 第38页 |
| 2.3.11 槲皮素对损伤大鼠子宫内膜细胞的最佳保护浓度 | 第38页 |
| 2.3.12 槲皮素对损伤大鼠子宫内膜细胞 CYP450 mRNA 表达的影响 | 第38-40页 |
| 2.3.13 槲皮素对损伤大鼠子宫内膜细胞 CYP450 蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.14 槲皮素对损伤子宫内膜细胞 TNF-α、IFN-γ、IL-2、IL-6、E2和 P4的影响 | 第41-42页 |
| 2.4 小结 | 第42-43页 |
| 3 Aroclor 1254 所致孕鼠胚胎着床障碍模型的建立 | 第43-55页 |
| 3.1 试验材料 | 第43-44页 |
| 3.1.1 试验动物 | 第43页 |
| 3.1.2 试验药品与试剂 | 第43页 |
| 3.1.3 试验仪器 | 第43页 |
| 3.1.4 试剂配制 | 第43-44页 |
| 3.2 试验方法 | 第44-45页 |
| 3.2.1 Aroclor 1254 阻碍大鼠胚胎着床模型的建立 | 第44页 |
| 3.2.2 RT-PCR 检测肝脏及子宫组织中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1mRNA 的表达 | 第44页 |
| 3.2.3 Western Blot 检测肝脏及子宫组织中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 的蛋白表达 | 第44页 |
| 3.2.4 ELISA 法检测肝脏、子宫组织及血清中 TNF-α、IFN-γ、IL-2、IL-4、IL-6、E2和P4的含量 | 第44-45页 |
| 3.2.5 肝脏及子宫组织病理形态学观察 | 第45页 |
| 3.2.6 统计分析 | 第45页 |
| 3.3 结果 | 第45-54页 |
| 3.3.1 不同浓度的 Aroclor 1254 对大鼠胚胎着床率的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.2 Aroclor 1254 对肝脏中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 mRNA 表达的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.3 Aroclor 1254 对子宫组织中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 mRNA 表达的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.4 Aroclor 1254 对肝脏中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 蛋白表达的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.5 Aroclor 1254 对子宫组织中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 蛋白表达的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.6 Aroclor 1254 对肝脏、子宫及血清中 TNF-α、IFN-γ、IL-2、IL-4、IL-6、E2和 P4含量的影响 | 第50-53页 |
| 3.3.7 肝脏组织病理形态学观察 | 第53-54页 |
| 3.3.8 子宫组织病理形态学观察 | 第54页 |
| 3.4 小结 | 第54-55页 |
| 4 槲皮素对 Aroclor 1254 所致孕鼠胚胎着床障碍的保护作用 | 第55-68页 |
| 4.1 试验材料 | 第55页 |
| 4.1.1 试验动物 | 第55页 |
| 4.1.2 试验药品与试剂 | 第55页 |
| 4.1.3 试验仪器 | 第55页 |
| 4.1.4 试剂配制 | 第55页 |
| 4.2 试验方法 | 第55-57页 |
| 4.2.1 槲皮素对 Aroclor 1254 所致孕鼠肝脏和子宫损伤的保护作用 | 第55-56页 |
| 4.2.2 RT-PCR 检测肝脏及子宫组织中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 mRNA 的表达 | 第56页 |
| 4.2.3 Western Blot 法检测肝脏及子宫组织中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 的蛋白表达 | 第56页 |
| 4.2.4 ELISA 法检测肝脏、血清及子宫组织中 TNF-α、IFN-γ、IL-2、IL-4、IL-6、E2和P4的含量 | 第56页 |
| 4.2.5 肝脏及子宫组织病理形态学观察 | 第56页 |
| 4.2.6 免疫组化测定子宫 CD4+、CD8+T 淋巴细胞的分布及数量 | 第56页 |
| 4.2.7 统计分析 | 第56-57页 |
| 4.3 结果 | 第57-67页 |
| 4.3.1 不同浓度的槲皮素对 Aroclor 1254 所致大鼠胚胎着床率的保护 | 第57页 |
| 4.3.2 槲皮素对肝脏中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 mRNA 表达的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.3 槲皮素对子宫组织中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 mRNA 表达的影响 | 第58-60页 |
| 4.3.4 槲皮素对肝脏中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 蛋白表达的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.5 槲皮素对子宫中 CYP1A1、CYP2B1、CYP2E1 蛋白表达的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.6 槲皮素对肝脏、血清及子宫中 TNF-α、IFN-γ、IL-2、IL-4、IL-6、E2和 P4含量的影响 | 第62-65页 |
| 4.3.7 肝脏组织病理形态学观察 | 第65-66页 |
| 4.3.8 子宫组织病理形态学观察 | 第66页 |
| 4.3.9 槲皮素对血清中 Th1/Th2 细胞因子平衡的影响 | 第66页 |
| 4.3.10 槲皮素对子宫 CD4+、CD8+T 淋巴细胞数量的影响 | 第66-67页 |
| 4.4 小结 | 第67-68页 |
| 5 讨论 | 第68-77页 |
| 5.1 细胞的原代培养 | 第68-69页 |
| 5.1.1 肝细胞的分离与原代培养 | 第68页 |
| 5.1.2 子宫内膜细胞的原代培养 | 第68-69页 |
| 5.2 Aroclor 1254 诱导大鼠肝细胞和子宫内膜细胞损伤模型的建立 | 第69页 |
| 5.3 Aroclor 1254 诱导大鼠胚胎着床障碍模型的建立 | 第69-70页 |
| 5.4 Aroclor 1254 对大鼠肝脏及子宫 CYP450 表达的影响 | 第70-71页 |
| 5.5 槲皮素对胚胎着床障碍模型大鼠 CYP450 表达的影响 | 第71-72页 |
| 5.6 Aroclor 1254 和槲皮素对 Th1/Th2 型细胞因子的影响 | 第72-73页 |
| 5.7 Aroclor 1254 及槲皮素对雌激素和孕酮分泌的影响 | 第73-75页 |
| 5.8 槲皮素对 Aroclor 1254 诱导胚胎着床障碍子宫免疫细胞的调节 | 第75页 |
| 5.9 槲皮素对 Aroclor 1254 诱导着床障碍的保护 | 第75-77页 |
| 6 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-91页 |
| 附录 | 第91-95页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第95-96页 |
| 作者简介 | 第96-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
