论文目录 | |
摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-17页 |
本文所用英文缩写词表 | 第17-18页 |
第1章 绪论 | 第18-44页 |
1.1 光学核酸探针 | 第18-30页 |
1.1.1 核酸-染料探针 | 第18-25页 |
1.1.2 核酸-纳米探针 | 第25-29页 |
1.1.3 核酸-染料/纳米探针 | 第29-30页 |
1.2 核酸探针应用中的信号放大技术 | 第30-40页 |
1.2.1 基于核酸的信号放大技术 | 第31-38页 |
1.2.2 基于信号单元的信号放大技术 | 第38-40页 |
1.3 核酸探针的信号响应模式 | 第40-41页 |
1.3.1 单靶标检测模式 | 第40页 |
1.3.2 多靶标检测模式 | 第40-41页 |
1.4 本论文构思 | 第41-44页 |
第2章 Poly(T)稳定的荧光铜纳米颗粒的合成及其荧光性质研究 | 第44-57页 |
2.1 前言 | 第44-45页 |
2.2 实验部分 | 第45-48页 |
2.2.1 试剂与仪器 | 第45-47页 |
2.2.2 溶液的配置 | 第47页 |
2.2.3 ssDNA 稳定的荧光铜纳米颗粒的合成 | 第47页 |
2.2.4 光谱数据测量 | 第47页 |
2.2.5 量子产率测量 | 第47页 |
2.2.6 电镜成像表征 | 第47-48页 |
2.2.7 荧光照片的拍摄 | 第48页 |
2.3 结果与讨论 | 第48-56页 |
2.3.1 实验原理 | 第48-49页 |
2.3.2 能够稳定荧光铜纳米颗粒合成的 ssDNA 序列的筛选 | 第49-50页 |
2.3.3 Poly(T)长度对荧光铜纳米颗粒的影响 | 第50-52页 |
2.3.4 Poly(T)浓度和铜离子浓度对荧光铜纳米颗粒的影响 | 第52-53页 |
2.3.5 外界因素对 poly(T)稳定的荧光铜纳米颗粒的影响 | 第53页 |
2.3.6 单链 DNA 选择性矿化 | 第53-56页 |
2.4 本章小结 | 第56-57页 |
第3章 基于 poly(T)稳定的荧光铜纳米颗粒和功能化的“水凝胶试纸”对铜离子的可视化便捷式检测研究 | 第57-69页 |
3.1 前言 | 第57-58页 |
3.2 实验部分 | 第58-62页 |
3.2.1 试剂与仪器 | 第58-60页 |
3.2.2 溶液的配置 | 第60页 |
3.2.3 功能化“水凝胶试纸”的制备 | 第60-61页 |
3.2.4 “水凝胶试纸”对核酸探针酶切保护作用的考察 | 第61页 |
3.2.5 “水凝胶试纸”时间稳定性考察 | 第61页 |
3.2.6 “水凝胶试纸”的失水后功能恢复考察 | 第61-62页 |
3.2.7 铜离子检测的特异性验证 | 第62页 |
3.2.8 不同浓度铜离子的检测 | 第62页 |
3.2.9 实际水样的制备与检测 | 第62页 |
3.3 结果与讨论 | 第62-68页 |
3.3.1 实验原理 | 第62-63页 |
3.3.2 “水凝胶试纸”对核酸探针的酶切保护作用 | 第63-64页 |
3.3.3 “水凝胶试纸”功能稳定性和可恢复性考察 | 第64-65页 |
3.3.4 “水凝胶试纸”对铜离子检测特异性的验证 | 第65-66页 |
3.3.5 “水凝胶试纸”对不同浓度铜离子的检测 | 第66-67页 |
3.3.6 “水凝胶试纸”用于实际水样的检测 | 第67-68页 |
3.4 本章小结 | 第68-69页 |
第4章 基于 poly(T)稳定的荧光铜纳米颗粒对核酸酶免标记高灵敏检测及其抑制剂筛选研究 | 第69-80页 |
4.1 前言 | 第69-70页 |
4.2 实验部分 | 第70-72页 |
4.2.1 试剂与仪器 | 第70-71页 |
4.2.2 溶液的配置 | 第71-72页 |
4.2.3 酶切反应动力学监测 | 第72页 |
4.2.4 核酸酶的检测 | 第72页 |
4.2.5 特异性考察 | 第72页 |
4.2.6 实际样品的制备 | 第72页 |
4.3 结果与讨论 | 第72-78页 |
4.3.1 实验原理 | 第72-73页 |
4.3.2 可行性分析 | 第73-75页 |
4.3.3 核酸酶的检测 | 第75-77页 |
4.3.4 复杂样品中的核酸酶检测 | 第77页 |
4.3.5 S1 核酸酶抑制剂筛选 | 第77-78页 |
4.4 本章小结 | 第78-80页 |
第5章 基于 dsDNA稳定的荧光铜纳米颗粒和聚合酶链式反应对核酸的放大检测研究 | 第80-89页 |
