论文目录 | |
摘要 | 第1-8页 |
abstract | 第8-17页 |
第一章 绪论 | 第17-56页 |
1.1 分子印迹技术及其研究进展 | 第17-37页 |
1.1.1 分子印迹技术概述 | 第17-19页 |
1.1.2 分子印迹技术基本原理 | 第19-20页 |
1.1.3 分子印迹技术分类 | 第20-21页 |
1.1.4 分子印迹聚合物制备技术 | 第21-27页 |
1.1.5 分子印迹纳米材料 | 第27-31页 |
1.1.6 分子印迹膜材料 | 第31-34页 |
1.1.7 分子印迹技术应用 | 第34-37页 |
1.2 荧光量子点的性质及应用 | 第37-45页 |
1.2.1 量子点概述 | 第37-40页 |
1.2.2 量子点的光学特性 | 第40-41页 |
1.2.3 量子点的制备方法 | 第41-44页 |
1.2.4 量子点的表面修饰 | 第44-45页 |
1.2.5 量子点的应用 | 第45页 |
1.3 量子点-分子印迹技术聚合物复合材料 | 第45-53页 |
1.3.1 量子点-分子印迹聚合物复合材料的制备 | 第46-48页 |
1.3.2 QDs@MIP在生化分析上的应用 | 第48-49页 |
1.3.3 QDs@MIP作为生化传感器 | 第49-53页 |
1.4 本课题研究目的、意义及内容 | 第53-56页 |
第二章 表面印迹MPTS修饰的硫化锌量子点的制备及其对水中双酚A测定 | 第56-83页 |
2.1 引言 | 第56-57页 |
2.2 实验试剂及仪器 | 第57-58页 |
2.2.1 实验试剂 | 第57-58页 |
2.2.2 实验仪器 | 第58页 |
2.3 实验方法 | 第58-62页 |
2.3.1 水溶性MPTS包覆的锰掺杂硫化锌量子点的制备 | 第58-59页 |
2.3.2 分子印迹-量子点荧光传感器(QDs@MIP)的制备 | 第59页 |
2.3.3 光学性质与形态表征 | 第59页 |
2.3.4 样品荧光测定条件 | 第59-60页 |
2.3.5 响应时间测定 | 第60页 |
2.3.6 溶液pH值对QDs@MIP的影响 | 第60页 |
2.3.7 双酚A含量测定方法 | 第60-61页 |
2.3.8 选择性实验 | 第61页 |
2.3.9 实际样品分析 | 第61-62页 |
2.4 结果与讨论 | 第62-82页 |
2.4.1 MPTS包覆ZnS:Mn~(2+)量子点的合成 | 第62-64页 |
2.4.2 QDs@MIP荧光传感器的制备 | 第64-71页 |
2.4.3 响应时间 | 第71-72页 |
2.4.4 溶液pH对QDs@MIP荧光强度的影响 | 第72-74页 |
2.4.5 双酚A含量的测定 | 第74-77页 |
2.4.6 选择性实验 | 第77-79页 |
2.4.7 实际样品分析 | 第79-80页 |
2.4.8 稳定性和重复使用率 | 第80-82页 |
2.5 本章小结 | 第82-83页 |
第三章 量子点嵌入分子印迹凝胶膜的制备及对水样中的微量双酚A检测 | 第83-106页 |
3.1 引言 | 第83-85页 |
3.2 实验试剂与仪器 | 第85-86页 |
3.2.1 实验试剂 | 第85-86页 |
3.2.2 实验仪器 | 第86页 |
3.3 实验方法 | 第86-90页 |
3.3.0 水溶性MPTS包覆的锰掺杂硫化锌量子点 | 第86页 |
3.3.1 硅烷化玻片的制备 | 第86-87页 |
3.3.2 量子点嵌入的荧光印迹凝胶膜的制备(QDs-MIM) | 第87页 |
3.3.3 表征 | 第87-88页 |
3.3.4 荧光测定条件 | 第88页 |
3.3.5 响应时间测定 | 第88页 |
3.3.6 pH对荧光印迹凝胶膜荧光强度的影响 | 第88页 |
3.3.7 双酚A含量的测定 | 第88-89页 |
3.3.8 选择性实验 | 第89页 |
3.3.9 实际样品分析 | 第89-90页 |
3.4 结果与讨论 | 第90-104页 |
3.4.1 MPTS包覆的锰掺杂硫化锌量子点嵌入分子印迹凝胶膜的制备 | 第90-92页 |
3.4.2 模板洗脱 | 第92-93页 |
3.4.3 表征 | 第93-94页 |
3.4.4 响应时间 | 第94-96页 |
3.4.5 pH的影响 | 第96-97页 |
3.4.6 双酚A的测定 | 第97-99页 |
3.4.7 选择性实验 | 第99-101页 |
3.4.8 实际样品测定 | 第101-102页 |
3.4.9 稳定性与重复利用率 | 第102-104页 |
3.5 本章小结 | 第104-106页 |
第四章 表面印迹L-半胱氨酸修饰的硫化锌量子点作为荧光受体特异识别溶菌酶 | 第106-128页 |
4.1 引言 | 第106-108页 |
4.2 实验试剂与仪器 | 第108-109页 |
4.2.1 实验试剂 | 第108-109页 |
4.2.2 实验仪器 | 第109页 |
4.3 实验方法 | 第109-113页 |
4.3.1 L-半胱氨酸修饰的硫化锌量子点的合成 | 第109页 |
4.3.2 分子印迹聚合物包覆的量子点复合材料(QDs@MIP)的制备 | 第109-110页 |
4.3.3 表征 | 第110页 |
4.3.4 荧光测定条件 | 第110页 |
4.3.5 响应时间测定 | 第110-111页 |
4.3.6 溶液pH值对QDs@MIP复合微球荧光强度的影响 | 第111页 |
4.3.7 溶菌酶含量的测定 | 第111-112页 |
4.3.8 选择性实验 | 第112页 |
4.3.9 实际样品分析 | 第112-113页 |
4.4 结果与讨论 | 第113-126页 |
4.4.1 分子印迹聚合物包覆的L-半胱氨酸修饰硫化锌量子点荧光传感器的制备 | 第113页 |
4.4.2 模板洗脱 | 第113-114页 |
4.4.3 印迹体系优化 | 第114-116页 |
4.4.4 表征 | 第116-118页 |
4.4.5 响应时间的测定 | 第118-119页 |
4.4.6 溶液pH值对荧光印迹材料性能的影响 | 第119-120页 |
4.4.7 量子点-分子印迹聚合物荧光传感器对溶菌酶的测定 | 第120-122页 |
4.4.8 QDs@MIP荧光传感器对溶菌酶的选择性 | 第122-124页 |
4.4.9 实际样品测定 | 第124-125页 |
4.4.10 稳定性和重复利用率 | 第125页 |
4.4.11 方法比较 | 第125-126页 |
4.5 本章小结 | 第126-128页 |
结论 | 第128-131页 |
本论文创新点 | 第131-132页 |
展望 | 第132-133页 |
参考文献 | 第133-150页 |
攻读学位期间发表论文与研究成果清单 | 第150-151页 |
致谢 | 第151-152页 |
作者简介 | 第152页 |