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食品中三嗪类和苯脲类除草剂萃取的研究

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食品中三嗪类和苯脲类除草剂萃取的研究
论文目录
 
提要第1-5页
中文摘要第5-8页
ABSTRACT第8-16页
第一章 绪论第16-69页
  1.1 三嗪类和苯脲类除草剂结构和性质第16-19页
  1.2 三嗪类和苯脲类除草剂残留现状第19-22页
  1.3 溶剂浮选第22-26页
    1.3.1 有机溶剂浮选第23-25页
    1.3.2 双水相浮选第25页
    1.3.3 气浮络合萃取第25-26页
  1.4 固相萃取第26-41页
    1.4.1 固相萃取的基本原理第27-29页
    1.4.2 固相萃取模式第29-32页
      1.4.2.1 目标物吸附模式第29-31页
      1.4.2.2 杂质吸附模式第31-32页
    1.4.3 固相萃取吸附剂第32-41页
      1.4.3.1 键合硅胶吸附剂第32-33页
      1.4.3.2 无机基质材料第33页
      1.4.3.3 有机聚合物材料第33-34页
      1.4.3.4 新型吸附剂第34-41页
  1.5 分散固相萃取第41-48页
    1.5.1 目标物吸附模式第42-44页
    1.5.2 杂质吸附模式第44-48页
  1.6 本论文研究的主要内容第48-50页
    1.6.1 离子液体起泡-溶剂浮选法萃取酸奶中的除草剂第48页
    1.6.2 改进的 QuEChERS-高效液相色谱法测定牛奶和酸奶中的除草剂第48页
    1.6.3 气动雾化-固相萃取-高效液相色谱法测定蔬菜中的三嗪类除草剂第48页
    1.6.4 金属有机骨架 MIL-101(Cr)分散固相萃取植物油中的除草剂第48-49页
    1.6.5 液相萃取-金属有机骨架分散固相萃取花生中的除草剂第49页
    1.6.6 非极性溶剂动态微波辅助萃取-分散固相萃取大豆中的除草剂第49-50页
  1.7 参考文献第50-69页
第二章 离子液体起泡-溶剂浮选法萃取酸奶中的除草剂第69-92页
  2.1 实验部分第70-72页
    2.1.1 试剂第70页
    2.1.2 仪器第70-71页
    2.1.3 样品制备第71页
    2.1.4 实验步骤第71-72页
    2.1.5 色谱条件第72页
  2.2 结果与讨论第72-87页
    2.2.1 萃取条件的选择第72-81页
      2.2.1.1 氯化钠的用量第72-73页
      2.2.1.2 浮选液的 pH第73-74页
      2.2.1.3 浮选溶剂第74-75页
      2.2.1.4 离子液体类型第75-76页
      2.2.1.5 离子液体体积第76页
      2.2.1.6 硫酸铵的用量第76-78页
      2.2.1.7 载气流量第78页
      2.2.1.8 浮选时间第78-79页
      2.2.1.9 浮选溶剂体积第79页
      2.2.1.10 表面活性剂的比较第79-81页
    2.2.2 方法评价第81-87页
      2.2.2.1 工作曲线、检出限和定量限第81页
      2.2.2.2 富集因子第81-82页
      2.2.2.3 选择性第82-83页
      2.2.2.4 样品分析第83页
      2.2.2.5 稳定性第83-87页
  2.3 小结第87-88页
  2.4 参考文献第88-92页
第三章 改进的 QuEChERS-高效液相色谱法测定牛奶和酸奶中的除草剂第92-113页
  3.1 实验部分第93-95页
    3.1.1 试剂第93-94页
    3.1.2 仪器第94页
    3.1.3 样品制备第94页
    3.1.4 改进的 QuEChERS 方法第94-95页
    3.1.5 参照方法第95页
    3.1.6 色谱条件第95页
  3.2 结果与讨论第95-108页
    3.2.1 萃取方法的选择第95-96页
    3.2.2 萃取条件的优化第96-103页
      3.2.2.1 萃取溶剂和吸附剂第96-97页
      3.2.2.2 pH第97-98页
      3.2.2.3 萃取时间第98页
      3.2.2.4 萃取溶剂体积第98-100页
      3.2.2.5 PSA 用量第100页
      3.2.2.6 氯化钠的用量第100-101页
      3.2.2.7 乙酸乙酯和正己烷体积比第101页
      3.2.2.8 蒸干过程的影响第101-103页
    3.2.3 方法评价第103-108页
      3.2.3.1 标准曲线第103页
      3.2.3.2 工作曲线、检出限和定量限第103-104页
      3.2.3.3 精密度第104-105页
      3.2.3.4 样品分析第105页
      3.2.3.5 稳定性第105-108页
      3.2.3.6 方法比较第108页
  3.3 小结第108-109页
  3.4 参考文献第109-113页
第四章 气动雾化-固相萃取-高效液相色谱法测定蔬菜中的三嗪类除草剂第113-137页
  4.1 实验部分第114-117页
    4.1.1 试剂第114页
    4.1.2 仪器第114-115页
    4.1.3 样品制备第115-116页
    4.1.4 气动雾化-固相萃取第116页
    4.1.5 QuEChERS 法第116页
    4.1.6 色谱条件第116-117页
      4.1.6.1 液相色谱条件第116-117页
      4.1.6.2 质谱条件第117页
  4.2 结果与讨论第117-133页
    4.2.1 萃取条件的优化第117-120页
      4.2.1.1 萃取溶剂第117-119页