5.1 前言 | 第80-81页 |
5.2 实验部分 | 第81-83页 |
5.2.1 试剂与仪器 | 第81-82页 |
5.2.2 溶液的配置 | 第82-83页 |
5.2.3 dsDNA 稳定的荧光铜纳米颗粒的合成 | 第83页 |
5.2.4 对靶标核酸分子的放大检测 | 第83页 |
5.2.5 PCR 参数的优化 | 第83页 |
5.3 结果与讨论 | 第83-88页 |
5.3.1 实验原理 | 第83-84页 |
5.3.2 dsDNA 稳定合成的荧光铜纳米颗粒的验证 | 第84-85页 |
5.3.3 放大检测核酸分子的可行性分析 | 第85-86页 |
5.3.4 PCR 参数的优化 | 第86-87页 |
5.3.5 对靶标核酸分子的放大检测 | 第87-88页 |
5.4 本章小结 | 第88-89页 |
第6章 基于靶标催化的核酸动态自组装和芘二聚体荧光开关效应对核酸的免酶恒温放大检测研究 | 第89-102页 |
6.1 前言 | 第89-90页 |
6.2 实验部分 | 第90-93页 |
6.2.1 试剂与仪器 | 第90-91页 |
6.2.2 溶液的配置 | 第91-92页 |
6.2.3 反应温度优化 | 第92页 |
6.2.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第92页 |
6.2.5 实时荧光监控动态组装过程 | 第92页 |
6.2.6 靶标核酸分子的检测 | 第92页 |
6.2.7 实际样品的制备 | 第92-93页 |
6.3 结果与讨论 | 第93-101页 |
6.3.1 实验原理 | 第93-94页 |
6.3.2 探针的设计 | 第94-95页 |
6.3.3 动态自组装过程的表征 | 第95-96页 |
6.3.4 可行性分析 | 第96-98页 |
6.3.5 γ-CD 对芘二聚体荧光信号的进一步放大 | 第98-99页 |
6.3.6 靶标 DNA 分子的检测 | 第99-101页 |
6.3.7 实际样品分析 | 第101页 |
6.4 本章小结 | 第101-102页 |
第7章 基于双响应单分子荧光核酸探针的设计对汞离子和银离子的多靶标检测研究 | 第102-113页 |
7.1 前言 | 第102-103页 |
7.2 实验部分 | 第103-106页 |
7.2.1 试剂与仪器 | 第103-104页 |
7.2.2 溶液的配制 | 第104-105页 |
7.2.3 靶标离子介导 UMDP 构型变化的考察 | 第105页 |
7.2.4 离子强度对 UMDP 的影响 | 第105页 |
7.2.5 对靶标离子的检测 | 第105页 |
7.2.6 选择性验证 | 第105页 |
7.2.7 对两种靶标离子的区分 | 第105-106页 |
7.2.8 实际水样的制备 | 第106页 |
7.3 结果与讨论 | 第106-112页 |
7.3.1 实验原理 | 第106-107页 |
7.3.2 探针性能分析 | 第107-108页 |
7.3.3 靶标离子的检测 | 第108-110页 |
7.3.4 选择性考察 | 第110-111页 |
7.3.5 两种靶标离子的区分 | 第111页 |
7.3.6 实际样品中靶标离子的检测 | 第111-112页 |
7.4 本章小结 | 第112-113页 |
第8章 基于双响应单分子核酸探针和免修饰的金纳米颗粒对汞离子和银离子的多靶标比色检测研究 | 第113-123页 |
8.1 前言 | 第113-114页 |
8.2 实验部分 | 第114-116页 |
8.2.1 试剂与仪器 | 第114-115页 |
8.2.2 溶液的配制 | 第115页 |
8.2.3 金纳米颗粒的合成 | 第115页 |
8.2.4 离子检测 | 第115页 |
8.2.5 实际样品的制备 | 第115-116页 |
8.3 结果与讨论 | 第116-122页 |
8.3.1 实验原理 | 第116页 |
8.3.2 金纳米颗粒的表征 | 第116-117页 |
8.3.3 离子强度的优化 | 第117-118页 |
8.3.4 可行性验证 | 第118-119页 |
8.3.5 汞离子和银离子检测 | 第119页 |
8.3.6 选择性考察 | 第119-121页 |
8.3.7 实际水样分析 | 第121-122页 |
8.4 本章小结 | 第122-123页 |
结论 | 第123-125页 |
参考文献 | 第125-154页 |
附录 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第154-157页 |
致谢 | 第157-158页 |