      4.2.1.2 萃取溶剂与样品的比值第119页
      4.2.1.3 样品溶液 pH第119-120页
    4.2.2 气动雾化-固相萃取条件的优化第120-129页
      4.2.2.1 气动雾化-固相萃取溶液 pH第120-121页
      4.2.2.2 雾化室温度第121-122页
      4.2.2.3 吸附剂类型第122页
      4.2.2.4 载气流量第122-124页
      4.2.2.5 抽气速率第124页
      4.2.2.6 洗脱条件第124-126页
      4.2.2.7 正交试验第126-129页
    4.2.3 方法评价第129-133页
      4.2.3.1 工作曲线、检出限和定量限第129页
      4.2.3.2 精密度第129-131页
      4.2.3.3 样品分析第131-133页
      4.2.3.4 方法比较第133页
  4.3 小结第133-134页
  4.4 参考文献第134-137页
第五章 金属有机骨架 MIL-101(Cr)分散固相萃取植物油中的除草剂第137-159页
  5.1 实验部分第138-141页
    5.1.1 试剂第138-139页
    5.1.2 仪器第139页
    5.1.3 合成 MIL-101(Cr)第139-140页
    5.1.4 样品制备第140页
    5.1.5 分散固相萃取法第140页
    5.1.6 QuEChERS 法第140-141页
    5.1.7 色谱条件第141页
  5.2 结果与讨论第141-152页
    5.2.1 合成 MIL-101(Cr)的表征第141-142页
    5.2.2 实验参数的优化第142-148页
      5.2.2.1 正己烷和植物油体积比第142-143页
      5.2.2.2 MIL-101(Cr)用量第143页
      5.2.2.3 萃取时间和离心时间第143-145页
      5.2.2.4 洗脱溶剂和洗脱时间第145-146页
      5.2.2.5 统计分析第146-148页
    5.2.3 方法评价第148-152页
      5.2.3.1 工作曲线和检出限第148页
      5.2.3.2 精密度第148页
      5.2.3.3 样品分析第148-150页
      5.2.3.4 稳定性第150-151页
      5.2.3.5 方法比较第151-152页
  5.3 小结第152-154页
  5.4 参考文献第154-159页
第六章 液相萃取-金属有机骨架分散固相萃取花生中的除草剂第159-180页
  6.1 实验部分第160-163页
    6.1.1 试剂第160-161页
    6.1.2 仪器第161页
    6.1.3 样品制备第161-162页
    6.1.4 实验步骤第162页
    6.1.5 色谱条件第162-163页
      6.1.5.1 液相色谱条件第162页
      6.1.5.2 质谱条件第162-163页
  6.2 结果与讨论第163-174页
    6.2.1 液相萃取条件的优化第163-166页
      6.2.1.1 萃取溶剂第163-164页
      6.2.1.2 乙酸乙酯体积第164页
      6.2.1.3 超声萃取时间第164-166页
      6.2.1.4 正己烷体积第166页
    6.2.2 分散固相萃取条件的优化第166-169页
      6.2.2.1 MIL-101(Cr)用量第166-167页
      6.2.2.2 分散固相萃取时间第167页
      6.2.2.3 洗脱条件第167-169页
    6.2.3 方法评价第169-174页
      6.2.3.1 工作曲线、检出限和定量限第169页
      6.2.3.2 精密度和富集因子第169-170页
      6.2.3.3 样品分析第170-173页
      6.2.3.4 稳定性第173页
      6.2.3.5 方法比较第173-174页
  6.3 小结第174-176页
  6.4 参考文献第176-180页
第七章 非极性溶剂动态微波辅助萃取-分散固相萃取大豆中的除草剂第180-202页
  7.1 实验部分第181-184页
    7.1.1 试剂第181-182页
    7.1.2 仪器第182-183页
    7.1.3 样品制备第183页
    7.1.4 实验步骤第183页
      7.1.4.1 动态微波辅助萃取第183页
      7.1.4.2 分散固相萃取第183页
    7.1.5 色谱条件第183-184页
  7.2 结果与讨论第184-196页
    7.2.1 动态微波辅助萃取条件的优化第184-187页
      7.2.1.1 微波吸收介质第184页
      7.2.1.2 萃取溶剂第184页
      7.2.1.3 微波功率第184-186页
      7.2.1.4 正己烷体积的选择第186页
      7.2.1.5 正己烷流速第186-187页
    7.2.2 分散固相萃取条件的优化第187-189页
      7.2.2.1 MIL-101(Cr)用量第187页
      7.2.2.2 分散固相萃取时间第187-189页
      7.2.2.3 洗脱溶剂第189页
    7.2.3 方法评价第189-196页
      7.2.3.1 工作曲线、检出限和定量限第189-190页
      7.2.3.2 精密度第190-191页
      7.2.3.3 样品分析第191-192页
      7.2.3.4 稳定性第192页
      7.2.3.5 方法比较第192-196页
  7.3 小结第196-197页
  7.4 参考文献第197-202页
攻读学位期间发表的学术论文及取得的科研成果第202-206页
致谢第206页

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